BookPDF Available

La mosca de las alas manchadas (Drosophila Suzuki) en la comarca andina. Instituto de Investigaciones Forestales y Agropecuarias Bariloche (IFAB) Agencia de Extensión Rural El Bolsón Agencia de Extensión Rural El Hoyo.

Authors:

Abstract

La mosca de alas manchadas, Drosophila suzukii, es un díptero nativo de Asia que ha invadido gran parte del mundo causando importantes daños en cultivos de fruta, principalmente aquella de piel fina. En Argentina fue detectada por primera vez en 2014 y actualmente se encuentra establecida en gran parte del territorio, incluyendo la Comarca Andina del Paralelo 42.
1
Instituto de Investigaciones Forestales
y Agropecuarias Bariloche (IFAB)
Agencia de Extensión Rural El Bolsón
Agencia de Extensión Rural El Hoyo
Agradecimientos: Delna Arancio Sidoti
Ilustraciones: Julia Rouaux
La mosca de las
alas manchadas
Drosophila suzukii
en la Comarca Andina
2022
21
Índice
Ciclo de vida, morfología y dinámica
poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Ciclo de vida
Desarrollo y actividad
Dinámica poblacional
Herramientas de manejo cultural para la mosca de las alas man-
chadas (Drosophila suzukii)
Riego por goteo
Mulching plástico
Poda
Manejo de vegetación circundante.
Frecuencia de cosecha
Descarte de fruta
Tratamiento post-cosecha
Principales especies afectadas por la mosca de las alas manchadas
(Drosophila suzukii)
Cultivos afectados
Hospederos alternativos de Drosophila suzukii
Características del fruto que promueven el ataque
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas manchadas (Droso-
phila suzukii)
Trampas con vinagre de manzana
Larvas en frutos
Información adicional
Figura 1: Ciclo de vida de la mosca de las alas manchadas. Bajo condiciones ambientales favorables el
mismo se puede completar en tan sólo 10 días.
Su alto potencial de daño se debe a que la hembra cuenta con un ovipositor ase-
rrado y rígido, el cual le permite cortar la piel de frutos sanos, inclusive aquellos aún
no maduros, para dejar sus huevos en su interior. Una vez introducidos, la fruta co-
mienza a descomponerse mientras la larva se alimenta de la pulpa y, producto de
la descomposición, aparecen nuevos microorganismos asociados. Además de la
gran variedad de frutos que puede atacar, la mosca presenta una alta fecundidad,
un ciclo de vida corto y capacidad para adaptarse a diferentes condiciones climá-
ticas, factores que incrementan las probabilidades de causar daños económicos.
Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional
de la mosca de las alas manchadas (Drosophila
suzukii)
Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
La mosca de alas manchadas, Drosophila suzukii, es un díptero
nativo de Asia que ha invadido gran parte del mundo causando
importantes daños en cultivos de fruta, principalmente aquella
de piel na. En Argentina fue detectada por primera vez en 2014
y actualmente se encuentra establecida en gran parte del terri-
torio, incluyendo la Comarca Andina del Paralelo 42.
23
Ciclo de vida
La mosca atraviesa una metamorfosis completa con 4 estadios durante su vida: hue-
vo, larva, pupa y adulto (Figura 1) que puede durar entre 8 y 25 días, dependiendo de
las temperaturas. Los huevos son depositados dentro del fruto por las hembras adul-
tas, pasando por 3 estadios larvales. Luego, pasan un período de pupa de las cuales
emergen los machos y hembras adultos. Las hembras llegan a la madurez sexual a
los 3 días de la emergencia y pueden poner hasta 40 huevos por día, totalizando en
promedio 400 en toda su vida.
Huevo
Los huevos (Figura 2), de 0,6 mm aproximadamente, se caracterizan por poseer
dos lamentos en la parte posterior que sobresalen al exterior de los frutos. Éstos
le permiten realizar respirar, ya que el resto del huevo se encuentra sumergido
dentro de la pulpa.
Larva
Las larvas (Figura 2) atraviesan tres estadios dentro del fruto alimentándose de la
pulpa. El tamaño, a medida que transcurren los días, va desde los 0,6 mm a los 4
mm.
Figura 2: Tamaños relativos entre el huevo, los 3 estadios larvales y la pupa de la mosca de las alas man-
chadas.
Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Desarrollo y actividad
Desde el huevo hasta el adulto, la mosca requiere de al menos 8 días para comple-
tar su desarrollo, pudiendo tener hasta 15 generaciones por año en climas favora-
bles. Este corto plazo de desarrollo, combinado con la gran capacidad reproductiva
de las hembras (una sola hembra puede poner hasta 400 huevos) resultan en
Figura 3: Diferencias entre sexos de adultos de Drosophila suzukii. Son características las manchas en
las alas de los machos y el ovipositor aserrado de las hembras.
Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Pupa
Las pupas (Figura 2) se caracterizan por presentar dos espiráculos marrones con
forma de pequeñas estrellas. Las mismas son de 3 mm de largo aproximadamen-
te. Esta etapa del ciclo de vida puede ocurrir en el fruto como así también en la
tierra, a 0,5 cm por debajo de la misma en zonas húmedas.
Adultos
Las moscas adultas son pequeñas, miden entre 2 a 3 mm de longitud y poseen
algunas diferencias entre machos y hembras que son características de la especie
(Figura 3).
Macho: La característica más notable es una mancha oscura sobre la mitad superior
del ala. Esta pequeña mancha es el rasgo distintivo de la plaga. También característi-
co de la especie es un par de peines negros sobre las patas delanteras y líneas negras
continuas sobre el abdomen (Figura 3).
Hembra: Las hembras no poseen manchas sobre las alas, pero es característico el
ovipositor curvo, aserrado y rígido que le permite realizar la inserción de los huevos
en los frutos. Al igual que los machos, tiene líneas negras continuas con forma re-
dondeada sobre el abdomen, y no tiene peines en las patas delanteras (Figura 3).
45
estallidos poblacionales con el consiguiente impacto negativo en la producción de
frutos. Las condiciones óptimas para el desarrollo de la plaga es alrededor de los
23ºC (Figura 4) y una humedad ambiental entre 80% y 90%.
La actividad (vuelo, apareamiento y postura de huevos) se concentra durante las ho-
ras del día y con temperaturas moderadas. Es debido a esto que, durante el verano,
en días calurosos la actividad de los adultos se concentra en los momentos más fres-
cos del día, presentando dos picos marcados, uno al amanecer y otro en el atardecer.
Dinámica poblacional
En la región de la Comarca Andina, la mosca atraviesa el invierno como adulto en zonas
protegidas de bajas temperaturas como pueden ser zonas boscosas y cortinas de árboles.
Los adultos que atraviesan el invierno se caracterizan por ser más oscuros y alargados que
los adultos de las estaciones con temperaturas más elevadas. Con el incremento de las
temperaturas durante la primavera, la población de las moscas aumenta sostenidamente
hasta el otoño, en donde se observan las mayores densidades poblacionales (Figura 5).
Figura 4: Tasas de desarrollo de la mosca de las alas manchadas en relación a la temperatura. El desarrollo
óptimo ocurre con temperaturas que rondan los 23ºC. Adaptado de Tochen (2014).
Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii) Ciclo de vida, morfología y dinámica poblacional de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 5: Variación poblacional de la mosca de las alas manchadas Drosophila suzukii en cultivos
de frambuesa a lo largo del año en la Comarca Andina.
Estudios previos indican que la mosca de las alas manchadas se vuelve activa cuando
transcurren varios días con temperaturas mayores a 5°C. Si las temperaturas son inferiores
a esto o superiores a 25°C, la actividad de los adultos (y en consecuencia, los niveles de
reproducción) bajan pudiendo incluso llegar a detenerse.
67
Las prácticas de manejo culturales suelen orientarse a disminuir las condiciones
ambientales favorables para la reproducción y crecimiento poblacional de la pla-
ga. Dado que la temperatura y la humedad son dos factores fundamentales que
afectan las tasas de reproducción y supervivencia de la mosca, contamos con un
número de actividades relacionadas que tienen como n modicar la tempera-
tura y humedad del cultivo y zonas aledañas para reducir, de este modo, las tasas
reproductivas y de supervivencia de la mosca.
Existe consenso en que la implementación de dichas prácticas culturales, en ac-
ción conjunta de todos los productores, son fundamentales para el manejo de la
plaga. Por ello es recomendable realizar todas las prácticas en conjunto y a la ma-
yor escala geográca posible, para evitar zonas favorables en los cultivos y áreas
aledañas, ya que la capacidad de vuelo de la mosca es considerable y un predio
descuidado puede resultar en ambientes ideales para su propagación.
Riego por goteo
Es sabido que la mosca preere sitios con humedades relativas altas, es por ello
que se debe hacer todo lo posible por reducirlos. En este sentido, se recomienda
el riego por goteo por sobre el de aspersión, ya que el riego localizado disminuye
la humedad en el follaje de la planta y zonas aledañas, reduciendo los lugares fa-
vorables para el desarrollo y supervivencia de la mosca. En el caso de que el riego
instalado sea por aspersión, se recomienda regar por la mañana.
Herramientas de manejo cultural para la mosca
de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Herramientas de manejo cultural para la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 6: Preferencia de microhábitat de la mosca de las alas manchadas. El interior de las plantas,
donde hay menor incidencia solar y temperaturas más bajas, es el sitio preferido. Adaptado de Rendon
(2019).
Mulching plástico
En caso de iniciar una nueva plantación, se recomienda colocar mulching plásti-
co en el suelo debajo del cultivo. Ésto impide que las larvas maduras a punto de
pupar, logren enterrarse debajo de la tierra. Además, el mulching puede ayudar a
aumentar la luminosidad y a calentar la zona de la parte baja de la planta generan-
do un ambiente desfavorable para el insecto. En la zona interlar se recomienda
mantener una cobertura vegetal corta.
Poda
La mosca preere ambientes oscuros y húmedos con temperaturas moderadas, los
cuales suelen ocurrir en el interior del follaje de la planta. Es por ello que una poda
para ralear el interior de la melga, disminuyendo la densidad de varas por metro
lineal, logrando cultivos bien aireados donde la luz pueda penetrar, es fundamental
para disminuir los sitios propicios para la mosca (Figura 6). La densidad de cañas
puede variar según especie y variedad de berries.
Manejo de vegetación circundante
La mosca de las alas manchadas es capaz de desarrollarse sobre una gran varie-
dad de frutos que poseen diferentes momentos de maduración. Debido a esto, es
frecuente que durante la cosecha y una vez terminada la misma, esta plaga utilice
hospederos alternativos, como por ejemplo, la murra, sauco, mosqueta y maqui
(Figura 9). La remoción de hospederos alternativos reduce la oferta de sitios de
oviposición, alimento y refugio para la mosca.
Frecuencia de cosecha
Se recomienda cosechar los frutos rápidamente para evitar la presencia de fruta
madura y/o infectada sobre la planta. La frecuencia de cosecha, en los berries, debe
realizarse día por medio para evitar que la mosca encuentre fruta en estado óptimo
para colocar sus huevos. Una vez nalizada la cosecha, se deben revisar las plantas
para que no queden frutos olvidados sin cosechar.
Descarte de fruta
Resulta indispensable prestar especial atención al tratamiento que se le da a la fru-
ta de descarte. Se recomienda desecharla fuera de la chacra en un recipiente cerra-
do lo más herméticamente posible. Si eso no es factible, se la puede ubicar en un
lugar soleado cubierta con un plástico transparente de 100 o 200 micrones y sellar
alrededor con tierra. Alternativamente, se puede colocar en una bolsa transparente
bien cerrada al sol durante algunos días. No se recomienda compostar debido a la
baja eciencia de estos métodos para eliminar a la mosca. En el caso de enterrar
la fruta, hacerlo a una profundidad de unos 70 cm, cubrirla con cal y tapar el pozo.
Tratamiento post-cosecha
Una vez realizada la cosecha, se recomienda conservar la fruta en frío para aletargar
el desarrollo de las larvas. De ser posible, congelarla.
Herramientas de manejo cultural para la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
89
Figura 7: Resumen de prácticas culturales para mitigar el impacto de la mosca de las alas manchadas.
Herramientas de manejo cultural para la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Resumen de prácticas culturales
Principales especies afectadas por la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Cultivos afectados
La mosca de las alas mancha-
das ataca una gran variedad de
especies, por lo que hay des-
criptas al día de hoy más de
150 especies de plantas sus-
ceptibles al ataque de la mos-
ca. Ésto, sumado a condiciones
ambientales apropiadas, puede
resultar en densidades pobla-
cionales notables de la mosca
durante gran parte del año.
Entre las principales especies
de importancia comercial que
afecta la mosca, se encuen-
tran la frambuesa, mora, cere-
za, sauco, arándano, guinda y
en menor medida otros frutales
como el durazno, uva, ciruela
y frutilla entre otros (Figura 8).
También se la ha encontrado
en otros cultivos como la pera y
el manzano.
Hospederos alternativos
de Drosophila suzukii
La vegetación circundante al
cultivo puede albergar a la mos-
ca brindando refugio y fuentes
de alimento alternativas en mo-
mentos en los que el cultivo no
puede garantizarlas. Estas fuen-
tes alternativas pueden ser fru-
tos silvestres, néctar oral y ex-
traoral, savia o incluso exudado
de pulgones. En este sentido, es
común que la mosca de las alas
manchadas utilice como sustrato
para oviponer frutos de plantas
silvestres y ornamentales como
la murra, rosa mosqueta o laurel
de cerco (Figura 9). La mosca, al
atacar diferentes especies con
diferentes momentos de madu-
ración a lo largo del año, logra
reproducirse y sobrevivir en una
amplia variedad de ambientes.
Principales especies afectadas por la mosca de
las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 8: Incidencia del ataque sobre diferentes especies
frutales. Adaptado de Funes (2018).
10 11
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 9: Principales especies vegetales de la región de la Comarca Andina que podrían ser utilizadas
como huéspedes alternativos de la mosca de las alas manchadas a lo largo del año.
Figura 10: Cambios del fruto a lo largo del proceso madurativo que promueven la susceptibilidad al ata-
que de la mosca de las alas manchadas. Adaptado de Lee (2016).
Características del fruto que promueven el ataque
Las hembras de la mosca de las alas manchadas dejan sus huevos en una variedad
de frutos. A diferencia de otras moscas de los frutos, éstas tienen un ovipositor ase-
rrado, con el que puede dejar sus huevos en frutos sanos con piel dura, inclusive en
aquellos aún no maduros. Algunas de las características de los frutos que promue-
ven el ataque de la mosca, son la intensidad del color, el contenido de azúcar, la aci-
dez y la rmeza (Figura 10). La dureza de la piel del fruto es un factor fundamental
ya que cuanto más dura es la piel, menor es la probabilidad de que la mosca logre
perforarla con su ovipositor aserrado. Es por ello que cultivares con pieles resisten-
tes suelen sufrir menos al ataque de la mosca. Asimismo, a medida que madura el
fruto el cambio de coloración e incremento en la concentración de azúcares, incre-
menta la susceptibilidad al ataque de la mosca.
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
12 13
Si bien es sabido que la mosca de las alas
manchadas se encuentra establecida en la
región de la Comarca Andina del paralelo 42,
existen variaciones espacio-temporales que
son importantes considerar para un buen
manejo de la plaga. Por ello se recomienda
realizar monitoreos periódicos a nivel de pre-
dio, para establecer la presencia de la plaga y
tomar decisiones respecto a la implementa-
ción de técnicas de manejo. El monitoreo se
realiza mediante la colocación de trampas ce-
badas con vinagre de manzana y la detección
de larvas en frutos. Se recomienda realizar el
monitoreo temprano en la temporada (pri-
mavera) y luego durante la época de fructi-
cación para detectar la presencia de la mosca
y actuar a tiempo.
Trampas con vinagre de manzana
Se recomienda realizar el monitoreo mediante
trampas de vinagre (Figura 11). La trampa con-
siste en una botella de plástico transparente
la cual se debe agujerear en la mitad superior
unas 15 veces con pequeños agujeros de 3 mm
de diámetro. Ésta debe llenarse hasta la mitad
con vinagre de manzana y agua en proporcio-
nes 70:30 respectivamente (por ejemplo: 70
ml de vinagre y 30 ml de agua), agregando
una gota de detergente para romper la ten-
sión supercial del líquido. Colocar las tram-
pas cuando la temperatura ambiente supere
los 10°C grados o al menos un mes previo a la
maduración de frutos. Las trampas deben ser
colocadas a la sombra en los bordes de los cul-
tivos y en la vegetación circundante. Es reco-
mendable colocar las trampas para lograr de-
tecciones tempranas de la mosca. La densidad
de trampas recomendada para los bordes de
los cultivos, es una cada 6 m durante la época
de brotación y post-cosecha, revisar las tram-
pas con una frecuencia de 15 días; y durante la oración, fructicación, maduración
y cosecha, una vez por semana. Es importante remarcar que el momento de mayor
densidad de moscas, y por consiguiente, mayor amenaza para el cultivo, es durante
la maduración de los frutos. Cada vez que se revisa la trampa, se deben separar los
insectos mediante un colador y colocarlos en un nuevo contenedor para su posterior
identicación. Volver a verter el líquido colado sin insectos a la trampa y completar a
nivel con solución atrayente nueva.
El vinagre es un atrayente poco especíco, por lo que se capturarán individuos de otras
especies, además de la mosca de las alas manchadas. Debido a esto, es importante ob-
servar los caracteres morfológicos bajo lupa de los insectos capturados para establecer
la presencia de la plaga (Figura 3).
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas
manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 11: Trampa de vinagre para
el monitoreo de la mosca de las
alas manchadas. Mediante una
botella plástica con agujeros de
3mm de diámetro y completa
hasta la mitad con una solución
de vinagre de manzana y agua
(70:30) es posible capturar ma-
chos y hembras de la especie.
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
Figura 12: Método para comprobar la presencia de larvas en frutos. (1) Introducir 250 g de frutos ma-
chacados en una bolsa hermética y (2) machacar ligeramente. (3) Agregar 500 ml de agua con sal (180
g de sal en 0,5 l de agua) a temperatura ambiente y dejar reposar 15 min. (4) Luego contabilizar las larvas
otando en el líquido.
Larvas en frutos
Para controlar el nivel de ataque de D. suzukii se recomienda evaluar la presencia
de larvas en frutos (Figura 12). Para ello, preparar una solución saturada de sal con
agua tibia (180 g de sal en 0,5 l de agua a 20 °C). Colocar en una bolsa tipo ziploc 250
g de frutos ligeramente machacados. Comprimir la bolsa hermética entre las dos
palmas de la mano de manera que se pierda la forma original de la fruta. Romper
ligeramente las frutas antes de la inmersión resulta muy importante para detectar
larvas pequeñas. Luego agregar la solución salina y dejarla reposar unos 15 minu-
tos, para permitir que la solución impregne la pulpa e irrite a las larvas. Al dejar esta
solución reposar, las larvas saldrán del fruto y otarán en la supercie. Con esta
técnica, se podrá determinar el número de larvas por kilogramo de fruta. Se reco-
mienda realizar esta tarea una vez por semana durante la maduración y cosecha de
los frutos.
Métodos de monitoreo de la mosca de las alas manchadas (Drosophila suzukii)
14 15
Información adicional
Funes, C. F., Kirschbaum, D. S., Escobar, L. I., & Heredia, A. M. (2018). La mosca de las
alas manchadas, Drosophila suzukii (Matsamura). Nueva plaga de las frutas nas
en Argentina. Ediciones INTA.
Kenis, M., L. Tonina, R. Eschen, B. van der Sluis, M. Sancassani, N. Mori, T. Haye, H.
Helsen. 2016. Non- crop plants used as hosts by Drosophila suzukii in Europe. Jour-
nal of Pest Science. 89:735–748.
Klick, J., W.Q. Yang, V.M. Walton, D.T. Dalton, J.R. Hagler, A.J. Dreves, J.C. Lee, D.J.
Bruck. 2016. Distribution and activity of Drosophila suzukii in cultivated raspberry
and surrounding vegetation. Journal of Applied Entomology. 140:37–46.
Lee, J. C., Dalton, D. T., Swoboda-Bhattarai, K. A., Bruck, D. J., Burrack, H. J., Strik, B.
C., & Walton, V. M. (2016). Characterization and manipulation of fruit susceptibility
to Drosophila suzukii. Journal of Pest Science. 89: 771-780.
McIntosh, H. R., Atucha, A., Hills, W. B., Townsend, P. A., & Guedot, C. (2021). Plastic
mulches reduce adult and larval populations of Drosophila suzukii in fall-bearing
raspberry. bioRxiv. 1-19. DOI: 10.1101/2021.05.17.444501.
Rendon, D., Mermer, S., Brewer, L. J., Dalton, D. T., Da Silva, C. B., Lee, J. C. T., ... &
Walton, V. M. (2019). Cultural Control Strategies to Manage Spotted-Wing Drosophi-
la. Oregon State University Extension Service.
Schöneberg, T., Lewis, M. T., Burrack, H. J., Grieshop, M., Isaacs, R., Rendon, D., ... &
Hamby, K. A. (2021). Cultural Control of Drosophila suzukii in Small Fruit—Current
and Pending Tactics in the US. Insects. 12, 172-190.
Tochen, S., D.T. Dalton, N. Wiman, C. Hamm, P.W. Shearer, V.M. Walton. 2014. Tem-
perature-related development and population parameters for Drosophila suzu-
kii (Diptera: Drosophilidae) on cherry and blueberry. Environmental Entomology.
43:501510.
Van Timmeren, S., Davis, A. R., & Isaacs, R. (2021). Optimization of a larval sampling
method for monitoring Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae) in blueberries.
Journal of Economic Entomology. 114:1690-1700.
16
La mosca de alas manchadas, Drosophila suzukii,
es un díptero nativo de Asia que ha invadido gran
parte del mundo causando importantes daños en
cultivos de fruta, principalmente aquella de piel
na. En Argentina fue detectada por primera vez
en 2014 y actualmente se encuentra establecida
en gran parte del territorio, incluyendo la Comarca
Andina del Paralelo 42.
Instituto de Investigaciones Forestales
y Agropecuarias Bariloche (IFAB)
Agencia de Extension Rural El Bolsón
Agencia de Extensión Rural El Hoyo
La mosca de las
alas manchadas
Drosophila suzukii
en la Comarca Andina
2022
ResearchGate has not been able to resolve any citations for this publication.
Preprint
Full-text available
The invasive spotted-wing drosophila, Drosophila suzukii, is a major pest of fruit crops world-wide. Management of D. suzukii relies heavily on chemical control in both organic and conventional systems, and there is a need to develop more sustainable management practices. We evaluated the efficacy of three colors of plastic mulches at reducing populations of D. suzukii in fall-bearing raspberry and assessed the mulches' impacts on canopy microclimate factors relevant to D. suzukii. Black, white, and metallic plastic mulches reduced adult D. suzukii populations by 42-51% and larval populations by 52-72% compared to the grower standard. The mulches did not change canopy temperature or relative humidity, but metallic mulches increased canopy light intensity compared to the black mulch. Radiance in the visible spectrum (401-680 nm) was higher for the white and metallic mulch plots, but the black mulch plots did not differ from the control. In the UV spectrum (380-400 nm), all three plastic mulches had higher radiance than the control plots. Future studies will determine whether changes in radiance are associated with the observed reduction in D. suzukii populations. Plastic mulches are a promising cultural practice for managing D. suzukii since they can reduce adult and larval populations and could be incorporated into an integrated pest management program in both organic and conventional systems.
Article
Full-text available
Spotted-wing drosophila, Drosophila suzukii (Matsumura) (Diptera: Drosophilidae), a vinegar fly of Asian origin, has emerged as a devastating pest of small and stone fruits throughout the United States. Tolerance for larvae is extremely low in fresh market fruit, and management is primarily achieved through repeated applications of broad-spectrum insecticides. These applications are neither economically nor environmentally sustainable, and can limit markets due to insecticide residue restrictions, cause outbreaks of secondary pests, and select for insecticide resistance. Sustainable integrated pest management programs include cultural control tactics and various nonchemical approaches for reducing pest populations that may be useful for managing D. suzukii. This review describes the current state of knowledge and implementation for different cultural controls including preventative tactics such as crop selection and exclusion as well as strategies to reduce habitat favorability (pruning; mulching; irrigation), alter resource availability (harvest frequency; sanitation), and lower suitability of fruit postharvest (cooling; irradiation). Because climate, horticultural practices, crop, and market underlie the efficacy, feasibility, and affordability of cultural control tactics, the potential of these tactics for D. suzukii management is discussed across different production systems.
Technical Report
Full-text available
Cultural controls can reduce spotted-wing drosophila population pressure by modifying the microclimate within the crop so that the environment does not promote SWD reproduction and survival.
Book
Full-text available
The spotted wing fly Drosophila suzukii (Matsumura), new pest of berry fruits in Argentina. El libro sobre esta especie, de Ediciones INTA, recorre su origen, expansión y distribución actual; descripción y reconocimiento; ciclo biológico, condiciones favorables; hospederos; daños; monitoreo; y alternativas de manejo.
Article
Full-text available
The invasive spotted wing drosophila Drosophila suzukii, a fruit fly of Asian origin, is a major pest of a wide variety of berry and stone fruits in Europe. One of the characteristics of this fly is its wide host range. A better knowledge of its host range outside cultivated areas is essential to develop sustainable integrated pest management strategies. Field surveys were carried out during two years in Italy, the Netherlands and Switzerland. Fruits of 165 potential host plant species were collected, including mostly wild and ornamental plants. Over 24,000 D. suzukii adults emerged from 84 plant species belonging to 19 families, 38 of which being non-native. Forty-two plants were reported for the first time as hosts of D. suzukii. The highest infestations were found in fruits of the genera Cornus, Prunus, Rubus, Sambucus and Vaccinium as well as in Ficus carica, Frangula alnus, Phytolacca americana and Taxus baccata. Based on these data, management methods are suggested. Ornamental and hedge plants in the vicinity of fruit crops and orchards can be selected according to their susceptibility to D. suzukii. However, the widespread availability and abundance of non-crop hosts and the lack of efficient native parasitoids suggest the need for an area-wide control approach.
Article
Full-text available
Drosophila suzukii (Matsumura) is an economic pest of small fruits and cherries that attacks intact ripening fruits. Host susceptibility may be influenced by characteristics such as flesh firmness, penetration force of the skin, total soluble solids (TSS, also known as °Brix), and pH. Improved knowledge of factors affecting fruit susceptibility is needed for developing thresholds and risk prediction models for IPM. A combination of laboratory and field studies was conducted to develop prediction and potential management tools. First, a direct bioassay was used to calculate the probability of oviposition in a given fruit based on various characteristics as determined across laboratory and field trials in Oregon and North Carolina, US. When multiple characteristics were evaluated simultaneously, oviposition probability consistently increased as penetration force decreased and pH increased. Oviposition probability sometimes increased as TSS increased. Second, raspberries and blueberries in unsprayed fields had substantially lower infestation in ripening fruit compared to ripe fruit. There was no or minimal infestation in green fruit. Third, given that skin penetration force influences oviposition, practices used to improve fruit quality were examined in laboratory no-choice cages for potential reduction of oviposition. Blueberry fruit sprayed with calcium silicate in the field had greater penetration force and firmness and reduced number of eggs laid by D. suzukii compared to untreated fruit. Other calcium-based treatments increased Ca content and firmness of fruit relative to untreated fruit. Timing of insecticide spray for D. suzukii might be delayed until fruit become susceptible.
Article
Full-text available
Spotted wing drosophila, Drosophila suzukii (Matsumura) (Diptera: Drosophilidae), may utilize wild ‘Himalaya’ blackberry (HB) Rubus armeniacus Focke or other non-crop plants as refugia and possibly exploit adjacent field margins before colonizing cultivated fruiting crops. Studies were conducted to determine the role of field margins containing HB and their effect on D. suzukii activity, density and distribution in an adjacent commercial red raspberry crop. One-ha plots adjacent to field margins containing HB or known non-host (NH) grass crops were established in 2011 and 2012 and replicated three times. Each plot contained two transects with monitoring traps for D. suzukii in the field margin (0 m) and spaced approximately 10 (crop boundary), 40, 70 and 100 m into the adjacent crop (n = 10 traps/plot). Field margin vegetation was treated with a 10% chicken egg white mark solution weekly from pre-harvest until the end of harvest using a cannon sprayer. Adult D. suzukii were collected from traps weekly and analysed for the presence of the egg white mark using an egg white-specific enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). During both years, marked flies and total flies were captured in higher numbers in HB field margins, whereas virtually no flies were captured in field margins containing no known alternative host. Similarly, more flies were captured in the crop near HB than near NH. Spatial Analysis by Distance IndicEs (SADIE) and mean D. suzukii trap captures additionally displayed significantly higher fly densities in the raspberry field near HB than near NH. These results suggest that HB may contribute to elevated D. suzukii populations and pest pressure in comparison with field margins containing no known alternate host vegetation for D. suzukii. Having closely adjacent non-crop alternate host landscapes may result in increased D. suzukii pest pressure.
Article
Full-text available
Temperature-related studies were conducted on Drosophila suzukii Matsumura (Diptera: Drosophilidae: Drosophilini). From 10-28°C, temperature had a significant impact on blueberries, Vaccinium corymbosum L. (Ericales: Ericaceae), and cherries, Prunus avium (L.) L. 1755 (Rosales: Rosaceae), important commercial hosts of D. suzukii. Temperature had a significant influence on D. suzukii developmental period, survival, and fecundity, with decreasing developmental periods as temperatures increased to 28°C. At 30°C, the highest temperature tested, development periods increased, indicating that above this temperature the developmental extremes for the species were approached. D. suzukii reared on blueberries had lower fecundity than reared on cherries at all temperatures where reproduction occurred. The highest net reproductive rate (Ro ) and intrinsic rate of population increase (rm ) were recorded on cherries at 22°C and was 195.1 and 0.22, respectively. Estimations using linear and nonlinear fit for the minimum, optimal, and maximum temperatures where development can take place were respectively, 7.2, 28.1, and 42.1°C. The rm values were minimal, optimal, and maximal at 13.4, 21.0, and 29.3°C, respectively. Our laboratory cultures of D. suzukii displayed high rates of infection for Wolbachia spp. (Rickettsiales: Rickettsiaceae), and this infection may have impacted fecundity found in this study. A temperature-dependent matrix population estimation model using fecundity and survival data were run to determine whether these data could predict D. suzukii pressure based on environmental conditions. The model was applied to compare the 2011 and 2012 crop seasons in an important cherry production region. Population estimates using the model explained different risk levels during the key cherry harvest period between these seasons.
Article
Managing spotted-wing drosophila, Drosophila suzukii (Matsumura), in fruit crops is complicated by the unreliability of currently available traps for monitoring adult flies, combined with the difficulty of detecting larval infestation before fruit damage is apparent. A simple method to extract larvae from fruit in liquid, strain the solution, then count them in a coffee filter was developed recently for use in integrated pest management programs. Here, we present a series of experiments conducted to improve fruit sampling by making it faster, less expensive, and more accurate. The volume of blueberries sampled (59-473 ml) did not significantly affect the detection of second and third instars, but we found that 118-ml samples were best for detecting the smallest larvae. These small instars were more detectable when berries were lightly squeezed before immersion, whereas larger instars were similarly detectable without using this step. We also found that immersing fruit for 30 min was sufficient before counting larvae, and similar numbers of larvae were found in the filter using room temperature water rather than a salt solution. The process of filtering, detection, and counting larvae took only 2-4 min per sample to process, depending on larval density. Using a microscope to count the larvae was consistently the best approach for detecting D. suzukii larvae. Based on these results, we discuss how fruit sampling can be streamlined within IPM programs, so growers and their advisors can improve control and reduce the cost of monitoring this invasive pest.