Inventaire faunistique non exhaustif des écosystèmes coralliens mésophotiques à Mayotte

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HAL Id: hal-03202050
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Inventaire faunistique non exhaustif des écosystèmes
coralliens mésophotiques à Mayotte
Thierry Mulochau, Patrick Durville, Laurence Maurel, Gaby Barathieu,
Daniel Budet, Clément Delamare, Olivier Konieczny, Camille Loisil, Patrick
Plantard, Sébastien Quaglietti, et al.
To cite this version:
Thierry Mulochau, Patrick Durville, Laurence Maurel, Gaby Barathieu, Daniel Budet, et al.. In-
ventaire faunistique non exhaustif des écosystèmes coralliens mésophotiques à Mayotte. [Rapport de
recherche] BIORECIF. 2020. �hal-03202050�

BIORECIF p. 1
BIORECIF
Programme MesoMay 2
Inventaire faunistique non exhaustif des écosystèmes coralliens
mésophotiques à Mayotte

BIORECIF p. 2
Maîtres d’ouvrage :
DEAL Mayotte : terre plein de M’Tsapere 97600 Mamoudzou, M'Tsapere – Nicolas Deloncle -
Tel : 02 69 63 35 11 nicolas.deloncle@developpement-durable.gouv.fr
Parc Naturel Marin de Mayotte : Centre d’affaires de l’aéroport, Aéroport de Mayotte – 97615
Pamandzi - Clément Lelabousse -Tel : 06 39 68 22 83
clement.lelabousse@ofb.gouv.fr
Maîtres d’œuvre :
BIORECIF : 3 ter rue de l’albatros 97434 La Saline Les Bains Ile de La Réunion –
Thierry Mulochau - Tel. : 0692685831 biorecif@gmail.com
Dates :
Campagnes terrain : de juin 2019 à aout 2020
Rapport : septembre et octobre 2020
Bancarisation Base de Données Récif : octobre 2020
Echantillonnage terrain : photographies et prélèvements
G. Barathieu, O. Konieczny : Association Deep Blue Exploration
C. Delamarre, S. Quaglietti, D. Budet : Association Service de Plongée Scientifique
Patrick Plantard, Camille Loisil : Association Poisson Lune
Expertise faunistique
Liste des experts présentés dans le tableau 2 page 7
Rapport
Thierry Mulochau
A citer sous la forme :
Mulochau T., Durville P., Maurel L., Barathieu G., Budet D., Delamarre C., Konieczny O., Loisil C.,
Quaglietti S., Plantard P., Anker A., Bidgrain P., Bigot L., Bo M., Boissin E., Bonnet N., Bourmaud C.,
Conand C., De Voogd N., Ducarme F., Faure G., Fricke R., Huet R., Mah C., Messing C., Paulay G.,
Philippot V., Poupin J., Schleyer M., Stöhr S., Trentin F., & Wickel J. (2020) Inventaire faunistique non
exhaustif de quelques sites situés en zone récifale mésophotique à Mayotte. Programme MesoMay -
BIORECIF – DEAL Mayotte. 47 p et annexes.
© Photos : Associations Deep Blue Exploration, Service de Plongée Scientifique et Poisson Lune

BIORECIF p. 3
SOMMAIRE
I. Introduction………………………………………………………………………………………………………p4
II. Matériel et méthode…………………………………………………………………………………………p6
A. Les stations et sites……………………………………………………………………………………..p6
B. Méthode……………………………………………………………………………………………………..p8
C. Expertise faunistique…………………………………………………………………………………..p8
D. Bancarisation des données………………………………………………………………………….p9
III. Résultats……………………………………………………………………………………………………………p9
A. Les poissons……………………………………………………………………………………………….p10
B. Les mollusques…………………………………………………………………………………………..p19
C. Les crustacés………………………………………………………………………………………………p25
D. Les échinodermes……………………………………………………………………………………...p27
E. Les scléractiniaires……………………………………………………………………………………..p30
F. Les hydraires………………………………………………………………………………………………p32
G. Les gorgones………………………………………………………………………………………………p34
H. Les coraux mous…………………………………………………………………………………………p36
I. Les antipathaires………………………………………………………………………………………..p38
J. Les porifères (spongiaires)………………………………………………………………………….p40
K. Autres phylums : tuniciers (ascidies), planaires………………….……………………….p42
IV. Discussion et perspectives………………………………………………………………………………..p43
V. Bilan MesoMay………………………………………………………………………………………………..p45
VI. Bibliographie……………………………………………………………………………………………………p46
VII. Financements…………………………………………………………………………………………………..p48
Annexes………………………………………………………………………………………………………………………p49

BIORECIF p. 4
Inventaire faunistique non exhaustif des écosystèmes coralliens
mésophotiques à Mayotte
Mulochau T.1, Durville P.2, Maurel L.13, Barathieu G.3, Budet D.4, Delamarre C.4, Konieczny O.3, Loisil C.21, Quaglietti S.4,
Plantard P.21, Anker A5., Boissin E22. Bidgrain P.6, Bigot L.7, Bo M23, Bonnet N.7, Bourmaud C.7, Conand C.7,8, De Voogd N.9,
Ducarme F.8, Faure G.7, Fricke R.10, Huet R.11, Mah C.12, Messing C.14, Paulay G.17, Philippot V.15, Poupin J.16, Schleyer M.18,
Stöhr S.19, Trentin F.6, & Wickel J.20
1Biorecif, 3 ter rue de l’Albatros 97434 La Réunion, France – biorecif@gmail.com
2Galaxea
3Deep Blue Exploration
4Service de Plongée Scientifique
5Universidade Federal do Ceara, Labomar
6Association Vie Océane
7Université de La Réunion, Entropie
8Museum National d’Histoire Naturelle
9Naturalis Biodiversity Center
10State Museum of Natural History Stuttgart
11Association française de Conchyliologie
12Smithsonian Institution
13Kart’eau
14Nova Southeastern University
15Naturum Etudes
16Ecole Navale BCRM
17University of Florida
18South African Association for Marine Biological Research
19Swedish Museum of Natural History
20Marex
21Poisson Lune
22CRIOBE
23Université de Gênes
I. Introduction
Les écosystèmes coralliens mésophotiques (ECM) situés entre 50 m et 150 m de profondeur sur les
pentes des récifs de l’indo Pacifique restent largement méconnus malgré leurs surfaces importantes.
La zone mésophotique est intermédiaire entre la zone euphotique, proche de la surface (< à 30 m) et
la zone oligophotique, dite « crépusculaire », située au-delà de 150 m et qui s’étend jusqu’à plusieurs
centaines de mètres en milieu récifale tropicale avant que la lumière ne disparaisse complètement.
Les zones récifales mésophotiques présentent un biotope différent des récifs situés proches de la
surface avec notamment deux facteurs importants qui interviennent sur la répartition des différentes
espèces, la lumière qui diminue avec la profondeur et la température de l’eau de mer qui est souvent
inférieure de quelques degrés à celle observée proches de la surface.
Le développement de nouvelles techniques de plongée (recycleurs et mélanges gazeux « Heliox »,
« Trimix »), des ROV (Remotely Operated Vehicle) et de l’imagerie automatisée ont permis récemment
d’étudier la biodiversité de quelques zones récifales mésophotiques situées en bas des pentes des
récifs barrières. La biodiversité y est bien moins connue que celle située dans la zone euphotique,
certains genres de madréporaires sont encore présents mais avec la profondeur et la lumière
décroissante, certains organismes les remplacent et deviennent dominants : Porifera (« éponges »),
octocoralliaires (« gorgones », « coraux mous »,…), antipathaires (« coraux noirs »), échinodermes,…
Les peuplements de poissons sont souvent différents, de nombreuses espèces évoluent dans cette

BIORECIF p. 5
zone, certaines endémiques des zones mésophotiques explorées (cf. Hawaï) ou encore non décrites -
http://www.sciencemag.org/news/2017/03/naturalist-richard-pyle-explores-mysterious-dimly-lit-
realm-deep-coral-reefs
De nombreuses publications émettent l’hypothèse que les ECM, plus profonds et vraisemblablement
moins soumis aux impacts d’origine anthropique que les récifs coralliens proches de la surface,
pourraient permettre la résilience des récifs moins profonds plus vulnérables (Kahng et al., 2017 ;
Morais et al., 2018 ; Muir et al., 2018).
Les contraintes logistiques et juridiques pour accéder aux zones mésophotiques des récifs
dans un cadre de plongée professionnelle représentent des obstacles importants auxquels
les chercheurs ont longtemps été confrontés, ce qui explique en partie ce manque de
connaissance de la biodiversité des zones mésophotiques notamment en milieu récifal. De
plus, le déploiement de ROV et matériels collecteurs d’images en haute définition dans le
cadre de missions scientifiques nécessitent souvent des financements importants. En
France, la législation a récemment évolué en proposant un décret sur la plongée
professionnelle scientifique avec le classement IIIB - http://inpp.org/wp-
content/uploads/2020/01/mentionbjoe-20190524-0120-0019.pdf
Le programme MesoMay a pour objectif de réaliser un premier inventaire faunistique non
exhaustif de certains sites situés au niveau des ECM à Mayotte. Ce programme s’est décliné
en deux phases, une première de septembre 2018 à mai 2019 basée uniquement sur les
images collectées par les plongeurs et dont les résultats ont été présentés dans un rapport
(Mulochau et al., 2019) et bancarisés dans la BD Récif, et une seconde phase de juin 2019 à
août 2020 dont les résultats sont présentés dans ce rapport. Cette seconde phase se
différencie de la première par le prélèvement d’échantillons permettant la détermination
des taxons impossibles à déterminer à partir des images. Ce programme permet d’allier la
science participative, avec les associations de plongeurs, et les chercheurs et experts
faunistiques des différents phylums.
Des missions d’inventaires faunistiques sur les zones marines profondes ont déjà eu lieu
dans la zone du sud-ouest de l’océan Indien et autour de Mayotte
(https://expeditions.mnhn.fr/campaign/biomaglo, Tab. 18 ;
https://expeditions.mnhn.fr/campaign/benthedi, Tab. 19). Ces missions ont concerné
plusieurs îles (Mayotte, Comores, Glorieuses,… ), des hauts-fonds (Zélée, Banc du Leven, …)
et les prélèvements réalisés à la drague ou au chalut ont souvent été faits au-delà de la zone
mésophotique (> 150 m), rarement en zone mésophotique et sur les récifs de Mayotte.
La découverte de la biodiversité des ECM à Mayotte pourra ainsi permettre d’avoir une
meilleure connaissance des habitats et des organismes qui y évoluent, et d’initier des
démarches de conservation et de gestion de cette biodiversité qui pourraient permettre la
résilience de certaines zones récifales ou de certaines espèces impactées par les différentes
activités humaines.

BIORECIF p. 6
II. Matériel et méthode
A. Les stations et sites
Huit stations ont été échantillonnées de juin 2019 à aout 2020 (Tab. 1 et Fig. 1) : cinq sont situées au
sud-ouest de Mayotte sur les pentes externes du récif barrière à proximité des sites « Passe Bateau »
et « Passe Bouéni », les trois autres stations sont situées à l’est de Mayotte en pente externe de la
Passe en S et à l’est de la Petite Terre. Les différences de profondeurs pour chaque station (Tab. 1)
peuvent être importantes et représentent les profondeurs minimum et maximum échantillonnées lors
des différentes plongées réalisées au cours de ce programme.
Tableau 1. Stations et sites échantillonnés par les plongeurs de juin 2019 à août 2020 avec la
profondeur (= « Prof » en mètres), le nombre de plongées (= « Nbre » de plongées) sur chaque station
et les coordonnées géographiques en degrés décimaux.
Stations Sites Prof en m Nbre de plongées Latitude Longitude
Passe Bateau Passe Bateau 70à 120 17 12.974649°S 44.978671°E
Bouéni Passe Bouéni 65 à 130 10 12.931583°S 44.964250°E
Passe en S Passe en S 70 à 133 9 12.876000°S 45.282517°E
Tombant des aviateurs Tombant des aviateurs 90 à 145 4 12.817767°S 45.292967°E
Sanctutum Entre Passe Bouéni et Passe Bateau 70 à 80 4 12.952667°S 44.970417°E
Menhir Entre Passe Bouéni et Passe Bateau 75 à 90 2 12.968783°S 44.975650°E
St Hélène 700 m au nord du tombant des aviateurs 85 1 12.812283°S 45.295950°E
Grotte Passe Bateau 75 1 12.974600°S 44.978700°E

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Figure 1. Situation des huit stations échantillonnées par les plongeurs en zone mésophotique
à Mayotte dans le cadre du programme MesoMay de juin 2019 à août 2020 (©
Google Earth – Image Landsat / Copernicus – Data SIO. NOAA. US. Navy.
NGA.GEBCO)

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B. Méthode
Lors d’une plongée sur une station, les plongeurs réalisent un parcours aléatoire variant de 10 à 40
minutes selon la profondeur et pendant lequel ils photographient la faune des ECM et collectent
certains des organismes observés. L’ensemble des images et des collectes réalisées par les plongeurs
sont analysées, triées par phylums, puis envoyées aux différents experts pour détermination des
organismes. Les plongeurs réalisent des prises de vues de qualité permettant de reconnaitre et mettre
en évidence les caractères morphologiques pour la détermination de certains phylums au niveau de la
famille, du genre ou de l’espèce, notamment pour les poissons, la plupart des crustacés, mollusques,
holothurides, astérides, échinides, certains scléractiniaires… Cependant, des prélèvements sont
nécessaires pour déterminer au genre ou à l’espèce les éponges (Porifera), octocoralliaires
(gorgones,…), antipathaires (« coraux noirs »), ophiurides, crinoïdes, ascidies, certaines crevettes... Les
prélèvements réalisés dans le cadre de ce programme ont permis d’identifier les spécimens collectés,
soit en ne prélevant qu’un petite partie des individus (gorgones, antipathaires...), soit la totalité de
l’individu lorsque celui-ci était trop petit (hydraires par exemple).
C. Expertises faunistiques
Le tableau 2 présente les principaux experts ayant contribué à la réalisation de l’inventaire faunistique
des sites échantillonnés en zone mésophotique lors du programme MesoMay.
Tableau 2. Experts faunistiques des différents phylums ayant contribués à la détermination
des spécimens observés lors du programme MesoMay
Phylums Experts Intstituts / Universités
Antipathaires M. Bo Université de Gênes
Ascidies F. Monniot Museum National d'Histoire Naturelle
Asterides C. Mah Smithsonian Institution
Crinoïdes C. Messing Nova Southeastern University
Crustacés J. Poupin Ecole Navale BCRM
Crustacés A. Anker Universidade Federal do Ceara
Echinides C. De Ridder Université Libre de Bruxelles
Echinodermes et poissons T. Mulochau Bureau d'études Biorecif
Echinodermes C. Conand Université de La Réunion - MNHN
Echinodermes F. Ducarme Museum National d'Histoire Naturelle
Gorgones V. Philippot Naturum Etudes
Gorgones S. Sartoretto Ifremer
Hydrozoaires N. Bonnet Université de La Réunion
Hydrozoaires C. Bourmaud Université de La Réunion
Madréporaires G. Faure Université de La Réunion
Madréporaires L. Bigot Université de La Réunion
Mollusques R. Huet Association française de Conchyliologie
Mollusques P. Bouchet Museum National d'Histoire Naturelle
Mollusques L. Bozzetti Association Conchyliologique de Nouvelle-Caledonie
Nudibranches P. Bidgrain Association Vie Océane
Nudibranches F. Trentin Association Vie Océane
Octocoralliaires M. Schleyer The South African Association for Marine Biological Research
Ophiurides E. Boissin Ecole Pratique des Hautes Etudes
Ophiurides S. Stöhr Swedish Museum of Natural History
Poissons P. Durville Bureau d'études Galaxea
Poissons R. Fricke State Museum of Natural History Stuttgart
Poissons J. Wickel Marex
Spongiaires N. De Voogd Naturalis Biodiversity Center
Spongiaires M. Klautau Universidade Federal do Rio de Janeiro

BIORECIF p. 9
D’autres experts peuvent avoir été sollicités par ce réseau d’experts et n’apparaissent pas dans ce
tableau.
D. Bancarisation des données
L’ensemble des données déterminées par les experts est bancarisé dans la Base de Données Récif. La
bancarisation des données du pogramme MesoMay 2 et des données collectées lors de la mission ROV
en décembre 2019 avec le PNMM a été réalisée en octobre 2020 (cf. annexe 3)
III. Résultats
48 plongées ont été réalisées sur les 8 stations entre 65 et 145 m de profondeurs (Tab. 1 et Fig. 1).
Les stations les plus échantillonnées sont « Passe Bateau » et « Bouéni » avec respectivement 17 et 10
plongées et plusieurs centaines de photographies d’organismes et d’habitats de la zone mésophotique
réalisées sur ces deux sites. La zone entre la Passe Bouéni et la Passe Bateau regroupe 5 des 8 stations
échantillonnées en zone mésophotique et située sur les pentes externes de récif barrière du sud-ouest
de Mayotte. Un total de 34 plongées a été effectué sur cette zone de juin 2019 à mars 2020,
représentant environ 70 % des plongées réalisées dans le cadre de ce programme. Les autres sites
situés dans l’est de Mayotte, Passe en S, tombant des aviateurs et Saint Hélène, ont été échantillonnés
lors de la même période avec 14 plongées.
Un total 606 espèces a été inventorié sur les 8 stations dont 155 espèces de poissons, 324 mollusques,
28 crustacés, 80 cnidaires (dont 13 scléractiniaires, 38 hydraires, 14 gorgones, 5 coraux mous et 10
antipathaires), 14 échinodermes, 4 éponges et 1 platyhelminthe. Certaines déterminations n’ont pu
être faites qu’au niveau de la famille et, dans ce cas, il peut y avoir plusieurs genres ou espèces non
décrits dans cet inventaire au sein de chacune de ces familles. Certains phylums sont très sous évalués
en nombre d’espèces, notamment les porifères (« spongiaires ») et les tuniciers (« ascidies »), qui
doivent être prélevés pour être déterminés et qui nécessiteraient une ou plusieurs campagne(s)
dédiée(s) à leur inventaire.
Photo 1. Panorama présentant la biodiversité des récifs
mésophotiques à Mayotte (75 m Passe Bateau)

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A. Les poissons (Actinopterygii et Elasmobranchii)
389 images ont été analysées rigoureusement pour identifier et répertorier les différentes espèces de
poissons. Un total de 155 espèces a pu être comptabilisé (Tab. 3). 16 % sont uniquement décrites sous
leur nom de genre, car les photographies n’ont pas permis de les identifier à l’espèce. 92 d’entre-elles,
soit 59 %, sont généralement décrites comme des espèces typiquement coralliennes que l’on retrouve
sur les récifs à faible profondeur, telles que le poisson papillon Chaetodon lunula, le poisson soldat
Sargocentron diadema ou le zancle Zanclus cornutus. On montre ici qu’elles fréquentent aussi les
milieux beaucoup plus profonds. A l’inverse, 38 d’entre-elles, soit 24 %, sont des espèces typiquement
mésophotiques qui ne sont pas présentes sur les récifs de faible profondeur, comme le poisson
papillon Chaetodon mitratus, le barbier Pseudanthias pulcherrimus ou le labre Bodianus opercularis.
Les autres sont des espèces pélagiques (1 %) ou indéterminées (16 %).

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Genres - Espèces
Genres - Espèces
Genres - Espèces
Acanthurus dussumieri
Dendrochirus biocellatus
Paracheilinus mccoskeri
Acanthurus sp.
Dendrochirus zebra
Parapercis sp.
Aethaloperca rogaa
Diagramma labiosum
Parupeneus cyclostomus
Anampses lineatus
Dunckerocampus dactyliophorus
Parupeneus sp.
Aphareus furca
Echeneis naucrates
Plagiotremus rhinorhynchos
Apogon indicus
Ecsenius midas
Platax orbicularis
Apolemichthys trimaculatus
Epinephelus lanceolatus
Plectorhinchus gibbosus
Arothron meleagris
Epinephelus tukula
Plectranthias inermis
Arothron nigropunctatus
Fusigobius maximus
Plectranthias sp.
Balistoides conspicillum
Fusigobius sp.
Plectranthias winniensis
Bodianus anthioides
Galeocerdo cuvier
Plectropomus laevis
Bodianus bimaculatus
Genicanthus caudovittatus
Pomacanthus imperator
Bodianus diana
Genicanthus sp.
Pomacanthus semicirculatus
Bodianus opercularis
Gracila albomarginata
Pristiapogon fraenatus
Bryaninops sp.1
Gymnocranius griseus
Pristiapogon kallopterus
Bryaninops sp.2
Gymnocranius superciliosus
Pristipomoides sp.
Canthigaster smithae
Gymnosarda unicolor
Pseudanthias bimarginatus
Canthigaster tyleri
Gymnothorax flavimarginatus
Pseudanthias cooperi
Caranx ignobilis
Gymnothorax javanicus
Pseudanthias pulcherrimus
Caranx lugubris
Gymnothorax nudivomer
Pseudanthias squamipinnis
Caranx melampygus
Gymnothorax richardsonii
Pseudocheilinus evanidus
Caranx sexfasciatus
Gymnothorax sp.
Pseudochromis aureolineatus
Carcharhinus amblyrhynchos
Halichoeres iridis
Pseudodax moluccanus
Centropyge debelius
Halichoeres trispilus
Ptereleotris grammica
Centropyge multispinis
Heniochus acuminatus
Pterois antennata
Cephalopholis aurantia
Hippocampus jayakari
Pterois miles
Cephalopholis miniata
Hoplolatilus fronticinctus
Pygoplites diacanthus
Cephalopholis polleni
Hoplolatilus sp.
Remora sp.
Cephalopholis sexmaculata
Iracundus signifer
Sargocentron diadema
Cephalopholis sonnerati
Labroides dimidiatus
Sargocentron spiniferum
Cephalopholis spiloparaea
Lethrinus olivaceus
Scarus caudofasciatus
Chaetodon auriga
Liopropoma lunulatum
Scorpaenidae sp.
Chaetodon lunula
Liopropoma sp.
Scorpaenopsis oxycephalus
Chaetodon mitratus
Lutjanus argentimaculatus
Seriolina nigrofasciata
Chaetodon sp.
Lutjanus notatus
Sphyraena jello
Cheilodipterus artus
Luzonichthys waitei
Sphyrna lewini
Cheilodipterus sp.
Malacanthus brevirostris
Sufflamen bursa
Chlidichthys johnvoelckeri
Mola sp.
Synchiropus monacanthus
Chromis nigroanalis
Monotaxis grandoculis
Synchiropus stellatus
Chromis opercularis
Myripristis chryseres
Synodus sp.
Chromis pembae
Myripristis vittata
Taeniurops meyeni
Chromis sp.1
Naso hexacanthus
Torpedo fuscomaculata
Chromis sp.2
Naucrates ductor
Trimma anaima
Chromis sp.3
Nebrius ferrugineus
Trimma sp.
Cirrhilabrus sp.
Nemateleotris decora
Trimma taylori
Cirrhilabrus wakanda
Neoniphon aurolineatus
Variola albimarginata
Cirrhithichthys oxycephalus
Odonus niger
Xanthichthys auromarginatus
Cirrhitichthys aprinus
Ostorhinchus apogonoides
Zanclus cornutus
Coris caudimacula
Ostracion cubicus
Zapogon evermanni
Cymolutes sp.1
Oxycheilinus arenatus
Cymolutes sp.2
Oxycheilinus sp.
Dactyloptena orientalis
Oxycirrhites typus
Dascyllus trimaculatus
Paracaesio sordida
Total : 155 sp.
Tableau 3. 155 espèces de poissons ont été inventoriées à partir de photos et de vidéos prises
sur les sites situés en zone mésophotique à Mayotte lors de la seconde phase du
programme MesoMay

BIORECIF p. 12
Une analyse par familles et par nombre d’espèces de chaque famille, permet de mieux appréhender
la structure des peuplements dans cette zone mésophotique (Tab. 4).
Familles
Nombres d’espèces
Serranidae
22
Labridae
18
Pomacanthidae
8
Apogonidae
7
Gobiidae
7
Scorpaenidae
7
Pomacentridae
7
Carangidae
6
Chaetodontidae
5
Holocentridae
5
Lutjanidae
5
Muraenidae
5
Balistidae
4
Lethrinidae
4
Tetraodontidae
4
Acanthuridae
3
Cirrhitidae
3
Malacanthidae
3
Blenniidae
2
Callionymidae
2
Carcharhinidae
2
Echeneidae
2
Haemulidae
2
Microdesmidae
2
Mullidae
2
Pseudochromidae
2
Syngnathidae
2
Dactylopteridae
1
Dasyatidae
1
Ephippidae
1
Ginglymostomatidae
1
Molidae
1
Ostraciidae
1
Pinguipedidae
1
Scaridae
1
Scombridae
1
Sphryrnidae
1
Sphyraenidae
1
Synodontidae
1
Torpedinidae
1
Zanclidae
1
Total : 41 Familles
155 sp.
Tableau 4. Familles et nombres d’espèces par famille
Un total de 41 familles de poissons a pu être recensé pour les 155 espèces observées (Tab. 3 et 4). Les
familles les mieux représentées sont les Serranidae (mérous), avec 22 espèces comptabilisées dont 5
espèces d’Anthias, suivi des Labridae (girelles), avec 18 espèces répertoriées et des Pomacanthidae
(poissons anges), avec 8 espèces. Cette répartition est très différente de celle des récifs de faible
profondeur où les Pomacentridae (demoiselles), les Labridae (girelles) et les Chaetodontidae
(papillons), sont généralement les familles les mieux représentées, alors que les Serranidae (mérous)
présentent souvent une diversité spécifique plus faible (Werner et Allen, 1998).

BIORECIF p. 13
46 espèces de poissons sont nouvelles pour Mayotte et n’avaient pas encore été décrites dans les
études sous-marines précédentes (Wickel et Jamon, 2010 ; Wickel et al., 2014) (Tab. 5). Une partie
d’entre elles ont déjà été recensées lors de la phase 1 du programme.
Parmi ces espèces qui n’avaient pas encore été répertoriées à Mayotte, dix pourraient être nouvelles
pour la science (Tab. 5 espèces en rouge). Elles ont été indiquées par leur probable nom de genre telles
que Chromis sp.1, sp.2 et sp.3, Chaetodon sp., Cirrhilabrus sp., Cymolutes sp.1 et sp.2, Geniacanthus
sp., Hoplolatilus sp. ou Liopropoma sp. (photos 2). Pour pouvoir les identifier et les décrire
correctement, il serait nécessaire d’en prélever quelques individus car les photos ne permettent pas
une identification définitive.
Genres - Espèces
Genres - Espèces
Genres - Espèces
Apogon indicus
Genicanthus sp.
Plectranthias winniensis
Bodianus bimaculatus
Gymnocranius griseus
Pseudanthias bimarginatus
Bodianus opercularis*
Gymnocranius superciliosus
Pseudanthias pulcherrimus*
Centropyge debelius*
Gymnothorax nudivomer*
Pseudochromis
aureolineatus
Chaetodon sp.
Gymnothorax richardsonii
Ptereleotris grammica
Chlidichthys johnvoelckeri*
Halichoeres trispilus*
Remora sp.
Chromis pembae
Hoplolatilus sp.
Synchiropus monacanthus
Chromis sp.1*
Iracundus signifer
Synchiropus stellatus
Chromis sp.2
Liopropoma lunulatum
Trimma anaima
Chromis sp.3
Liopropoma sp.
Trimma taylori
Cirrhilabrus wakanda
Luzonichthys waitei*
Xanthichthys
auromarginatus
Cirrhilabrus sp.
Malacanthus brevirostris*
Zapogon evermanni
Cymolutes sp.1
Nemateleotris decora*
Cymolutes sp.2
Oxycheilinus arenatus*
Cirrhitichthys aprinus
Paracaesio sordida
Dunckerocampus
dactyliophorus*
Paracheilinus mccoskeri
Fusigobius maximus
Plectranthias inermis
Total : 46 sp.
Tableau 5. Espèces non répertoriées dans l’inventaire des poissons de Mayotte,
d’après Wickel et al., 2014, avec en rouge les espèces supposées nouvelles
pour la science et « sp* » espèces également observées lors de la phase 1
du programme

BIORECIF p. 14
Chromis sp.1 Chromis sp.2 Chromis sp.3
Chaetodon sp. ou Cirrhilabrus sp. Cymolutes sp.1 Cymolutes sp.2
Apolemichthys trimaculatus
juvénile ?
Genicanthus sp. Hoplolatilus sp. Liopropoma sp.
Photos 2. Espèces probablement nouvelles pour la Science et nécessitant d’être prélevées pour
être décrites
Analyse des régimes alimentaires des espèces de poissons observées en zone mésophotique
L’analyse des régimes alimentaires donne une image de la structure des peuplements de poissons
(Bozec, 2006). Dans un récif corallien en bonne santé, Harmelin-Vivien (1979) montre que l’ensemble
des carnivores (planctonophages, invertivores et piscivores) représentent généralement entre 60 et
80 % des espèces (dont 50 % d’invertivores), 10 à 20 % d’herbivores et 10 à 20 % d’omnivores. Si
l’habitat n’est pas modifié et si les impacts sont faibles, ces proportions restent temporellement
stables au sein d’une même région géographique (Letourneur et al., 1988).
Dans notre étude, on retrouve environ 50 % d’espèces invertivores, mais on observe un total de
carnivores (planctonophages, invertivores et piscivores) de plus de 90 % des espèces répertoriées (Fig.
3). Les herbivores ne représentent que 2 % et les omnivores 7 % des régimes alimentaires des espèces
de poissons observées. En zone mésophotique, la structure des peuplements est donc très différente
de celle des récifs coralliens de surface. La diminution de la lumière en grande profondeur est la cause
principale de cette différence, avec un basculement des régimes trophiques vers les carnivores strictes
(Coleman et al., 2018).

BIORECIF p. 15
On note également une très forte proportion de prédateurs (piscivores) qui représentent 25 % des
espèces observées, ce qui est supérieur aux valeurs habituellement notées sur les récifs coralliens qui
varient entre 7 et 22 % selon les sites (Wickel et al., 2014 ; Bruggmann et al., 2016). Beaucoup de ces
espèces présentent par ailleurs un grand intérêt commercial, comme les Serranidae (mérous) ou les
Carangidae (carangues) qui deviennent rares dans tout l’océan Indien en raison de la surpêche
(Guilhaumon et al., 2018).
Fig 3. Régimes alimentaires (en pourcentage du nombre d’espèces) –
(« H » : Herbivores, « I » : Invertivores, « O » : Omnivores, « P » :
Piscivores, « PI » : Planctonophages)
Vulnérabilité et statut de conservation des espèces de poissons observées
Parmi les espèces observées lors de cette campagne, six d’entre elles font l’objet d’un classement sur
la liste rouge des espèces menacées établit par l’UICN (2020).
Ce sont surtout les Chondrichtyens qui sont concernés, comme les Sphyrnidae avec Sphyrna lewini,
« en danger critique », observées sur plusieurs sites en bancs et qui fait également l’objet d’un
classement en annexe II de la CITES, les Carcharhinidae (Carcharhinus amblyrhynchos et Galeocerdo
cuvier, toutes deux « quasi menacées »), les Ginglymostomatidae (Nebrius ferrugineus,
« vulnérable »), les Dasyatidae (Taeniurops meyeni, « vulnérable ») et également certains
Ostéichtyens, comme les Serranidae (Epinephelus lanceolatus, « vulnérable ») (photos 3).
2%
48%
7%
25%
18%
H I O P Pl

BIORECIF p. 16
Sphyrna lewini Carcharhinus amblyrhynchos Galeocerdo cuvier
Nebrius ferrugineus Taeniurops meyeni Epinephelus lanceolatus
Photos 3. Six espèces de poissons observées en zone mésophotique lors du
programme MesoMay 2 font l’objet d’un classement UICN, dont le requin
marteau (en haut à gauche) « en danger critique » d’extinction
Révision des profondeurs maximales observées lors de MesoMay et décrites dans la bibliographie
Toutes les observations de cette campagne ont été réalisées à une profondeur supérieure à 50 m. Or,
59 % des espèces répertoriées ici sont généralement décrites, dans la littérature et dans les bases de
données, comme typiquement coralliennes et vivant à faibles profondeurs. Une révision semble donc
s’imposer (Tab. 6), au moins pour 24 espèces où les profondeurs maximales observées lors de
MesoMay sont beaucoup plus importantes que celles de la littérature, avec par exemple Labroides
dimidiatus (labre nettoyeur) décrite à une profondeur maximale de 40 m, observé à plusieurs reprises
sur le site de Passe bateau à plus de 70 m, Odonus niger (baliste bleu) décrite à une profondeur
maximale de 35-40 m et Scarus caudofasciatus (perroquet) donnée pour 40 m, observés sur le site de
Passe bateau à plus de 70 m.

BIORECIF p. 17
Genres - Espèces
FishBase
Myers
Genres - Espèces
FishBase
Myers
Genres - Espèces
FishBase
Myers
Acanthurus dussumieri
130
130
Dendrochirus biocellatus
40
40
Paracheilinus mccoskeri
50
?
Acanthurus sp.
Dendrochirus zebra
80
60
Parapercis sp.
Aethaloperca rogaa
60
54
Diagramma labiosum
?
40
Parupeneus cyclostomus
125
92
Anampses lineatus
45
42
Dunckerocampus
dactyliophorus
56
56
Parupeneus sp.
Aphareus furca
122
122
Echeneis naucrates
85
?
Plagiotremus rhinorhynchos
40
40
Apogon indicus
8
?
Ecsenius midas
40
30
Platax orbicularis
30
30
Apolemichthys trimaculatus
60
40
Epinephelus lanceolatus
200
100
Plectorhinchus gibbosus
25
20
Arothron meleagris
73
14
Epinephelus tukula
400
150
Plectranthias inermis
65
?
Arothron nigropunctatus
25
?
Fusigobius maximus
21
?
Plectranthias sp.
Balistoides conspicillum
75
75
Fusigobius sp.
Plectranthias winniensis
116
?
Bodianus anthioides
60
60
Galeocerdo cuvier
800
?
Plectropomus laevis
100
90
Bodianus bimaculatus
60
60
Genicanthus caudovittatus
70
70
Pomacanthus imperator
100
70
Bodianus diana
50
25
Genicanthus sp.
Pomacanthus semicirculatus
40
30
Bodianus opercularis
75
100
Gracila albomarginata
120
120
Pristiapogon fraenatus
50
25
Bryaninops sp.1
Gymnocranius griseus
80
100
Pristiapogon kallopterus
158
45
Bryaninops sp.2
Gymnocranius superciliosus
20
?
Pristipomoides sp.
Canthigaster smithae
40
37
Gymnosarda unicolor
250
100
Pseudanthias bimarginatus
65
?
Canthigaster tyleri
40
40
Gymnothorax flavimarginatus
150
150
Pseudanthias cooperi
91
60
Caranx ignobilis
188
80
Gymnothorax javanicus
50
46
Pseudanthias pulcherrimus
70
?
Caranx lugubris
354
?
Gymnothorax nudivomer
271
165
Pseudanthias squamipinnis
55
20
Caranx melampygus
190
190
Gymnothorax richardsonii
15
?
Pseudocheilinus evanidus
60
40
Caranx sexfasciatus
146
90
Gymnothorax sp.
Pseudochromis aureolineatus
30
?
Carcharhinus
amblyrhynchos
1000
274
Halichoeres iridis
43
43
Pseudodax moluccanus
60
40
Centropyge debelius
90
90
Halichoeres trispilus
56
56
Ptereleotris grammica
60
50
Centropyge multispinis
30
30
Heniochus acuminatus
178
75
Pterois antennata
86
50
Cephalopholis aurantia
300
250
Hippocampus jayakari
80
?
Pterois miles
85
50
Cephalopholis miniata
150
150
Hoplolatilus fronticinctus
70
60
Pygoplites diacanthus
80
48
Cephalopholis polleni
120
120
Hoplolatilus sp.
Remora sp.
Cephalopholis sexmaculata
150
150
Iracundus signifer
Sargocentron diadema
60
30
Cephalopholis sonnerati
150
150
Labroides dimidiatus
40
40
Sargocentron spiniferum
122
122
Cephalopholis spiloparaea
108
108
Lethrinus olivaceus
185
185
Scarus caudofasciatus
40
40
Chaetodon auriga
60
30
Liopropoma lunulatum
350
?
Scorpaenidae sp.
Chaetodon lunula
170
30
Liopropoma sp.
Scorpaenopsis oxycephalus
400
35
Chaetodon mitratus
80
68
Lutjanus argentimaculatus
120
120
Seriolina nigrofasciata
150
?
Chaetodon sp.
Lutjanus notatus
50
40
Sphyraena jello
200
?
Cheilodipterus artus
158
20
Luzonichthys waitei
55
35
Sphyrna lewini
1000
200
Cheilodipterus sp.
Malacanthus brevirostris
50
45
Sufflamen bursa
90
90
Chlidichthys johnvoelckeri
75
?
Mola sp.
Synchiropus monacanthus
428
?
Chromis nigroanalis
40
40
Monotaxis grandoculis
100
100
Synchiropus stellatus
40
?
Chromis opercularis
40
40
Myripristis chryseres
350
235
Synodus sp.
Chromis pembae
50
50
Myripristis vittata
80
80
Taeniurops meyeni
500
430
Chromis sp.1
Naso hexacanthus
150
137
Torpedo fuscomaculata
439
430
Chromis sp.2
Naucrates ductor
300
?
Trimma anaima
35
?
Chromis sp.3
Nebrius ferrugineus
70
70
Trimma sp.
Cirrhilabrus sp.
Nemateleotris decora
70
70
Trimma taylori
50
?
Cirrhilabrus wakanda
80
?
Neoniphon aurolineatus
188
160
Variola albimarginata
200
100
Cirrhithichthys oxycephalus
40
40
Odonus niger
40
35
Xanthichthys auromarginatus
150
147
Cirrhitichthys aprinus
40
40
Ostorhinchus apogonoides
60
30
Zanclus cornutus
182
182
Coris caudimacula
57
25
Ostracion cubicus
280
35
Zapogon evermanni
70
?
Cymolutes sp.1
Oxycheilinus arenatus
60
46
Cymolutes sp.2
Oxycheilinus sp.
Dactyloptena orientalis
100
45
Oxycirrhites typus
100
100
Total : 155 sp.
Dascyllus trimaculatus
55
55
Paracaesio sordida
200
100
Tableau 6. Révision des profondeurs maximales de l’aire de répartition verticale des espèces
indiquées dans la base de données FishBase et dans un ouvrage de référence (Lieske et
Myers, 1995) – en jaune les différences les plus marquées par rapport à nos observations
(entre 50 et 130 m)

BIORECIF p. 18
Bilan poissons MesoMay 2
A l’heure actuelle, l’inventaire des poissons marins de Mayotte fait état de 759 espèces pour 118
familles (Wickel et al., 2014). 14 % d’entre elles ont été observées lors de MesoMay 2 et 46 espèces
n’avaient jamais été inventoriées à Mayotte à notre connaissance, dont peut-être 10 nouvelles pour
la science.
L’étude des régimes alimentaires montre une structure des peuplements essentiellement constituée
de carnivores. La raréfaction des végétaux en grande profondeur explique cette composition trophique
peu structurée, contrairement aux récifs de surface qui comptent une plus grande diversité de régimes
alimentaires (Sandin et Sala, 2012). Ce peuplement mésophotique serait donc plus fragile et moins
résistant à certaines pressions (surpêche, pollution, modification de l’habitat…), à l'inverse des
peuplements de surface beaucoup plus diversifiés et peut-être davantage capables de s’adapter
(Wickel et al., 2014).
Certaines espèces observées lors de cette campagne, comme les requins et les mérous, sont rares et
sont considérées comme vulnérables et menacées. Elles ont également de fortes valeurs halieutiques
et quelques-unes comme le requin tigre et le requin marteau halicorne sont de grandes espèces
prédatrices pélagiques victimes de la surpêche (Pauly et Zeller, 2016). Le fait de pouvoir encore les
observer sur les tombants profonds des récifs de Mayotte témoigne d’une relative préservation de ces
écosystèmes. La grande profondeur et la difficulté d’accès constituent, pour l’instant, un frein à leurs
prélèvements. La zone mésophotique représenterait donc, à l’instar des monts sous-marins, un dernier
refuge pour ces espèces en danger (Durville et al., 2020).
La limite d’aire de répartition en profondeur est largement sous-estimée dans la littérature pour de
nombreuses espèces observées en zone mésophotique lors du programme MesoMay (Tab. 6). Les
observations faites montrent que beaucoup d’espèces observées zur les récifs proches de la surface
fréquentent également a zone mésophotique et font donc partie de ces espèces rustiques et
ubiquistes dont les populations s’adaptent à des habitats différents. Elles peuvent alors être
considérées comme moins vulnérables que d’autres dont l’aire de répartition se restreint soit aux
zones peu profondes, soit uniquement à la zone mésophotique. Cette information est essentielle dans
une approche de conservation au niveau spécifique, car elle permet de mieux cibler les espèces
fragiles.
Bilan poissons MesoMay 1, 2 et mission ROV
- 254 espèces de poissons ont été inventoriées sur les sites échantillonnés en zone
mésophotique à Mayotte.
- 53 d’entre-elles, soit 21 %, sont des espèces typiquement mésophotiques qui ne sont pas
présentes sur les récifs de faible profondeur.
- 59 espèces sont nouvelles pour Mayotte et n’étaient pas décrites dans la bibliographie de
référence (Wickel et Jamon, 2010 ; Wickel et al., 2014).
- 12 espèces pourraient être nouvelles pour la Science et nécessitent d’être prélevées pour être
décrites.

BIORECIF p. 19
B. Les mollusques (Mollusca)
Un total de 324 espèces de mollusques a été inventorié lors de la seconde phase du programme
MesoMay réparti au sein de 4 classes (Gastropoda, Bivalvia, Scaphopoda et Polyplacophora) et de 109
familles. La classe des Gastéropodes représentent 87 % des espèces recensées avec 285 espèces (Tab.
7a à 7d). Certaines espèces indéterminées, notées « sp » ou « aff », sont, soient indéterminables en
raison de l’état de la coquille ou non déterminables sur photo si l’échantillon n’a pas été prélevé, soient
nécessitent des expertises et des recherches plus poussées pour décrire l’espèce notamment en raison
d’un manque de bibliographie.
Les familles de mollusques les mieux représentées sont celles des Triphoridae et des Pyramidellidae
avec respectivement 33 et 23 espèces inventoriés (Tab. 7a à 7d et photos 4).
Photos 4. Exemples de micro-gastéropodes échantillonnés dans le sable en zone
mésophotique à Mayotte : Subulophora peasi 5,6mm (Triphoridae) ; Pyrgulina
consobrina 3mm (Pyramidellidae) ; Inella asperrima 3,5mm (Triphoridae)

BIORECIF p. 20
Tableau 7a et 7b. 285 espèces de mollusques gastéropodes ont été inventoriées dans le cadre du
programme MesoMay 2
Classes Familles Genres/Espèces
Gastropoda Anabathridae Afriscrobs quantilla
Gastropoda Ancillariidae Ancilla sarda
Gastropoda Angariidae Angaria
Gastropoda Arcidae Arca aff. ventricosa
Gastropoda Arcidae Arca avellana
Gastropoda Areneidae sp
Gastropoda Assimineidae Assiminea aff. sinensis
Gastropoda Atlantidae Atlanta aff. gaudichaudi
Gastropoda Atlantidae Atlanta aff. inflata
Gastropoda Barleeiidae Barleeia
Gastropoda Bellolividae Olivellopsis amoni
Gastropoda Caecidae Caecum aff. inhacaense
Gastropoda Caecidae Caecum farcimen
Gastropoda Caecidae Caecum gracile
Gastropoda Caecidae Caecum sepimentum
Gastropoda Caecidae Parastrophia cygnicollis
Gastropoda Calliostomatidae sp
Gastropoda Cavoliniidae Telodiacria quadridentata
Gastropoda Cavoliniidae sp
Gastropoda Cerithiidae Bittium aff . glareosum
Gastropoda Cerithiidae Cerithidium aff. actinium
Gastropoda Cerithiidae Cerithidium cerithinum
Gastropoda Cerithiidae Cerithidium diplax
Gastropoda Cerithiidae Cerithium aff. rostratum
Gastropoda Cerithiidae Cerithium af f. citrinum
Gastropoda Cerithiidae Cerithium echinatum
Gastropoda Cerithiidae Cerithium zebrum
Gastropoda Cerithiidae Ittibittium aff. parcum
Gastropoda Cerithiidae Pictorium versicolor
Gastropoda Cerithiidae Rhinoclavis aspera
Gastropoda Cerithiidae Varicopeza pauxilla
Gastropoda Cerithiopsidae
Belonimorphis belonimorphis
Gastropoda Cerithiopsidae Cerithiopsis aff . hedista
Gastropoda Cerithiopsidae Cerithiopsis aff. boucheti
Gastropoda Cerithiopsidae Cerithiopsis aff . jousseaumei
Gastropoda Cerithiopsidae Cerithiopsis eutrapela
Gastropoda Cerithiopsidae Horologica aff. interiecta
Gastropoda Cerithiopsidae Horologica aff. martini
Gastropoda Cerithiopsidae Horologica macrocephala
Gastropoda Cerithiopsidae Joculator af f. murciai
Gastropoda Cerithiopsidae Joculator af f. megacephala
Gastropoda Charoniidae Charonia tritonis
Gastropoda Chromodorididae Chromodoris boucheti
Gastropoda Chromodorididae Chromodoris lochi
Gastropoda Chromodorididae Hypselodoris bullockii
Gastropoda Clathurellidae Etremopa royi
Gastropoda Clathurellidae Lienardia aff. strombillum
Gastropoda Clathurellidae Nannodiella acricula
Gastropoda Cliidae Clio pyramidata
Gastropoda Coloniidae Bothropoma aff. isseli
Gastropoda Coloniidae Collonista rubricincta
Gastropoda Coloniidae Homalopoma quantillum
Gastropoda Colubrariidae Colubraria aff. tenera
Gastropoda Columbellidae Euplica ionida
Gastropoda Columbellidae Mitrella moleculina
Gastropoda Columbellidae Seminella peasei
Gastropoda Columbellidae Zafra morini
Gastropoda Columbellidae Zafra ocellatula
Gastropoda Columbellidae Zafra succinea
Gastropoda Columbellidae Zafrona isomella
Gastropoda Conidae Conasprella aff. articulata
Gastropoda Conidae Conus barthelemyi
Gastropoda Conidae Conus tessulatus
Gastropoda Conradiidae Crosseola aff. cuvieriana
Gastropoda Costelariidae Vexillum aff. castum
Gastropoda Costelariidae Vexillum aff. emiliae
Gastropoda Costelariidae Vexillum aff. sculptile
Gastropoda Costelariidae Vexillum aff. virginale
Gastropoda Costelariidae Vexillum bipartitum
Gastropoda Costelariidae Vexillum rubrum
Classes Familles Genres/Espèces
Gastropoda Creseidae Crese is aff . conica
Gastropoda Creseidae Creseis acicula
Gastropoda Creseidae Creseis clava
Gastropoda Creseidae Creseis virgula
Gastropoda Creseidae Styliola subula
Gastropoda Cylichnidae Cylichna aff. minuta
Gastropoda Cylichnidae Cylichna aff. dulcis
Gastropoda Cypraeidae Cypraea tigris
Gastropoda Cypraeidae Leporicypraea aff. rosea
Gastropoda Cypraeidae Leporicypraea mappa
Gastropoda Cystiscidae Cystiscus aff. minutissimus
Gastropoda Cystiscidae Cystiscus aff. viaderi
Gastropoda Cystiscidae Cystiscus bougei
Gastropoda Cystiscidae Cystiscus sandwicensis
Gastropoda Cystiscidae Gibberula aff. spiriplana
Gastropoda Dialidae Diala aff. sulcifera
Gastropoda Discodorididae Halgerda
Gastropoda Discodorididae Halgerda aff. carlsoni
Gastropoda Discodorididae Halgerda wasinensis
Gastropoda Ellobiidae sp
Gastropoda Ellobiidae Melampus granife
Gastropoda Eoacmaeidae E oacmaea profunda
Gastropoda Epitoniidae Alora aff. rapunculus
Gastropoda Epitoniidae Amaea globularis
Gastropoda Epitoniidae Epidendrium sordidum
Gastropoda Epitoniidae Epitonium aff. gradilis
Gastropoda Eulimidae Cyclonidea dondani
Gastropoda Eulimidae Eulima aff. gentilomiana
Gastropoda Eulimidae Fusceulima
Gastropoda Eulimidae Hemiliostraca amamiensis
Gastropoda Eulimidae Melanella aff. acicula
Gastropoda Eulimidae Pyramidelloides mirandus
Gastropoda Eulimidae Scalenostoma
Gastropoda Eulimidae Sticteulima lentiginosa
Gastropoda Eulimidae aff. Annulobalcis
Gastropoda Eulimidae aff. Melanella
Gastropoda Fissurellidae Emarginula costulata
Gastropoda Fissurellidae Emarginula decorata
Gastropoda Granulinidae Granulina aff . isseli
Gastropoda Granulinidae Marginellopsis
Gastropoda Haminoeidae Vellicolla ooformis
Gastropoda Heliconoididae Heliconoides inflatus
Gastropoda Hipponicidae Hipponix aff. radiata
Gastropoda Hipponicidae Hipponix antiquatus
Gastropoda Hipponicidae Sabia conica
Gastropoda Horaiclavidae Carinapex minutissima
Gastropoda Iravadiidae Chevallieria columen
Gastropoda Iravadiidae Turbonilla aff. concinna
Gastropoda Juliidae Julia
Gastropoda Liotiidae Cyclostrema alveolatum
Gastropoda Liotiidae Cyclostre ma sulcatum
Gastropoda Lottiidae Notoacmea flammea
Gastropoda Lottiidae Patelloida
Gastropoda Mangeliidae Eucithara aff. cazioti
Gastropoda Mangeliidae Eucithara aff. pusilla
Gastropoda Mangeliidae Eucithara coronata
Gastropoda Mangeliidae Heterocithara bilineata
Gastropoda Mangeliidae Heterocithara himerta
Gastropoda Mangeliidae Pseudorhaphitoma drivasi
Gastropoda Marginellidae Dentimargo pumilus
Gastropoda Marginellidae Hydroginella osteri
Gastropoda Marginellidae Marginella gennesi
Gastropoda Marginellidae Serrata serrata
Gastropoda Mitridae Roseomitra rosacea
Gastropoda Mitromorphidae Anarithma metula
Gastropoda Mitromorphidae Mitromorpha aff. poppei
Gastropoda Muricidae Chicoreus aff. microphyllus
Gastropoda Muricidae Drupella aff. fragum
Gastropoda Muricidae Morula coronata
Gastropoda Nassariidae N assarius aff. delicatus
Gastropoda Naticidae aff. Polinices
Gastropoda Naticidae Tanea undulata

BIORECIF p. 21
Tableau 7c et 7d. 285 espèces de mollusques gastéropodes ont été inventoriées dans le cadre du programme
MesoMay 2
Classes Familles Genres/Espèces
Gastropoda Omalogyridae Ammonicera japonica
Gastropoda Omniglyptidae Omniglypta
Gastropoda Orbitestellidae O rbiteste lla regina
Gastropoda Ovulidae aff. Phenacovolva
Gastropoda Ovulidae Phenacovolva rosea
Gastropoda Philinidae Philine rubrata
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidia
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidia aff . alyta
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidia ocellata
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiella aff. shireenae
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiella aff. meandrina
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiella af f. rosans
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiopsis aff. holothuriana
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiopsis gemmata
Gastropoda Phyllidiidae Phyllidiopsis shireenae
Gastropoda Phyllidiidae Reticulidia suzanneae
Gastropoda Pickwothiidae Sansonia shigemitsui
Gastropoda Pickwothiidae Sansonia sumatrensis
Gastropoda Pisaniidae Engina spica
Gastropoda Plyceridae Tambja
Gastropoda
Pseudomelatomidae
Otitoma cyclophora
Gastropoda Pyramidellidae Babella aff. gloria
Gastropoda Pyramidellidae Babella caledonica
Gastropoda Pyramidellidae Babella mariellaeformis
Gastropoda Pyramidellidae Chrysallida cancellata
Gastropoda Pyramidellidae Chrysallida pura
Gastropoda Pyramidellidae Cingulina isseli
Gastropoda Pyramidellidae Cingulina laticingulata
Gastropoda Pyramidellidae Costabieta portentosa
Gastropoda Pyramidellidae Eulimastoma eutropia
Gastropoda Pyramidellidae Kongsrudia mutata
Gastropoda Pyramidellidae Longchaeus turritus
Gastropoda Pyramidellidae Megastomia zaleuca
Gastropoda Pyramidellidae Odetta bosyuensis
Gastropoda Pyramidellidae Odostomella af f. opaca
Gastropoda Pyramidellidae Odostomia gulicki
Gastropoda Pyramidellidae Polemicella dautze nbergi
Gastropoda Pyramidellidae Polemicella polemica
Gastropoda Pyramidellidae Pyrgulina aff. melvilli
Gastropoda Pyramidellidae Pyrgulina consobrina
Gastropoda Pyramidellidae Syrnola subulina
Gastropoda Pyramidellidae Turbonilla aff. scalpidens
Gastropoda Pyramidellidae T urbonilla aff. coromandelica
Gastropoda Pyramidellidae Turbonilla af f. acicularis
Gastropoda Raphitomidae Daphnella aff. boholensis
Gastropoda Raphitomidae Kermia aff. cavernosa
Gastropoda Raphitomidae Kermia aff. daedalea
Gastropoda Raphitomidae Pseudodaphnella nexa
Gastropoda Raphitomidae T ritonoturris aff. capensis
Gastropoda Raphitomidae Veprecula aff. arethusa
Gastropoda Retusidae R etusa minima
Gastropoda Ringiculidae Ringicula prismatica
Gastropoda Rissoelidae Rissoella globosa
Gastropoda Rissoidae Alvania aff. suprasculpta
Gastropoda Rissoidae Alvania aff. hueti
Gastropoda Rissoidae Benthonella aff. decorata
Gastropoda Rissoidae Haurakia marmorata
Gastropoda Rissoidae Lucidestea aff. vitrea
Gastropoda Rissoidae Lucidestea ina
Gastropoda Rissoinidae Phosinella digera
Gastropoda Rissoinidae Rissoina aff. deshayesi
Gastropoda Rissoinidae Rissoina aff. obeliscus
Gastropoda Rissoinidae Rissoina balteata
Gastropoda Rissoinidae Rissoina costulata
Gastropoda Rissoinidae Rissoina nivea
Gastropoda Rissoinidae Rissoina sculpturata
Gastropoda Samlidae Samla bilas
Gastropoda Scaliolidae Finella aff. purpureoapicata
Gastropoda Scaliolidae Finella pupoides
Gastropoda Scaliolidae Scaliola arenosa
Gastropoda Scaliolidae Scaliola elata
Gastropoda Scaliolidae Scaliola glareosa
Classes Familles Genres/Espèces
Gastropoda Scissurellidae Scissurella rota
Gastropoda Scissurellidae Sinezona singeri
Gastropoda Skeneidae Dillwynella aff. planorbis
Gastropoda Skeneidae Leucorhynchia caledonica
Gastropoda Skeneidae Leucorhynchia crossei
Gastropoda Skeneidae L odderia lodderae
Gastropoda Skeneidae Rotostoma impleta
Gastropoda Solecurtidae Azorinus cunhai
Gastropoda Tornatinidae Acteocina involuta
Gastropoda Tornatinidae Acteocina af f. tenuistriata
Gastropoda Tornidae Cyclostremiscus nodiferus
Gastropoda Tornidae Lophocochlias parvissimus
Gastropoda Tornidae Sigaretornus planus
Gastropoda Tornidae sp
Gastropoda Trimusculidae Trimusculus mauritianus
Gastropoda Trinchesiidae Trinchesia sibogae
Gastropoda Triphoridae Coriophora aff. fusca
Gastropoda Triphoridae Euthymella aff. bilix
Gastropoda Triphoridae Euthymella concors
Gastropoda Triphoridae Euthymella elegans
Gastropoda Triphoridae He dleytriphora elata
Gastropoda Triphoridae Hedleytriphora scitula
Gastropoda Triphoridae Inella asperrima
Gastropoda Triphoridae Iniforis douvillei
Gastropoda Triphoridae Mastonia aff . maenades
Gastropoda Triphoridae Mastonia aff . millepunctata
Gastropoda Triphoridae Mastonia aff. maenades
Gastropoda Triphoridae Mastonia aff. adamsi
Gastropoda Triphoridae Mastonia algens
Gastropoda Triphoridae Mastonia hindsi
Gastropoda Triphoridae Mastonia pe rlata
Gastropoda Triphoridae Mastonia undata
Gastropoda Triphoridae Mastoniaeforis chaperi
Gastropoda Triphoridae Metaxia albicephala
Gastropoda Triphoridae Metaxia brunnice phala
Gastropoda Triphoridae Mitromorpha kilburni
Gastropoda Triphoridae Monophorus aff. atratus
Gastropoda Triphoridae Obesula levukensis
Gastropoda Triphoridae Subulophora peasi
Gastropoda Triphoridae Subulophora rutilans
Gastropoda Triphoridae Triphora aff. shepstonensis
Gastropoda Triphoridae Triphora aff. aethiopica
Gastropoda Triphoridae Triphora aff. africana
Gastropoda Triphoridae Triphora formosa
Gastropoda Triphoridae Triphora mirifica
Gastropoda Triphoridae Triphora tubifera
Gastropoda Triphoridae Viriola abbotti
Gastropoda Triphoridae Viriola intergranosa
Gastropoda Triphoridae Viriola tricincta
Gastropoda Trochidae Broderipia eximia
Gastropoda Trochidae Calliotrochus marmoreus
Gastropoda Trochidae Clanculus aff. ceylonicus
Gastropoda Trochidae Pagodatrochus variabilis
Gastropoda Trochidae Pseudominolia biangulosa
Gastropoda Trochidae Pseudominolia sple ndens
Gastropoda Trochidae Umbonium vestiarium
Gastropoda Trochoidea Lodderena ornata
Gastropoda Turbinidae Bolma
Gastropoda Turbinidae Lunella coronata
Gastropoda Turridae Lophiotoma abbreviata
Gastropoda Turridae Turridrupa bijubata
Gastropoda Turridae Turritella cingulifera
Gastropoda Turridae Turritella gracillima
Gastropoda Turritellidae Colpospira aff. runcinata
Gastropoda Umbraculidae U mbraculum
Gastropoda Vanikoridae Vanikoro aff. granifera
Gastropoda Vanikoridae Vanikoro acuta
Gastropoda Vermetidae sp
Gastropoda Vitrinellidae Circulus novemcarinatus
Gastropoda Vitrinellidae Circulus octoliratus
Gastropoda Vitrinellidae Pseudoliotia aff . henjamensis

BIORECIF p. 22
Certaines espèces remarquables de gastéropodes ont été observés comme Conus barthelemyi
échantillonné à 130 m de profondeur sur la station Passe en S et recensé seulement pour la seconde
fois à Mayotte ou Charonia tritonis observé à 80 m à Bouéni (Photos 5).
Photo 5. Conus barthelemyi très rarement observé à Mayotte (à gauche) et
Charonia tritonis (à droite) observés lors de MesoMay 2
Ces espèces (photos 5) sont menacées sur certaines zones récifales du sud ouest de l’océan Indien,
comme à La Réunion où elles ont été considérées comme espèces déterminantes lors des Znieff
marines.
Plusieurs espèces de micro-gastéropodes inconnus ou rarement observés à Mayotte ont été
échantillonnées comme Babella caledonica (85 m, Passe en S), B. mariellaeformis (100 m, tombant des
aviateurs) ou Kermia aff. cavernosa (85 m, Passe en S) (Photos 6).
Photos 6. Babella caledonica 1 mm (à gauche) et Kermia aff. cavernosa 2.7 mm (à
droite)

BIORECIF p. 23
35 espèces de bivalves, 1 espèce de polyplacophores et 3 espèces de scaphopodes ont été recensées
lors de MesoMay 2 (Tab. 8).
Tableau 8. 35 bivalves, 3 scaphopodes et 1 polyplacophore ont été recensés dans le cadre de
MesoMay 2

BIORECIF p. 24
Le nombre total de mollusques recensés dans le cadre de MesoMay 1 et 2 est de 134 familles et 331
espèces. La collecte de petites quantités de sable en zone mésophotique lors de la seconde partie du
programme a permis d’inventorier de nombreux micro-mollusques présents dans le sédiment et qui
sont dominants dans cet inventaire non exhaustif des mollusques. Certains mollusques, comme Conus
barthelemyi, certaines espèces du genre Babella,… sont caractéristiques des ECM, mais il est difficile
de fournir une liste des espèces de mollusques mésophotiques observés à Mayotte car de nombreuses
espèces se rencontrent également sur les récifs euphotiques. De plus, certaines coquilles
échantillonnées en zone mésophotique peuvent provenir des zone récifales proches de la surface et
se retrouver plus en profondeur après avoir dérivé ou coulé le long du récif.
L’espèce Triplostephanus hoaraui avait été observée lors de MesoMay 1 (Mulochau et al., 2019), et, à
notre connaissance, n’avait pas encore été échantillonnée à Mayotte
(http://www.gastropods.com/6/Shell_11956.shtml ; Drivas, J. & Jay, M., 1988).
Lors de la mission MesoMay ROV réalisée en décembre 2019 avec le Parc Naturel Marin de Mayotte,
une seiche tropicale (Sepia latimanus) avait été observée en zone mésophotique (photo 7).
Photo 7. Une seiche tropicale (Sepia latimanus)
observée en zone mésophotique à 85 m
de fond à l’aide d’un ROV sur le grand
récif nord-est de Mayotte

BIORECIF p. 25
C. Les crustacés (Crustacea)
28 espèces de crustacés ont été inventoriées réparties au sein de 15 familles dont la mieux représentée
regroupe des genres et espèces de crevettes appartenant à la famille des Palaemonidae (Tab. 9 et
photos 8). Parmi ces espèces, deux n’avaient jamais été observées sur Mayotte.
Tableau 9. 28 espèces de mollusques ont été échantillonnées dans le cadre de la seconde
phase du programme MesoMay. Deux espèces n’avaient jamais été observées à
Mayotte (= « Nouvelle espèce Mayotte »)

BIORECIF p. 26
Photos 8. Munida barbeti (en haut à gauche), Rhynchocinetes aff. conspiciocellus (en haut à
droite) et Gonioinfradens paucidentatus (en bas à gauche) ont été observés en zone
mésophotique à Mayotte lors du programme MesoMay 2. Quadrella serenei a été
observé pour la première fois à Mayotte (en bas à droite)
Le nombre total de crustacés recensés dans le cadre de MesoMay 1 et 2 est de 23 familles et 46
espèces. La famille des Palaemonidae est la mieux représentée avec 9 espèces. L’ensemble des
données MesoMay ont été transmises à Joseph Poupin, expert crustacés, qui a bancarisé les données
dans une base de données publique (Legall & Poupin, 2020) dédiée à ce phylum :
http://crustiesfroverseas.free.fr/search_result.php?refregion=Mesophotic.
Sept nouvelles espèces de crustacés ont été recensées lors de MesoMay 1 et 2 (Tab. 10) dont une
potentiellement nouvelle pour la Science, qui nécessite d’être prélevée pour être décrite.
Tableau 10. Sept nouvelles espèces pour Mayotte ont été recensées lors de MesoMay 1 et 2
dont une potentiellement nouvelle pour la Science

BIORECIF p. 27
D. Les échinodermes (Echinodermata)
14 espèces d’échinodermes ont été inventoriées en zone mésophotique lors du programme MesoMay
2. La famille des Holothuriidae est la mieux représentée avec 4 espèces (Tab. 11 et photos 9). Des
prélèvements d’ophiures ont permis de confirmer l’espèce Ophiothrix purpurea par barcoding en
collaboration avec le Criobe et Emilie Boissin, et des prélèvements d’Actinopyga caerulea et
d’Holothuria edulis ont été réalisés pour la génétique en collaboration avec l’université de Floride et
Gustav Paulay, les résultats sont toujours en attente et seront présentés dans le rapport MesoMay 3.
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Asteroidea
Goniasteridae
Ferdina mena
Asteroidea
Goniasteridae
Fromia nodosa
Asteroidea
Ophidiasteridae
sp
Crinoidea
Antedonidae
aff. Dorometra mauritiana
Crinoidea
Colobometridae
Cenometra bella
Crinoidea
Colobometridae
Decametra
Echinoidea
Diadematidae
Diadema
Holothuroidea
Holothuriidae
Actinopyga caerulea
Echantillons de téguments
Holothuroidea
Holothuriidae
Holothuria edulis
Echantillons de téguments
Holothuroidea
Holothuriidae
Holothuria aff. leucospilota
Nouvelle espèce Mayotte
Holothuroidea
Holothuriidae
Holothuria fuscopunctata
Ophiuroidea
Ophiotrichidae
Ophiothrix aff. lepidus
Ophiuroidea
Ophiotrichidae
Ophiothrix
Ophiuroidea
Ophiotrichidae
Ophiothrix purpurea
Barcoding CRIOBE
Tableau 11. 14 espèces d’échinodermes ont été inventoriées lors du programme MesoMay 2

BIORECIF p. 28
Photos 9. Ferdina mena n’avait jamais été observée à Mayotte à 75 m de profondeur
(en haut à gauche), H. edulis semble être assez fréquente en zone
mésophotique à Mayotte (en haut à droite). Les oursins sont très rarement
observés en zone mésophotique lors du programme MesoMay, ce diadème a
été observé à 70 m de profondeur (en bas à gauche). Holothuria fuscopunctata,
observée à 80 m, est une espèce commerciale, impactée par la pêche aux
holothuries dans de nombreuses zones de l’indo-Pacifique, les zones
mésophotiques pourraient être des zones refuges pour certaines espèces
d’holothuries (en bas à droite)
Le nombre total d’échinodermes recensés lors de MesoMay 1 et 2 est de 26 espèces réparties dans 12
familles. Deux nouvelles espèces d’holothuries ont été inventoriées pour Mayotte, Holothuria aff.
leucopsilota dont le nom d’espèce reste à confirmer par des prélèvements qui n’ont pas pu être
réalisés et H. coronopertusa qui n’avait pas été observée dans l’océan Indien. Cette espèce a fait l’objet
d’une publication scientifique dans le bulletin de la Bêche de Mer de la Commission du Pacifique Sud
(Mulochau et al., 2020). Un spécimen vivant de l’oursin Chondrocidaris aff. gigantea a été observé
pour la première fois à Mayotte à 157 m de profondeur lors de la mission ROV avec le PNMM en
décembre 2019 (Mulochau et al., 2020) (photos 10).

BIORECIF p. 29
Photos 10. Holothuria coronopertusa (en haut à gauche) et H. aff. leucospilota (en haut à droite)
n’avaient jamais été observées à Mayotte et ont été inventoriés lors de la phase 1 et
2 du programme MesoMay. L’oursin Chondrocidaris aff. gigantea (en bas à gauche)
observé à 157 m de profondeur à l’aide d’un ROV en décembre 2019 (mission PNMM)
et 9 espèces d’holothuries ont été observées en zone mésophotique lors de ce
programme (ici Stichopus pseudohorrens, en bas à droite)

BIORECIF p. 30
E. Les scléractiniaires (coraux durs) (Cnidaria – Anthozoa – Hexacorallia)
13 espèces de scléractiniaires ont été inventoriées lors de la phase 2 du programme MesoMay. Le
genre Leptoseris reste le mieux représenté au sein de l’ordre des scléractiniaires avec 4 espèces. Deux
espèces sont nouvelles pour Mayotte : Leptoseris troglodyta, espèce sans zooxanthelle, qui n’avait
jamais été observé dans l’océan Indien et dont plusieurs spécimens ont été observés dans une grotte.
Cette espèce a fait l’objet d’une publication scientifique (Pichon et al., 2020). L’espèce
Duncanopsammia aff. axifuga est également nouvelle pour Mayotte et n’était pas référencée dans le
sud ouest de l’océan Indien (Tab. 12 et photos 11).
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Anthozoa
Fungiidae
Cycloseris wellsi
Anthozoa
Dendrophylliidae
Duncanopsammia aff. axifuga
nouvelle pour Mayotte
Anthozoa
Lobophylliidae
Echinophyllia aff. aspera
Anthozoa
Fungiidae
Fungia
Anthozoa
Agariciidae
Leptoseris aff. troglodyta
nouvelle pour l'océan Indien
Anthozoa
Agariciidae
Leptoseris scabra
Anthozoa
Agariciidae
Leptoseris aff. foliosa
Anthozoa
Agariciidae
Leptoseris hawaiensis
Anthozoa
Pocilloporidae
Madracis hellana
Anthozoa
Psammocoridae
Psammocora aff. explanulata
Anthozoa
Coscinaraeidae
Craterastrea levis
Anthozoa
Caryophyllidae
aff. Polycyathus
Anthozoa
Dendrophylliidae
Tubastrea aurea
Tableau 12. 13 espèces de scléractiniaires ont été inventoriées en zone mésophotique à
Mayotte

BIORECIF p. 31
Photos 11. Plusieurs spécimens de Leptoseris troglodyta ont été observés dans une grotte en
zone mésophotique à Mayotte (en haut à gauche), cette espèce n’avait jamais été
échantillonnée dans l’océan Indien. Duncanopsammia aff. axifuga est également une
espèce de scléractiniaire nouvelle pour Mayotte (en haut à droite). Le genre
Leptoseris semble dominant sur les sites échantillonnés lors du programme
MesoMay (en bas à droite et à gauche)
Le nombre total de scléractiniaires recensés lors des phases 1 et 2 du programme MesoMay est de 18
espèces réparties dans 11 familles. Le genre de scléractinaires dominant en zone mésophotique à
Mayotte sur les sites échantillonnés semble être Leptoseris (photos 11). La phase 2 du programme a
permis de prélever certains spécimens et de les déterminer, avec certaines espèces qui s’avèrent être
nouvelles pour Mayotte (Tableau 12).

BIORECIF p. 32
F. Les hydraires (Cnidaria – Hydrozoa)
Au moins 38 espèces et 16 familles d’hydraires ont été observées dans le cadre de MesoMay 2, mais
seulement 18 ont pu être identifiés jusqu’à l’espèce car leur détermination à partir de photos reste
difficile et des prélèvements sont nécessaires pour recenser les différentes espèces d’hydraires
(Photos 12 et Tab. 13). Les familles des Aglaopheniidae et des Halopterididae semblent les mieux
représentées sur les sites échantillonnés en zone mésophotique dans le cade de ce programme.
Cladocarpus keiensis n’avait jamais été échantillonné à Mayotte et est une espèce mésophotique avec
Zygophylax rufa et Hincksella cylindrica. Les hydraires sont vraisemblablement l’une des classes de
cnidaires « sous échantillonnée » dans cet inventaire.
Photos 12. Quelques exemples d’espèces d’hydraires observées en zone mésophotique à
Mayotte lors du programme MesoMay avec Egmundella amirantensis (en haut
à gauche), les polypes déployés d’une colonie de Sertularella diaphana (en haut
à droite), Gymnangium hians (en bas à gauche) et Stylaster aff. flabelliformis (en
bas à gauche)
Le nombre total d’hydraires recensés lors des phases 1 et 2 du programme MesoMay est d’au moins
40 espèces réparties dans 16 familles.

BIORECIF p. 33
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Hydrozoa
Aglaopheniidae
aff. Gymnangium
Hydrozoa
Aglaopheniidae
aff. Lytocarpia phyteuma
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Cladocarpus keiensis
Nouvelle sp Mayotte
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Gymnangium hians
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Lytocarpia phyteuma
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Lytocarpia aff. brevirostris
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Macrorhynchia
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Taxella gracilicaulis
Hydrozoa
Aglaopheniidae
Taxella hornelli
Hydrozoa
Campanulariidae
aff. Obelia
Hydrozoa
Campanulariidae
Clytia
Hydrozoa
Campanulinidae
Egmundella amirantensis
Hydrozoa
Clavidae
aff. Turritopsis
Hydrozoa
Clavidae
Hydrozoa
Eudendriidae
Eudendrium
sp1
Hydrozoa
Eudendriidae
Eudendrium
sp 2
Hydrozoa
Eudendriidae
Eudendrium
sp 3
Hydrozoa
Haleciidae
Halecium
sp
Hydrozoa
Halopterididae
Antennella balei
Hydrozoa
Halopterididae
Antennella aff. secundaria
Hydrozoa
Halopterididae
Halopteris
sp
Hydrozoa
Halopterididae
Halopteris
sp 1
Hydrozoa
Halopterididae
Halopteris
sp 2
Hydrozoa
Halopterididae
Monostaechas
sp 1
Hydrozoa
Halopterididae
Monostaechas
sp 2
Hydrozoa
Kirchenpaueridae
Hydrozoa
Lafoeidae
Hydrozoa
Oceaniidae
Oceania armata
Hydrozoa
Plumulariidae
aff. Plumularia
Hydrozoa
Plumulariidae
Antennella
Hydrozoa
Plumulariidae
Plumularia aff. setacea
Hydrozoa
Sertulariidae
aff. Sertularella
Hydrozoa
Sertulariidae
Dynamena aff.quadridenta
Hydrozoa
Sertulariidae
sp2
Hydrozoa
Sertulariidae
Sertularella delicata
Hydrozoa
Sertulariidae
Sertularella diaphana
Hydrozoa
Stylasteridae
Stylaster aff. flabelliformis
Hydrozoa
Syntheciidae
Hincksella cylindrica
Hydrozoa
Syntheciidae
Synthecium aff.patulum
Hydrozoa
Syntheciidae
Synthecium
sp1
Hydrozoa
Thecatae
Hydrozoa
Thyroscyphidae
Thyroscyphus bedoti
Hydrozoa
Zygophylacidae
Zygophylax rufa
Tableau 13. Au moins 38 espèces d’hydraires ont été observées en zone mésophotique à
Mayotte lors de la phase 2 du programme MesoMay. Cladocarpus keiensis est
une espèce nouvelle pour Mayotte

BIORECIF p. 34
G. « Les Gorgones » (Cnidaria – Octocorallia - Alcyonacea)
Au moins 14 espèces et 4 familles de gorgones ont été observées en zone mésophotique sur les sites
échantillonnés et seulement 3 individus ont pu être déterminées à l’espèce (Tableau 14 et photos 13).
Les prélèvements réalisés d’une petite partie des gorgones sur certains spécimens ont permis
d’accroitre les connaissances sur les genres et espèces présents en zone mésophotique à Mayotte,
mais d’autres prélèvements seront nécessaires pour que l’inventaire des gorgones soit davantage
abouti.
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Anthozoa
Anthothelidae
aff. Iciligorgia
Anthozoa
Ellisellidae
Ellisella
Anthozoa
Ellisellidae
Junceella
Anthozoa
Ellisellidae
Nicella
Anthozoa
Ellisellidae
aff. Coelogorgia
Anthozoa
Ellisellidae
aff. Verrucella verriculata
Anthozoa
Plexauridae
Bebryce
Anthozoa
Plexauridae
Bebryce
sp2
Anthozoa
Plexauridae
Paracis pustulata
Anthozoa
Plexauridae
Villogorgia nozzolea
Anthozoa
Plexauridae
Villogorgia
sp.2
Anthozoa
Plexauridae
aff. Astrogorgia
Anthozoa
Subergorgiidae
Annella reticulata
Anthozoa
Subergorgiidae
Subergorgia
Tableau 14. 14 espèces ont été observées en zone mésophotique à Mayotte sur les
sites échantillonnés lors du programme MesoMay

BIORECIF p. 35
Photos 13. Quelques exemples de gorgones observés en zone mésophotique à Mayotte avec
Annella reticulata (en haut à gauche), Verucella sp (en haut à droite), Paracis
pustulata échantillonnée à 131 m de profondeur (en bas à gauche) et Subergorgia
sp (en bas à droite)

BIORECIF p. 36
H. « Les coraux mous » (Cnidaria – Octocorallia - Alcyonacea)
Cinq espèces de coraux mous ont été observées en zone mésophotique à Mayotte dans le cadre du
programme MesoMay 2 (Tab. 15 et photos 14). Trois spécimens ont été prélevés et sont en cours
d’analyse pour être déterminés à l’espèce. Une espèce de corail mou a été observée pour la première
fois à Mayotte, Pacifiphyton sp.
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Anthozoa
Nidaliidae
Chironephthya
Anthozoa
Nephteidae
Pacifiphyton
nouvelle sp Mayotte
Anthozoa
Nephteidae
Dendronephthya
Anthozoa
Nephteidae
sp
Anthozoa
Alcyoniidae
aff. Eleutherobia
Tableau 15. Cinq espèces de corail mou ont été observées en zone
mésophotique à Mayotte dont une espèce nouvelle pour
Mayotte
Photos 14. Quelques exemples de coraux mous observés en zone mésophotique à
Mayotte pendant le programme MesoMay 2 avec Pacifiphyton sp observé
pour la première fois à Mayotte (en haut à gauche), les genres
Dendronephthya (en haut à droite) et Chironephthya (en bas à gauche) sont
représentés par plusieurs espèces qui nécessitent des prélèvements pour être
différenciées, et certains genres ne peuvent pas être déterminées à partir de
photos (en bas à droite)

BIORECIF p. 37
Le nombre total de coraux mous recensés pendant les phases 1 et 2 du programme MesoMay est de
sept espèces réparties dans trois familles. Les prélèvements sont nécessaires pour déterminer les
différentes espèces de coraux mous et ce groupe est vraisemblablement « sous évaluée » dans cet
inventaire.

BIORECIF p. 38
I. Les Antipathaires (« coraux noirs ») (Cnidaria –Hexacorallia – Antipatharia)
Dix espèces d’Antipathaires ont été recensées en zone mésophotique à Mayotte dans le cadre du
programme MesoMay 2 (Tab. 16 et photos 15). Parmi ces espèces, huit ont été déterminées à partir
de prélèvements de petits bouts de branches des spécimens.
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Anthozoa
Antipathidae
Allopathes robillardi
prélevée
Anthozoa
Antipathidae
Antipathes aff. grandiflora
non prélevée
Anthozoa
Antipathidae
Antipathes aff. simplex
prélevée
Anthozoa
Antipathidae
Antipathes lentipinna
prélevée
Anthozoa
Antipathidae
Cirrhipathes aff. sanguina
prélevée
Anthozoa
Antipathidae
Cirrhipathes aff. spiralis
prélevée
Anthozoa
Aphanipathidae
Aphanipathes verticillata
prélevée
Anthozoa
Myriopathidae
Cupressopathes abies
prélevée
Anthozoa
Myriopathidae
Myriopathes aff. ulex
non prélevée
Anthozoa
Myriopathidae
Myriopathes myriophyllia
prélevée
Tableau 16. Le programme MesoMay 2 a permis le recensement de 10
espèces d’Antipathaires en zone mésophotique à Mayotte
Photo 15. Les Antipathaires sont diversifiés en zone mésophotique et peuvent former
des massifs de plusieurs m² abritant de nombreux organismes comme ce
Myriopathes (en haut à droite) ou cet Aphanipathes (en bas à gauche).
Allopathes robillardi a été observé à 115 m (en haut à gauche) et
Cirrhipathes aff. sanguina (en bas à droite) à 75 m au niveau de la Passe en
S

BIORECIF p. 39
Le nombre total d’Antipathaires recensés pendant les phases 1 et 2 du programme MesoMay est de
12 espèces réparties dans trois familles. Les prélèvements de petits bouts de branches sont nécessaires
pour déterminer les différentes espèces d’Antipathaires.

BIORECIF p. 40
J. Les éponges (Porifera)
La richesse spécifique des spongiaires est très importante si on se réfère aux photos des tombants et
surplombs faites en zone mésophotique sur les sites explorés dans le cadre de ce programme. Pour
déterminer les éponges à l’espèce, il faut les prélever. Quelques prélèvements d’éponges ont été
réalisés dans le cadre de MesoMay 2 et ont permis de déterminer 4 genres/espèces (Tab. 17 et photos
16). Le phylum des Porifères est le moins abouti dans cet inventaire et le nombre d’espèces
échantillonnées n’est pas représentatif des observations réalisées en zone mésophotique qui
montrent que les éponges peuvent être dominantes sur le substrat dur de certains habitats des
écosystèmes coralliens mésophotiques.
Classe
Famille
Genres/Espèces
Remarques
Demospongiae
Petrosiidae
Xestospongia testudinaria
Demospongiae
Phloeodictyidae
Oceanapia
prélevée
Demospongiae
Esperiopsidae
Ulosa
prélevée
Demospongiae
Scleritodermidae
Aciculites aff. tulearensis
prélevée
Tableau 17. Quatre genres de Porifères ont été inventoriés à partir de
prélèvements au niveau des écosystèmes coralliens
mésophotiques à Mayotte

BIORECIF p. 41
Photos 16. Les éponges deviennent dominantes au niveau de certains habitats des
écosystèmes coralliens mésophotiques sur les sites échantillonnés lors du
programme MesoMay à Mayotte (en bas à droite). Certains genres et espèces
ont pu être déterminés à partir des prélèvements des spécimens : Aciculites
aff. tulearensis prélevés à 100 m de profondeur au niveau de la Passe en S (en
haut à gauche), Ulosa sp et Oceanapia sp à 90 m (en haut à droite et en bas à
gauche)

BIORECIF p. 42
K. Autres phylums : tuniciers (ascidies) (Tunicata) et planaires (Platyhelmintes)
Les ascidies sont présentes en zone mésophotique sur les sites explorés lors de ce programme mais
nécessitent d’être prélevées pour être déterminées à l’espèce (Photos 17).
Photos 17. Exemples d’ascidies (Tunicata) observées en zone mésophotique appartenant à la
famille des Clavelinidae
Un inventaire, même exhaustif, des ascidies n’a pas pu être mis en place dans le cadre de MesoMay 1 et 2
en raison de l’absence de collaboration avec les experts contactés. Françoise Monniot (MNHN) a récemment
souhaité collaborer au programme MesoRun à La Réunion, identique dans ces objectifs à MesoMay, et
pourrait être l’expert de référence pour les ascidies dans le cadre de MesoMay 3.
Un genre de platyhelminthes (« Planaires ») a été observé dans le cadre de MesoMay 2, Pseudoceros sp
(photo 18). Cette espèce est différente des deux autres observées dans le cadre de MesoMay 1 (Mulochau
et al., 2019)
Photo18. Pseudoceros sp. est la seule espèce de Platyhelmintes
(« planaires ») observée lors du programme MesoMay
2

BIORECIF p. 43
IV. Discussion et perspectives
L’exploration des écosystèmes coralliens mésophotiques (ECM) des récifs de l’indo-Pacifique est
relativement récente. Les recherches et évaluations environnementales ont longtemps été limitées
aux zones récifales situées proches de la surface pour des raisons scientifiques, de suivis d’impacts
anthropiques mais également liées aux contraintes de la plongée subaquatique à l’air présentant
rapidement des limites aux incursions au-delà de 30 ou 40 m de profondeurs. Les ECM ont pu
commencer à être explorés avec le développement de la plongée au recycleur et mélanges gazeux en
lien avec la recherche scientifique laquelle a trouvé un intérêt important à la connaissance de ces zones
notamment avec l’hypothèse que les ECM plus éloignés de la surface et des impacts anthropiques
pourraient avoir un rôle important à jouer en tant que refuge pour des espèces récifales évoluant à
faible profondeur. Une meilleure connaissance de la biodiversité des ECM permettra de mieux
appréhender l’assemblage des espèces qui y évolue et leur rôle en lien avec les récifs proches de la
surface. Les ECM ont surtout été étudiés dans la zone Atlantique et aux Caraïbes, la communauté
scientifique manque de données pour les ECM situés dans l’indo-Pacifique et il parait difficile
d’extrapoler ce qui a été étudié au niveau des zones récifales de l’Atlantique à la zone de l’indo-
Pacifique. D’autre part, l’hypothèse des ECM comme zone refuge permettant à certaines espèces de
« recoloniser » les zones récifales proches de la surface n’est à ce jour pas validée et repose en partie
sur des populations d’espèces communes et génétiquement identiques aux récifs euphotiques et
mésophotiques (Turner et al., 2017).
Cet inventaire faunistique non exhaustif réalisé dans le cadre du programme MesoMay sur certains
sites situés en zone mésophotique à Mayotte n’avait jamais été fait auparavant. Les deux phases du
programme ont montré que les images réalisées par les plongeurs sont souvent de bien meilleures
qualités que les images faites par les ROV ou caméras sous-marines immergées depuis la surface, et
permettent ainsi de déterminer davantage d’organismes. La comparaison de la mise en œuvre et des
bénéfices apportés par le ROV ou les plongeurs a été détaillée dans le rapport sur la mission ROV de
décembre 2019 avec le PNMM (Mulochau et al., 2020). La seconde phase du programme MesoMay a
permis de compléter l’inventaire notamment avec la collecte d’une partie ou de la totalité de certains
organismes qui n’étaient pas déterminables à partir des photos. Certains organismes observés lors de
MesoMay sont vraisemblablement nouveaux pour la Science et nécessitent d’être prélevés pour
confirmés ou pas cette dénomination de « nouvelle espèce ». La capture de spécimens mobiles
(poissons, crevettes,…) est difficile d’autant que le contexte des plongées en zone mésophotique
complique les prélèvements. Le travail restant pour décrire la biodiversité des sites échantillonnés en
zone mésophotique dans le cadre de cette étude est important, notamment pour certains phylums,
comme les porifères (« spongiaires »). Ce phylum semble présenter une diversité spécifique très
importante sur les tombants et surplombs observés sur les ECM, ce qui ne ressort pas dans le cadre de
cet inventaire au regard du nombre de genres décrits (Tab. 17). Les porifères nécessitent
vraisemblablement une étude ciblée pour la description des espèces de ce phylum sur les sites
échantillonnés dans le cadre du programme MesoMay et le phylum des tuniciers (ascidies) pourrait
être inventorié en même temps.
L’état de santé et la stabilité des ECM, la préservation de leur biodiversité et le degré de connectivité
génétique entre les récifs euphotiques et les zones récifales mésophotiques pourraient contribuer à la
capacité de résilience des récifs proches de la surface et à guider les futures stratégies de gestion et
de conservation. Plusieurs publications montrent que les ECM fournissent des habitats et des zones

BIORECIF p. 44
refuge essentiels aux espèces ciblées par la pêche, et représentent donc des zones cruciales pour la
gestion des stocks. Ainsi, certaines espèces, impactées par la pêche sur les récifs euphotiques (< 30 m),
appartenant par exemple aux familles des Serranidae (mérous) ou des Carangidae pour les poissons,
ou les Holothuridae pour les échinodermes, pourraient être en partie protégées de certaines pratiques
au niveau des ECM (chasse sous-marine, collecte, voire de la pêche à la ligne avec les difficultés à
pêcher plus profond…). La compréhension du fonctionnement des ECM, de leur gestion et de leur
protection passent nécessairement par une phase d’acquisition de connaissance.
Les deux premières phases de MesoMay n’avaient pas pour objectif de collecter des données
d’abondances des différentes espèces commerciales observées sur les ECM, l’objectif du programme
étant orienté vers de l’acquisition de connaissances sur la biodiversité de la zone mésophotique et des
habitats rencontrés à travers un inventaire faunistique non exhaustif des sites échantillonnés.
Cependant dans le cadre d’une problématique de gestion et de conservation de certaines espèces
commerciales, il parait intéressant d’évaluer leurs abondances observées sur certains sites en zone
mésophotique. Les données d’abondances d’espèces commerciales en milieu mésophotique et leurs
suivis dans le temps sont rares. La suite du programme, MesoMay 3, propose notamment
d’expérimenter une méthode afin de permettre cette évaluation lors des futurs suivis et d’avoir des
tendances d’évolution de certaines populations dans le temps. Cette expérimentation pourrait être
couplée à une collecte de données de recouvrement de substrat dur. La phase 3 du programme
propose donc une orientation vers une problématique de gestion/conservation avec la collecte de
données d’abondances, notamment d’espèces commerciales, à travers des suivis de type GCRMN.
Cette action du programme MesoMay 3 ne sera cependant possible que grâce aux données collectées
lors des précédentes phases de MesoMay qui ont chacune permis d’apporter des éléments tangibles
sur les habitats et la biodiversité des ECM sur les sites prospectés à Mayotte.

BIORECIF p. 45
V. Bilan MesoMay 1 et 2
100 plongées en zone mésophotique ont été réalisées entre 50 et 145 m de
profondeur
Un ROV a été immergé 46 fois en zone mésophotique entre 50 et 157 m de profondeur
756 espèces inventoriées
254 espèces de poissons inventoriées dont 59 sp nouvelles pour Mayotte avec
certaines qui pourraient être nouvelles pour la Science
331 sp de mollusques dont 1 nouvelle pour Mayotte, 46 sp de crustacés dont 7
nouvelles sp pour Mayotte, 26 sp d’échinodermes dont 2 nouvelles sp d’holothuries
pour Mayotte, 18 sp de scléractiniaires dont 2 nouvelles sp pour Mayotte, 40 sp
d’hydraires dont une est nouvelle pour Mayotte, 14 sp de gorgones, 7 sp de coraux
mous dont une est nouvelle pour Mayotte, 12 sp d’Antipathaires, 4 sp d’éponges, 3 sp
de planaires et 1 sp de polychètes
Deux publications scientifiques, d’autres en cours ou à venir et trois rapports
Bancarisation des données MesoMay (1, 2 et ROV) dans la Base de Données Récif (cf.
annexe 3).

BIORECIF p. 46
VI. Bibliographie
Bozec Y.M., 2006. Les poissons des récifs coralliens de Nouvelle-Calédonie : estimations d'abondance,
relations habitat-poissons, interactions trophiques et indicateurs écologiques. Paris (FRA) ; Paris :
Université de Paris 6, Th. : Océanographie et Environnements Marins, Université de Paris 6 : 312 p.
Bruggemann H., Bigot L., Cauvin B., Chabanet P., Durville P., Guillaume M., Hoarau L., Mulochau T.,
Penin L., Tessier E., Urbina I. & K. Pothin, 2016. Positive MPA effects after 8 years of conservation effort
at Réunion Island (Indian Ocean). 13th international coral reef symposium.
Coleman R.R., Copus J.M., Coffey D.M., Whitton R.K. et B.W Bowen, 2018. Shifting reef fish
assemblages along a depth gradient in Pohnpei, Micronesia. Peer J, 6, e4650.
Drivas J. & M. Jay, 1988. Three New Species of the Genus Terebra from the Mascarenes Islands, Indian
Ocean (Neogastropoda: Terebridae). Venus 47(3): 167-171
Durville P., Mulochau T., Quod J.P., Pinault M. et L. Ballesta, 2020. Premier inventaire ichtyologique du
mont sous-marin La Pérouse. Ile de La Réunion, sud-ouest océan Indien. Expédition La Pérouse, 2019.
Annales de la société de sciences naturelles de la Charente-Maritime. Soumis.
Guilhaumon F., Savelli M.P., Bigot L., Durville P., Matthews T. J. and P. Chabanet, 2018. Functional
vulnerability in Western Indian coral reef fishes: Indicator species and conservation priorities Diversity
and Distributions. WIOMSA Symposium, Mauritius.
Harmelin-Vivien M.L., 1979. Ichtyofaune des récifs coralliens de Tuléar (Madagascar): Ecologie et
relations trophiques. Thèse d’Etat, Univ. Aix- Marseille II : 165 pp.
IUCN 2020. The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2020-2. https://www.iucnredlist.org
Kahng S., Copus J.M. &D. Wagner, 2017. Mesophotic Coral Ecosystems. In: Rossi S., Bramanti L.,
Gori A., Orejas C. (eds) Marine Animal Forests. Springer, Cham
Legall N. & J Poupin. 2020. - CRUSTA: Database of Crustacea (Decapoda and Stomatopoda), with special
interest for those collected in French overseas territories. With 'Mesophotic' Crustacea for Mayotte
at http://crustiesfroverseas.free.fr/search_result.php?refregion=Mesophotic. Consulted September
2020
Letourneur Y., Kulbicki M. et P. Labrosse, 1998. – Spatial structure of commercial reef fish communities
along terrestrial runoff gradient in the Northern lagoon of New Caledonia. Environ. Biol. Fish., 51: 141-
159.
Lyeske E. et R.F. Myers, 1995. Guide des poissons des récifs coralliens. Delachaux et Niestle (Eds.). 400
p.
Morais J. & B. A. Santos, 2018. Limited potential of deep reefs to serve as refuges for tropical
Southwestern Atlantic corals. Ecosphere/ESA Vol. 9, Issue 7. https://doi.org/10.1002/ecs2.2281
Mulochau T., Delamare C. & C. Conand, 2020. First occurrence of the species Holothuria
coronopertusa in Mayotte, in the Indian Ocean. SPC Bêche-de-mer Information Bulletin # 40, p 46-48
https://coastfish.spc.int/publications/bulletins/la-beche-de-mer/512-beche-de-mer-information-
bulletin-40

BIORECIF p. 47
Mulochau T., Durville P. et J. Mathey (2020) Exploration de la zone mésophotique de quelques pentes
externes de Mayotte à l’aide d’un ROV – Inventaire faunistique non exhaustif - BIORECIF – Parc Naturel
Marin de Mayotte. 23 p et annexes.
Mulochau T., Durville P., Barathieu G., Budet D., Delamarre C., Konieczny O., Quaglietti S., Anker A.,
Bidgrain P., Bigot L., Bo M., Bonnet N., Bourmaud C., Conand C., De Voogd N., Ducarme F., Faure G.,
Fricke R., Huet R., Mah C., Maurel L., Messing C., Philippot V., Poupin J., Sartoretto S., Schleyer M.,
Stöhr S., Trentin F. & J. Wickel, 2019. Inventaire faunistique non exhaustif de quelques sites situés en
zone récifale mésophotique à Mayotte - BIORECIF – GALAXEA - DEAL Mayotte. 30 p et annexes.
Mulochau T., Huet R., Trentin F., Rauby T., Holon F., Ballesta L. et P. Durville, 2020. Inventaire des
mollusques du mont sous-marin La Pérouse – Ile de La Réunion, sud-ouest océan Indien –Expédition
La Pérouse 2019. Folia conchyliologica 56 : 3-15 et erratum 57 p48
http://www.cernuelle.com/file/Folia%20Conch%2056.pdf
Muir P.R. Wallace C.C., Pichon M. & P. Bongaerts, 2018. High species richness and lineage diversity of
reef corals in the mesophotic zone. 285. Proc. R. Soc. B. http://doi.org/10.1098/rspb.2018.1987
Pauly D. et D. Zeller, 2016. Catch reconstructions reveal that global marine fisheries catches are higher
than reported and declining. Nature Communications. Nature Publishing Group. 7, 10244.
Pichon M., Rouzé H., Barathieu G., Konieczny O., Adjeroud M. et Thomassin B. 2020. Extension of the
known distribution of the scleractinian coral Leptoseris troglodyta to the southwestern Indian Ocean:
new record from mesophotic caves in Mayotte. Bulletin of Marine Science 96 (4)
https://doi.org/10.5343/bms.2020.0009
Poupin J., Barathieu G., Konieczny O. & T Mulochau, en préparation. - Inventaire des crustacés
mésophotiques de Mayotte photographiés en plongée Tek. Naturae. Muséum national d'Histoire
naturelle, Paris, http://sciencepress.mnhn.fr/fr/periodiques/naturae
SANDIN S.A. et E. Sala. Using successional theory to measure marine ecosystem health. Evol. Ecol.,
26(2) : 435-448.
Turner J.A., Babcock R.C., Hovey R. & G.A. Kendrick, 2017. Deep thinking : a systematic review of
mesophotic coral ecosystems. ICES Journal of Marine Science, Vol. 74, Issue 9, pp 2309–
2320. https://doi.org/10.1093/icesjms/fsx085
Werner, T.B. & G.R. Allen, 1998 A rapid biodiversity assessment of the coral reefs of Milne Bay
Province, Papua, New Guinea. RAP Working Papers 11, Conservation International, Washington, DC,
109 p.
Wickel J., Jamon A., Pinault M., Durville P. & P. Chabanet, 2014. Composition et structure des
peuplements ichtyologiques marins de l’île de Mayotte (sud-ouest de l’océan Indien). Cybium (38) 3 :
179-203.
Wickel J. & A. Jamon, 2010. Inventaire taxonomique actualisé des poissons marins de l’île de Mayotte
et des bancs récifaux de Geyser-Zélée, Canal de Mozambique. Liste révisée des espèces et élaboration
d’une base de données fonctionnelle. 35 p. + annexes. Rapport LAGONIA/APNEE pour le compte de la
DAF Mayotte.

BIORECIF p. 48
VII. Financements
Les phases 1 et 2 du programme MesoMay ont été financées par la DEAL de Mayotte et
le Parc Marin de Mayotte (mission ROV).

BIORECIF p. 49
Annexes
Annexe 1
Campagne BIOMAGLO – MNHN et Ifremer - 2017
Tableau 18. Stations échantillonnées en zone mésophotique autour des îles du sud-ouest de l’océan Indien pendant
la campagne BIOMAGLO - https://expeditions.mnhn.fr/campaign/biomaglo
Campagne BENTHEDI – CNRS – 1977
Tableau 19. Stations échantillonnées en zone mésophotique autour des îles et hauts-fonds du sud-ouest de l’océan
Indien pendant la campagne BENTHEDI - https://expeditions.mnhn.fr/campaign/benthedi
Campagne Collecte Date début Date texte Lat début Lat fin Long début Long fin Localité Prof début Prof fin Engin
BIOMAGLO CP4796 23/01/2017 23-janv-17 -11.440267 -11.441816 47.324184 47.342533 Iles Glorieuses 147 80 Chalut à perche
BIOMAGLO DW4793 23/01/2017 23-janv-17 -11.4405 -11.4415 47.327999 47.3405 Iles Glorieuses 122 94 Drague Warén
BIOMAGLO DW4807 25/01/2017 25-janv-17 -11.484834 -11.493167 47.460999 47.466667 Iles Glorieuses 97 124 Drague Warén
BIOMAGLO DW4836 28/01/2017 28-janv-17 -12.428333 -12.420333 43.924332 43.932167 SE Moheli 82 88 Drague Warén
BIOMAGLO DW4841 29/01/2017 29-janv-17 -12.38 -12.385 43.560001 43.553333 SW Moheli 333 154 Drague Warén
Campagne Collecte Date fin Date texte Lat texte Long texte Habitat Localité Info localité Prof début Prof fin Engin
BENTHEDI R80 (BENT80-R) 31/03/1977 31-mars-77 12°33'S 44°55,7'E fond riche en grandes éponges et gorgones Mayotte Banc de l'Iris 50 Récolte à vue en plongée
BENTHEDI
R109 (BENT109-R)
10/04/1977 10APR1977 12°25,6'S 46°16,2'E herbier à Thalassodron, dôme de sable et platier madréporaires S du Banc de la Zélée 50 Récolte à vue en plongée
BENTHEDI F78 (BENT78-F) 31/03/1977 31-mars-77 12°34'S 44°56'E faubert riche en pralines de mélobésiées et en Halimeda Mayotte NW du Banc de l'Iris 140 80 Foubert
BENTHEDI DR05 (BENT5-DR) 18/03/1977 18-mars-77 12°32'S 47°40,2'E bcp de débris rocheux grès gris jauneà la cassure avec grosses alvéoles W Banc du Leven 150 35 Drague à roche
BENTHEDI DR07 (BENT7-DR) 19/03/1977 19-mars-77 11°29'S 47°18'E pas de sédiments fragment de grès W îles Glorieuses 200 80 Drague à roche
BENTHEDI F69 (BENT69-F) 30/03/1977 30-mars-77 12°31'S 45°02'E riche en éponges, nodules de mélobésiées, gorgones antipathaires Mayotte NE du récif Nord 200 50 Foubert

BIORECIF p. 50
Annexe 2
Autorisations de prélèvements et de transport :
1. Arrêté préfectoral n°07/UTM/AIML/2019 portant autorisation de prélèvements scientifiques

BIORECIF p. 51

BIORECIF p. 52

BIORECIF p. 53
2. Autorisation de transport de coraux dans le cadre du programme MesoMay – DEAL Mayotte courrier du
18 mars 2019

BIORECIF p. 54
Annexe 3
Bancarisation des données dans la Base de données Récif
Structuration des données
d'inventaire du projet MESOMAY
2
Octobre 2020
I. Résumé - métadonnées
La biodiversité récifale profonde située dans la zone mésophotique entre 50 m et 150 m de
profondeur reste largement méconnue. Le programme MesoMay, piloté par BIORECIF,
consiste dans sa première phase, une exploration de cette zone sur les pentes récifales de
Mayotte.
Le protocole consiste à se rendre sur une zone précise, puis de réaliser des plongées (plus ou
moins longue en fonction de la profondeur), les observateurs, prennent des photographies
d'espèces plutôt remarquables dans l'objectif de réaliser un inventaire. Ces images sont
ensuite analysées par les experts de chaque phylum pour une identification.
II. Mise en forme des données
1. Quadrilabo
Compte tenu de la volumétrie des données (multiplicité des passages et des taxons identifiés),
le choix est porté sur l'utilisation du masque Quadrilabo pour l'intégration des données. Le
format Quadrilabo permet un import dans le système central Quadrige, puis une redescente
des données vers une application BD Récif installée en local sur le poste d’un utilisateur ayant les
droits d’accès aux données. La majeure partie du travail consiste à organiser les données, à
trier les paramètres mesurés. Une fois ce tri réalisé, les éléments de référentiels doivent être
créés, puis la stratégie constituée.
Le masque Quadrilabo repose sur la codification SANDRE des éléments de référentiel fournis
par la cellule Quadrige.
2. Champ mnémonique
Le champ mnémonique d'observation est un champ non obligatoire et libre qui permet
d'identifier l'observation. Ici, le choix est porté sur un code qui permet notamment de savoir si
l'observation a été réalisée en plongée ou depuis le ROV.

BIORECIF p. 55
Signification du mnémonique : AAAAMMJJ– XXX – Station
AAAAMMJJ : Date
XXX : soit ROV si les photos sont prises depuis le ROV ou PSM si elles sont prises en plongée
sous- marine
Station : Nom de la station homogène
3. Correspondances Observateurs
Les observateurs, ici, sont les photographes qui ont pris les photos et permis l'analyse. Le
champ d'origine était loin d'être homogène. Le travail d'homogénéisation a été réalisé par
Kart'eau et les correspondances établies sont décrites dans le Tableau 1. Quand pour une
même observation, les observateurs sont issus de deux organismes différents, un choix
arbitraire de l'un des deux organismes a été fait. Les observateurs sont ensuite repris de
manière nominative.
Tableau 1 : Correspondance des Observateurs
Observateurs
Organisme observateur
Camille Loisil
POISSON_LUNE
Camille Loisil/Patrick Plantard
POISSON_LUNE
Clement Delamare
SPS-976
Gaby Barathieu
DEEP_BLUE_EXPLORATION
Gaby Barathieu/Olivier Konieczny
DEEP_BLUE_EXPLORATION
Gaby Barathieu/Olivier Konieczny/Patrick Plantard
DEEP_BLUE_EXPLORATION
Gaby Barathieu/Sebastien Quaglietti/Clement Delamare
SPS-976
Patrick Plantard
POISSON_LUNE
Patrick Plantard/Olivier Konieczny
POISSON_LUNE
Sebastien Quaglietti
SPS-976
Sebastien Quaglietti/Clement Delamare
SPS-976
(vide)
BIORECIF
SPS-976
DEEP_BLUE_EXPLORATION
4. Correspondances Analystes / Experts
L'analyste, au sens BD Récif, est la personne référent des résultats saisis, en cas de contrôle
ultérieur de la base, c'est l'analyste qui sera contacté pour des éventuelles
modifications/corrections. Il est convenu avec Biorecif, d'associer GALAXEA à tous les
résultats poissons et BIORECIF à tous les résultats invertébrés. Pour des besoins
d'identification, Biorecif s'est appuyé sur des experts régionaux des invertébrés. Ceux-ci sont
consignés dans le fichier fourni dans un champ. Cette information est conservée dans le
champ commentaire sur résultat. Kart'eau a dû homogénéiser ce champ, décrit dans le
Tableau 2.

BIORECIF p. 56
Tableau 2 : Correspondances des experts et du champ Commentaire sur résultat repris dans BDRécif
Analyste (Libellé homogénéisé)
Champ commentaire
Charles Messing
Charles Messing (Nova Southeastern University)
Chris Mah/Frederic Ducarme
Chris Mah (Smithsonian Institution) et Frederic Ducarme (MNHN)
Emilie Boissin
Emilie Boissin (CRIOBE)
Emilie Boissin/Sabine Stöhr
Emilie Boissin (CRIOBE) et Sabine Stöhr (Swedish Museum of Natural
History)
Gerard Faure/Lionel Bigot
Gerard Faure et Lionel Bigot (Université de La Réunion)
Joseph Poupin
Joseph Poupin (Ecole Navale BCRM)
Joseph Poupin/Arthur Anker
Joseph Poupin (Ecole Navale BCRM) et Arthur Anker
Lionel Bigot/Gerard Faure
Gerard Faure et Lionel Bigot (Université de La Réunion)
Marzia Boissin
Marzia Boissin (Université de Gênes)
Mike Schleyer
Mike Schleyer (The South African Association for Marine Biological
Research)
Nicole De Voogt
Nicole De Voogt (Naturalis Biodiversity Center)
Nicole Gravier-Bonnet
Nicole Gravier-Bonnet (retraitée Université de La Réunion)
Patrick Durville
Patrick Durville (Galaxea)
Philibert Bidgrain/Florence Trentin
Philibert Bidgrain et Florence Trentin (Association Vie Océane)
Raymond Huet
Raymond Huet (Association française de Conchyliologie)
Thierry Mulochau
Thierry Mulochau (Biorecif)
Thierry Mulochau/Chantal Conand
Thierry Mulochau (Biorecif) et Chantal Conand (Université de La Réunion)
Thierry Mulochau/Chantal De
Rieder/Frederic Ducarme
Thierry Mulochau (Biorecif), Chantal De Rieder (Université Libre de
Bruxelles) et
Frederic Ducarme (MNHN)
Thierry Mulochau/Emilie Boissin
Thierry Mulochau (Biorecif) et Emilie Boissin (CRIOBE)
Thierry Mulochau/Frederic Ducarme
Thierry Mulochau (Biorecif) et Frederic Ducarme (MNHN)
Véronique Philippot
Véronique Philippot (Naturum Etudes)
5. Correspondances profondeurs
Dans le fichier d'origine, les profondeurs sont renseignées à l'échelle du taxon, or dans les
faits la profondeur exacte ou la gamme de profondeurs est renseignée par plongée. Une
plongée correspond à un réplicat, et pour chaque observation, un réplicat est réalisé. Dans
BDR, il est possible de renseigner soit une profondeur exacte, soit une profondeur minimale
et maximale d'un réplicat. C'est ainsi que sont reprises les informations de profondeurs.
Toutefois, lorsque les combinaisons de profondeurs sont examinées pour chaque date/station,
quelques anomalies sont rencontrées et corrigées, lorsque 2 gammes de profondeurs sont
différentes, le minimum des 2 ou plusieurs gammes et choisi, de même pour le maximum.

BIORECIF p. 57
III. Structure des données de poissons
1. Programme & stratégie
Les données issues du projet MesoMay2 sont reprises dans le même couplet
programme/stratégie que Mesomay 1 :
Programme
Code
Libellé
Description
MESOMAY_MAYOT
TE
_PARCOURS_ALE
ATOI RE
Inventaire dans la zone
mésophotique (50 à 150m)
autour de Mayotte
Inventaire de tous les phylums à partir
de photographies réalisées en
plongées profondes (recycleur et
mélange gazeux)
dans la zone de 50 à 150m
de profondeur
Stratégie
Libellé
Description
Parcours aléatoires Poissons
et invertébrés – 2018-2019-
2020
Projet MesoMay piloté par Biorecif, impliquant des
photographes des associations Deep Blue Exploration,
Service de Plongée Scientifique et Poisson Lune. Seul le
paramètre présence est renseigné, il s'agit d'un inventaire en
zone mésophotique.
2. Stations
Les zones échantillonnées correspondant plus à des zones qu'à des points précis, les
observations sont rattachées à un lieu surfacique. Chaque observation (passage) pourra
ensuite être renseignée avec ses coordonnées réelles correspondant aux coordonnées
théoriques.
Ce lieu surfacique, déjà créé lors de MesoMay 1 correspond à la ZEE de Mayotte.
Tableau 3 : Caractéristique du lieu de surveillance utilisé pour l'intégration des données
Libellé du lieu
Mnémoniqu
e
Code
SANDRE
Mayotte_surfacique_ZEE
145-S-298
60011072
3. Moyen d'acquisition
Photographie.

BIORECIF p. 58
4. Taxons
Un comparatif entre les taxons fournis par Biorecif et le référentiel BD Récif/Worms est réalisé,
le Tableau 4 montre les anomalies rencontrées.
Tableau 4 : Comparaison entre la liste des taxons fournie par Biorecif et le référentiel BD Récif – Seuls les
taxons non trouvés dans le référentiel ou avec une faute, ou encore ayant changé de nom se trouve ici
Taxons
Anomalie rencontrée
Taxon saisi
Taxon référent
Coscinarea wellsi
faute + obsolescence du
taxon
Coscinaraea wellsi
Cycloseris wellsi
Leptoseris hawaiensis
faute
Leptoseris hawaiiensis
Leptoseris hawaiiensis
Naso vlamingi
faute
Naso vlamingii
Naso vlamingii
Patelloida
faute
Patelloidea
Patelloidea
Sufflamen chrysopterus
faute
Sufflamen chrysopterum
Sufflamen chrysopterum
Sufflamen fraenatus
faute
Sufflamen fraenatum
Sufflamen fraenatum
Tubastrea
faute
Tubastraea
Tubastraea
Tubastrea aurea
obsolescence du taxon
Tubastraea aurea
Tubastraea coccinea
Bodianus leucostictus
faute
Bodianus leucosticticus
Bodianus leucosticticus
Elisellidae
faute
Ellisellidae
Ellisellidae
Leptoseris explanulata
faute
Leptoseris explanata
Leptoseris explanata
Scorpaenopsis
oxycephalus
faute
Scorpaenopsis oxycephala
Scorpaenopsis oxycephala
Antennella balei
non trouvé (renseignée
depuis
une réf biblio)
Antennella balei
Antennella balei
Caecum farcimen
ajout sous-genre
Caecum (Fartulum)
farcimen
Caecum (Fartulum)
farcimen
Melampus granife
faute
Melampus granifer
Melampus granifer
Myriopathes myriophyllia
faute
Myriopathes myriophylla
Myriopathes myriophylla
Sertularella delicata
obsolescence du taxon
Sertularella delicata
Sertularella diaphana
Turritella gracillima
obsolescence du taxon
Turritella gracillima
Turritella cingulifera
Turritopsis chevalense
obsolescence du taxon
Turritopsis chevalense
Oceania armata
Vexillum rubrum
obsolescence du taxon
Vexillum rubrum
Atlantilux rubra
Xyrichthys pavo
obsolescence du taxon
Xyrichthys pavo
Iniistius pavo
Holothuria edulis
ajout sous-genre
Holothuria (Halodeima)
edulis
Holothuria (Halodeima)
edulis
Holothuria fuscopunctata
ajout sous-genre
Holothuria (Microthele)
fuscopunctata
Holothuria (Microthele)
fuscopunctata
L'affichage du taxon saisi permet de garder l'information du taxon qui a été identifié par l'expert,
ce champ ne sera pas altéré par les changements de noms suite aux changements de la
classification, contrairement au champ "taxon référent". L'ensemble des taxons créés pour les
besoins de cette reprise sont listés en Annexe 1.

BIORECIF p. 59
5. PSFMU
Un seul PSFMU (Paramètre, Support, Fraction, Méthode et Unité) est utilisé pour cette reprise
de données.
Tableau 5 : Tableau du PSFMU mesuré sur réplicat de la stratégie - Les éléments en orange sont ceux qui
font l'objet de création lors de cette reprise
Libellé
PSFM
P
S
F
M
U
Regroupé
Qualitatif
Valeurs
qualitative
s
Présence_
C orail
PRESABS_TA
X
Corail,
récifs
coralliens
San
s
objet
Parcours aléatoire, inventaires
des taxons remarquables
identifiés par photographie
(projet MesoMay)
Pas
d'unité
Présence/
A bsence
SANDRE
7554
54
21
6000659
6
X
6. Codage des éléments de référentiel
En plus des taxons, et des PSFMS, d'autres éléments doivent être codés SANDRE.
Tableau 6 : Liste des autres éléments qui nécessitent d'être codés
SANDRE
Elément de référentiel
Libellé Q2
Code SANDRE
Réseau
MESOMAY_MAYOTTE_PARCOUR
S_ALEATOIRE
MESOMAY_MAYOTTE_PARCOUR
S_ALEATOIRE
Préleveur 1 (=service
observateur)
SPS-976
84380287700020
Préleveur 2 (=service
observateur)
DEEP_BLUE_EXPLORATION
60004802
Préleveur 3 (=service
observateur)
POISSON_LUNE
60004801
Analyste 1
BIORECIF
80162849600011
Analyste 2
GALAXEA
80155057500014
Saisisseur
KARTEAU
79444661700027
Engin de prélèvement
Photographie
60001863
Unité (profondeur de
prélèvement)
Mètre
111
IV. Intégration des données dans BD Récif
Après intégration des données dans BD Récif,
- 65 passages créés
- 65 prélèvements créés,
- 0 échantillons créés,
- 0 résultats de mesure créés,
- 1398 résultats taxon créés.

BIORECIF p. 60
Figure 1 : Ecran de saisie des observations - 1 observation = 1 réplicat