Cinco nuevas especies para la fauna de España y otras interesantes informaciones lepidopterológicas para España y Sudán (Insecta: Lepidoptera)

Abstract

Two new species: Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n. (Gelechiidae), Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n. Also, the species Aproaerema ochrofasciella (Toll, 1936), Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997 (Tortricidae) and Spodoptera frugiperda (Smith, 1797) (Noctuidae), are mentioned for the first time for the fauna of Spain. The male of Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020 (Yponomeutidae) and the female of Symmoca mimetica Gozmány, 2008 (Autostichidae), are described. For the fauna of Sudan, the female of Turatia scioneura (Meyrick, 1929) (Autostichidae), is described.

Full text

717
Cinco nuevas especies para la fauna de España y otras
interesantes informaciones lepidopterológicas para
España y Sudán
(Insecta: Lepidoptera)
A. Vives Moreno & J. Gastón
Se describen dos especies nuevas: Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n. (Gelechiidae) y Sudaniola
asselbergsi Vives & Gastón, sp. n. (Pyralidae). Se cita, por primera vez para la fauna de España a Aproaerema
ochrofasciella (Toll, 1936), Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997 (Tortricidae) y a Spodoptera
frugiperda (Smith, 1797) (Noctuidae). Se describe el macho de Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020
(Yponomeutidae) y la hembra de Symmoca mimetica Gozmány, 2008 (Autostichidae). Para la fauna de Sudán, se
describe la hembra de Turatia scioneura (Meyrick, 1929) (Autostichidae).
PALABRAS CLAVE: Insecta, Lepidoptera, nuevas especies, nuevas citas, España, Sudán.
Five new species for the fauna of Spain and other interesting lepidopterological information for Spain and
Sudan
(Insecta: Lepidoptera)
Abstract
Two new species: Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n. (Gelechiidae), Sudaniola asselbergsi Vives &
Gastón, sp. n. Also, the species Aproaerema ochrofasciella (Toll, 1936), Cochylimorpha erlebachi Huemer &
Trematerra, 1997 (Tortricidae) and Spodoptera frugiperda (Smith, 1797) (Noctuidae), are mentioned for the first
time for the fauna of Spain. The male of Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020 (Yponomeutidae) and
the female of Symmoca mimetica Gozmány, 2008 (Autostichidae), are described. For the fauna of Sudan, the female
of Turatia scioneura (Meyrick, 1929) (Autostichidae), is described.
KEY WORDS: Insecta, Lepidoptera, new species, new mentions, Spain, Sudan.
Introducción
Como continuación al trabajo iniciado sobre la fauna de Lepidoptera de España (GASTÓN &
VIVES MORENO, 2020a, 2020b), se proporcionan nuevos datos que amplían y enriquecen la
biodiversidad de la fauna de España. El material estudiado procede igualmente de colecciones
particulares y también de los fondos del Museo Nacional de Ciencias Naturales de Madrid, España
(MNCN) abarcando varias familias como Yponomeutidae, Autostichidae, Gelechiidae, Tortricidae,
Pyralidae y Noctuidae, nos ha permitido descubrir dos especies nuevas para la Ciencia, también hemos
encontrado tres especies que son nuevas para la fauna de España y hemos podido describir el macho y
la hembra de dos especies donde el correspondiente sexo era desconocido.
Hemos trabajado con material proporcionado por el Finnish Museum of Natural History, Helsinki,
Finlandia (FMNH), donde hemos podido estudiar una pequeña serie de 10 ejemplares pertenecientes a
la especie Turatia scioneura (Meyrick, 1929) de la que sólo se conocía el tipo depositado en The
SHILAP Revta. lepid., 48 (192) diciembre 2020: 717-731 eISSN: 2340-4078 ISSN: 0300-5267

Natural History Museum, Londres, Reino Unido, que nos ha permitido estudiar la hembra, hasta ahora
desconocida.
Material y métodos
El material utilizado para el estudio se ha obtenido mediante muestreos nocturnos y diurnos, con
trampas de luz actínica distribuidas en los biotopos apropiados y disponiendo de las autorizaciones de las
diferentes regiones afectadas. Para su identificación nos hemos basado en el examen comparativo de los
caracteres morfológicos externos y, sobre todo, en el análisis de la estructura genital de los ejemplares.
La preparación de los órganos genitales se ha efectuado siguiendo a ROBINSON (1976), con
modificaciones. Se han utilizado los microscopios Leica DMLB, Leica MZAPO, NIKON Eclipse E400
y las cámaras digital Leica DFC550, NIKON D3100 y SONY α100 DSLR-A100K con objetivo AF 100
MACRO 1:2,8 (32), e igualmente para el retoque fotográfico, el programa de Adobe Photoshop ©.
Abreviaturas
AV Antonio Vives
JG Javier Gastón
ER Emili Requena
LT Locus typicus
MNCN Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid, España
FMNH Finish Museum of Natural History, Helsinki, Finlandia
prep. gen. preparación de genitalia
ET Especie tipo del género
Resultados
YPONOMEUTIDAE
Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020
Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020. SHILAP Revta. lepid., 48(190): 309-310, figs 2,
23
LT: Sierra de Gádor, ALMERÍA, ESPAÑA
Material estudiado: ESPAÑA, ALMERÍA, Sierra de Gádor, a 2.020 m, 1 1, 31-VII-2019, J. Gastón
leg., prep. gen. 7881JG; GRANADA, Sierra Nevada (accesos), a 2.100 m, 1 1, 10-VII-1994, J. Gastón
leg. y coll., prep. gen. 8219JG.
Descripción del macho (fig. 1): Envergadura, 13,5 mm, (n = 2). La morfología externa no difiere
de la de la hembra. Cabeza bien desarrollada con pelos escamiformes blancos. Palpos labiales cortos y
rectos. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris oscuro rematadas en blanco.
Tórax con escamas de color gris ocráceo claro uniforme. Tégulas y abdomen recubiertos de las mismas
escamas. Alas anteriores estrechas y alargadas con el termen redondeado y algo puntiagudo. Margen
costal (externo) levemente cóncavo. El color de fondo es gris claro salpicado de multitud de pequeñas
escamas oscuras que lo oscurecen a primera vista. Sobre las venas Sc (subcostal) y A1, (anal), se
distribuyen longitudinalmente desde la base del ala hasta el termen, una serie de minúsculos puntos
oscuros que recorren las citadas venas. Presenta una apreciable, aunque difusa, mancha de escamas
negras en el extremo exterior de la celda, lo mismo que otra, de mayor tamaño junto al margen interno
(dorsal). En la zona postdiscal presenta una serie de tres manchitas oscuras en forma triangular, dos de
ellas situadas en los márgenes costal y dorsal y la tercera junto al termen, casi en la zona marginal. Esta
se remata en su extremo con una fina línea de escamas oscuras en la base de las fimbrias, que son de
color gris claro rematadas en negro. Las alas posteriores son estrechas y apuntadas fuertemente hacia el
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ápice, sin ángulo anal. Son de color gris claro uniforme, sin manchas. Las fimbrias, de gran longitud
son también de color gris claro uniforme.
Genitalia del macho (fig. 9): Tegumen ancho y corto. Uncus provisto de sendos socius largos y
puntiagudos. Valvas cortas, anchas con apéndices costales alargados y estrechos situados en la base de
la misma. La costa es recta hasta el pollex, algo puntiagudo. El pollex se curva hacia el margen interno
de la valva. Sacculus característico del género, formando un apéndice con forma de cazo, esclerotizado
en su extremo y despegado claramente de la valva. Saccus largo, de la misma longitud que las valvas,
cilíndrico y rematado en su extremo por un abultamiento esférico altamente esclerotizado. Aedeagus
cilíndrico, alargado y de una longitud similar al saccus, sin espinas.
Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas. Los imagos
se capturaron en cotas altas, por encima de 2.000 m, en las laderas orientadas al sur tanto de Sierra
Nevada como en la Sierra de Gádor. Por los datos de que disponemos hasta la fecha, la especie vuela.
Distribución: Según nuestros datos, la especie se encuentra en las provincias españolas de Almería
y Granada.
Detalles: Las diferencias en la genitalia del macho, con su especie más próxima
Paraswamerdamia albicapitella (Scharfenberg, 1805) se localizan en el sacculus, que en esta especie es
menor y rematado en punta (fig. 10), no en forma de cazo como en P. kitamurae. La principal
diferencia de la genitalia de las hembras estriba en la forma y tamaño de la lamella postvaginalis
(GASTON &VIVES, 2020).
AUTOSTICHIDAE
Symmoca mimetica Gozmány, 2008
Symmoca mimetica Gozmány, 2008, in Gaedike. Microlep. Pal., 13: 109-110, pl. 15, fig. 48, pl. 126,
fig. 48
LT: Rebate, ALICANTE; Aledo, MURCIA, ESPAÑA
Material estudiado: ESPAÑA, ALMERÍA, Desierto de Tabernas, a 471 m, 1 0, 14-X-2006, M.
Rondós leg., J. Gastón col., prep. gen. 1240ER.
Descripción de la hembra (fig. 2): Envergadura, 13,0 mm, (n = 1). La morfología no difiere
esencialmente de la del macho. Antenas de color gris oscuro. Palpos labiales grises claros. Cabeza de
color gris blanquecino, al igual que el tórax, pero este mezclado con pelos castaños y blancos grisáceos,
sin tonalidades amarillentas. Alas anteriores con fondo de color beige algo oscuro; tres manchas
costales uniformemente separadas comenzando desde la base del ala hasta la más cercana al termen que
se sitúa aproximadamente a 1/3 del mismo. El punto de la celda desplazado ligeramente hacia la base,
colocado en diagonal con el punto próximo al margen interno del ala. Los puntos del límite de las
celdas fusionados. El arco formado por los puntos negros de la zona submarginal, está muy definido.
Fimbrias blanquecinas. Alas posteriores de color gris ahumado uniforme con fimbrias de color blanco
amarillento.
Genitalia de la hembra (fig. 15): Papilas anales bien desarrolladas. Apófisis posteriores de gran
tamaño sobrepasando el VIII segmento. Apófisis anteriores de tamaño medio sobrepasando el ostium.
VIII segmento trapezoidal, ancho y corto. Ostium cóncavo bordeado por un área labial de longitud
doble a la anchura del ostium y muy esclerotizada. Antrum ancho, corto, levemente esclerotizado, con
forma de copa y que presenta un brusco estrechamiento en el contacto con el ductus bursae. Ductus
bursae de mucha longitud, cilíndrico o ligeramente trapezoidal, membranoso con tendencia a presentar
en su parte posterior ligeros pliegues. Bursa ovoidal, membranosa con un signum de buen tamaño, muy
visible, esclerotizado y de forma sensiblemente romboidal, de aristas casi lisas o con ligeras puntas
poco apreciables.
Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas.
Distribución: Según nuestros datos, la especie se distribuye por España y se encuentra en las
provincias de Alicante, Murcia y Valencia (GOZMÁNY, 2008), y ahora también de Almería.
Detalles: La hembra de Symmoca mimetica Gozmány, 2008 puede confundirse con S.
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
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perobscurata Gozmány, 1957 y S. petrogenes Walsingham, 1907; se diferencia de la primera en el
tamaño y forma del antrum (mayor en S. perobscurata), así como en los bordes dentados que presenta
el signum de la bursa en esta especie. La diferencia con la segunda está en el signum, que es
sumamente pequeño en S. petrogenes, tanto que pasa desapercibido (GOZMANY, 2008).
Turatia Amsel, 1942
Turatia Amsel, 1942. Veröff. dt. Kol. Übersee-Mus., 3: 234
ET: Holcopogon morettii Turati, 1926. Atti Soc. ital. Sci. Nat., 65: 70, fig. 38 [33]
= Ilionarsis Gozmány, 1959. Ann. hist.-nat. Mus. nat. hung., 51: 369
ET: Ilionarsis foeldvarii Gozmány, 1959. Ann. hist.-nat. Mus. nat. hung., 51: 369, fig. 5
Turatia scioneura (Meyrick, 1929)
Holcopogon scioneura Meyrick, 1929. Exot. Microlep., 3(17): 515
LT: Sinkat, SUDÁN
Material estudiado: SUDÁN, Sinkat, 9 11 (prep. gen. 2-14AV, 3-14AV), 1 0(prep. gen. 1-14AV),
28-X-1962, S. Panelius leg. (FMNH).
Descripción de la hembra (fig. 3): No encontramos diferencias significativas con el macho, por lo
que transcribimos la descripción original de MEYRICK (1929: 515): “
1
, 19 mm. Head, thorax grey-
whitish, face white. Palpi second joint pale grey, apical edge white, terminal joint white mixed pale
grey. Antennae light grey, shortly ciliated. Fore-wings rather narrow (narrower than in bubulcella),
apex obtuse, termen very obliquely rounded; 7 absent; whitish sprinkled light grey, appearing grey-
whitish; an undefined median streak of grey suffusion from near base to ⁄, some fuscous sprinkling (sic)
from this along fold; discal stigmata forming small elongate spots of blackish irroration, slight streaks
of fuscous irroration along upper edge of cell between these, and along veins between this and costa:
cilia whitish. Hindwings whitish-grey; cilia whitish. SUDAN, Sinkat, October (H. B. Johnson): 1 ex.”.
Genitalia de la hembra (fig. 17): Papilas anales bien desarrolladas y ligeramente esclerotizadas.
Apófisis posteriores de gran tamaño sobrepasando el VIII segmento y llegando hasta el ostium.
Apófisis anteriores también de gran longitud sobrepasando el antrum hasta el colicolum del ductus
bursae. EI VIII segmento es levemente trapezoidal, con sendas bandas verticales más esclerotizadas
que el resto. Ostium en forma de V y placa postvaginalis en forma de V inversa con el vértice
redondeado y muy esclerotizada. Antrum estrecho, cilíndrico, de mediano tamaño y altamente
esclerotizado, rematado en su parte anterior, en el contacto con el ductus bursae, por un brusco
estrechamiento algo deformado y retorcido. Ductus bursae de mediana longitud, cilíndrico o
ligeramente trapezoidal, membranoso. Bursa ovoidal, membranosa con un signum de tamaño medio,
muy visible, esclerotizado y de forma irregular absolutamente bordeada de espinas de diferente tamaño
y forma.
Biología: No se conocen los estados inmaduros ni las plantas nutricias de las orugas. Los imagos
se capturaron en el mes de octubre.
Distribución: Sólo se conoce de la localidad típica en Sinkat, Sudán.
Detalles: Esta especie fue originalmente incluida en el género Holcopogon Staudinger, 1859
(STAUDINGER, 1859), posteriormente en Ilionarsis Gozmány, 1959 (GOZMÁNY, 1959) y
actualmente en Turatia Amsel, 1942 (GOZMÁNY, 2000), opinión que seguimos aquí.
GELECHIIDAE
Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936 (fig. 4)
Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936. Ann. Mus. zool. polon., 11: 408, pl. 49, figs 22-25
LT: Podolien, Kreis Zaleszczyki, Ubierzowa, POLONIA
Material estudiado: ESPAÑA, BURGOS, San Martín de Don, a 770 m, 1 0, 14-VIII-2020, J. Gastón
leg., prep. gen. 8275JG (fig. 16).
A. VIVES MORENO & J. GASTÓN
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Biología: Las larvas se alimentan de Astragalus glycyphyllos L. y Colutea arborescens L.
(Fabaceae).
Distribución: Según nuestros datos la especie tiene una distribución Eurosiberiana (ELSNER et
al., 1999), habiéndose citado posteriormente de Austria (BUCHNER, 2004), Francia (VARENNE &
NEL, 2015), Italia (HUEMER, 2016), Suiza (SWISSLEPTEAM, 2010), por lo tanto, la especie resulta
nueva para España.
Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Syncopacma
sangiella (Stainton, 1863), actualmente Aproaerema sangiella (Stainton, 1863).
Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n.
Material estudiado: Holotipo, 1 1, ESPAÑA, BURGOS, Castrobarto, 770 m, 27-VI-2020, J. Gastón
leg., prep. gen. 8245JG, depositado en el Museo Nacional de Ciencias Naturales, en Madrid, España
(MNCN).
Descripción del macho (fig. 5): Envergadura, 9,5 mm (n=1). Cabeza bien desarrollada con pelos
escamiformes de color gris compactos en la frente y en la zona alta del epicráneo. Palpos labiales bien
desarrollados, con el segundo segmento dirigido hacia el frente y bien cubierto, por su parte inferior, de
una densa capa de pelos escamiformes de color blanquecino en la parte superior y gris en su parte
inferior. El tercer segmento, que se encuentra recubierto de pelos escamiformes muy cortos de color
blanquecino excepto en la punta, que son negros, es delgado, afilado y forma un ángulo de 120º con el
segundo segmento y se dirige hacia la parte superior. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas
de color gris ocráceo muy oscuro. Tórax y tégulas recubiertas de escamas de color gris, iguales que la
cabeza. Abdomen recubierto de las mismas escamas que el tórax. Los tres pares de patas, tanto el fémur
como la tibia están recubiertos de pelos de color gris muy claro, casi blanco, aunque se observan ligeras
salpicaduras de escamas de gris oscuro. Alas anteriores con el margen costal acusadamente convexo y
el ápex sumamente apuntado. Margen externo angulado, tanto que se confunde con el margen interno.
El color de fondo de las alas anteriores es gris, uniforme; destacan dos puntos negros (más bien dos
pequeñas líneas) situadas a 1/3 y 2/3 desde la base del ala hacia el apex y colocadas sobre la vena CuA1
(cubital). Las fimbrias están muy desarrolladas y son de color gris claro. Las alas posteriores son de
color ocre-grisáceo uniforme y sus fimbrias del mismo color que las de las alas anteriores.
Genitalia del macho (fig. 11): Uncus cilíndrico, alargado, con el extremo redondeado. Gnathos
muy esclerotizado, con forma de gancho de longitud menor que el uncus. Tegumen potente,
rectangular. Valvas alargadas y delgadas, casi rectangulares, aunque de geometría variable que hace que
su extremo (cucullus) se presente retorcido en las preparaciones. La valva, en su base, presenta un
potente proceso costal giboso rematado en una gruesa punta formada por la agrupación y fusión de
tejido base y espinas. Sacculus presente en forma de lóbulo. Vinculum con dos grandes procesos.
Escleritos laterales cortos y gruesos. Saccus triangular y muy potente, con cresta eslerotizada central.
Aedeagus cilíndrico con un coecum penis muy ensanchado, de forma globular y con una pequeña
banda de espinas exteriores que separan la parte globular de la cilíndrica.
Hembra: Desconocida.
Biología: Desconocida.
Distribución: Sólo conocida de la localidad tipo.
Detalles: De momento mantenemos esta nueva especie en el género Megacraspedus Zeller, 1857 y
siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería de colocarse, provisionalmente, detrás de M.
balnerariellus (Chretién, 1907).
Etimología: Dedicamos esta nueva especie a nuestro estimado colega el Dr. Sergej Sinev (San
Petersburgo, Rusia), eminente especialista en la familia Gelechiidae.
TORTRICIDAE
Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997 (fig. 6)
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
SHILAP Revta. lepid., 48 (192) diciembre 2020 721

Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997. Bool. Zool. Agr. Bachic., (2)29(1): 46, figs 1-5
LT: Verona Monte, ITALIA
Material estudiado: ESPAÑA, BURGOS, Castrobarto, a 770 m, 1 1, 26-VIII-2020, J. Gastón leg.,
prep. gen. 8177JG (fig. 12).
Biología: Desconocida. Periodo de vuelo desde julio hasta septiembre (HUEMER &
TREMATERRA, 1997; RAZOWSKI, 2009).
Distribución: Según nuestros datos la especie se distribuye por el norte de Italia, (Trentino y
Véneto), en alturas comprendidas entre los 300 y los 1.126 m. (PINZARI et al., 2006) y en Francia
(Altos Alpes) (RAZOWSKI, 2002, 2009), por lo tanto, la especie resulta nueva para España.
Detalles: Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse detrás de Cochylimorpha
hilarana (Herrich-Schäffer, 1851).
PYRALIDAE
Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n.
Material estudiado: Holotipo, 1 1, ESPAÑA, GRANADA, Albuñol, 27-VIII-1979, A. Vives leg.,
prep. gen. 1360AV, depositado en la colección A. Vives / Museo Nacional de Ciencias Naturales, en
Madrid (MNCN). Paratipos: 6 11, 5 00: ALMERÍA, Retamar, a 25 m, 1 0, 20-X-2017, J, Gastón leg y
coll.; GRANADA, Melicena, a 150 m, 1 0, 6-IX-2016, J. Gastón leg. y coll.; Idem, 1 0, 1 1, J, Gastón leg
y coll., prep. gen. 5502JG y 5501JG; Barranco Escalate, a 90 m, 1 1, 19-V-2019, Tx. Revilla leg. y
coll., prep. gen. 7322JG; Idem, 2 11, 10-IX-2020, J. Gastón leg. y coll., prep. gen. 7282JG y 7283JG;
Vélez de Benaudalla, a 100 m, 1 0, 12-X-2018, Tx. Revilla leg. y coll., prep. gen. 7288JG; Idem, 1 1,
19-V-2019, Tx. Revilla leg. y coll., prep. gen. 7321JG; La Bernardilla, a 100 m, 1 0, 19-X-2017, J,
Gastón leg y coll., prep. gen. 7370JG; MÁLAGA, Urbanización Punta Lara, Nerja, a 25 m, 1 1, 2-IX-
1994, Tx. Revilla leg. y coll. (REVILLA, 2015).
Descripción del macho (fig. 7): Envergadura, 13,10 mm (n=3). Cabeza bien desarrollada con
pelos escamiformes de color ocre claro compactos en la frente y en la zona alta del epicráneo. Palpos
labiales bien desarrollados, con el segundo y tercer segmentos dirigidos hacia el frente y bien
cubiertos de una compacta capa de pelos escamiformes que son de color gris oscuro en el segundo
segmento y blanco ocráceo en el tercer segmento, donde se alterna en su base y extremo con pelos de
color gris oscuro. Antenas filiformes recubiertas de pequeñas cerdas de color gris ocráceo muy
oscuro. Patagio donde destacan por dos filas de escamas bien desarrolladas; la más próxima al
epicráneo está formada por escamas predominantemente de color rojizo asalmonado, y la más
próxima al tórax de color ocre claro, casi blanco. Tórax y tégulas recubiertas de escamas de color
predominante ocre claro, aunque entremezcladas con escamas de color rojizo asalmonado y alguna de
color gris oscuro. Abdomen recubierto de escamas de color uniforme ocre claro. Los tres pares de
patas, tanto el fémur como la tibia están recubiertos de pelos de color ocre muy claro, casi blanco,
alternándose en franjas con pelos de color gris casi negro. Los tarsos están recubiertos de pelos gris
oscuro, casi negros. Alas anteriores con el margen costal ligeramente convexo y el ápex suavemente
redondeado. Margen externo casi vertical y poco redondeado. El color de fondo de las alas anteriores
es gris uniforme, formado por la salpicadura de infinidad de escamas de color gris oscuro
entremezcladas con escamas de color gris muy claro. Destacan tres franjas verticales (o casi) desde la
base del ala hasta el termen. La más próxima a la base (situada en la zona basal), dispone de una
pequeña zona de escamas negras, poco perceptibles, rematada hacia el exterior por estrecha banda
blanca y otra de escamas rojizas en su extremo; la segunda franja, que es la más visible al ser muy
ancha, se sitúa en la zona discal formando un ligero arco desde la costa hasta el margen interno del
ala, y se compone de tres franjas de escamas de color blanco, negro y rojizo asalmonado (en el orden
desde la base del ala al termen), recercadas por dos estrechas franjas de escamas negras en sus
externos. Por último, la tercera franja situada en la zona postdiscal, es estrecha y zigzagueante, y se
compone de dos líneas de escamas oscuras y paralelas. Destacan dos puntos negros (más bien dos
A. VIVES MORENO & J. GASTÓN
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pequeñas líneas) situados en la zona postdiscal entre los espacios de las venas V6 y V4. También se
observan varios puntos negros en la zona marginal (unos cinco), justo en el límite con el termen. Las
fimbrias de las alas anteriores son de color gris oscuro en su base y gris claro en su extremo. Las alas
posteriores, con la geometría típica de la familia, son de color uniforme ocre-grisáceo muy claro, casi
plateado, y sus fimbrias, bien desarrolladas, son de color gris muy claro.
Genitalia del macho (fig. 13): Uncus piramidal con el extremo redondeado. Gnathos formado por
un grueso y esclerotizado apéndice recto con su extremo muy puntiagudo y casi tan largo como el
uncus situado en la conjunción de dos lóbulos que forman el extremos de los brazos del gnathos. Valvas
alargadas con la costa ligeramente convexa con un cordón marginal esclerotizado y levemente
desviadas hacia arriba en su ápex con el cucullus redondeado. Sacculus ligeramente esclerotizado y
ondulante ocupando el primer tercio de la valva. Juxta triangular, claramente bilobular, con dos
potentes brazos delgados y divergentes estrechándose paulatinamente hacia sus extremos, que se
rematan en una punta redondeada. Saccus de tamaño medio, triangular y apuntado. Aedeagus
cilíndrico, de mediano tamaño con el coecum muy redondeado. Vesica forrada en su parte basal y
central de infinidad de minúsculos granos muy esclerotizados. El octavo segmento del abdomen
incluye una culcita muy característica, formada por dos brazos esclerotizados separados desde su base,
que es ancha, y retorcidos hacia sus respectivos exteriores, adquiriendo la apariencia de la letra PI
invertida.
Descripción de la hembra (fig. 8): Envergadura, 11,70 mm, (n = 4). La morfología de las hembras
no difiere de la de los machos.
Genitalia de la hembra (fig. 18): Papilas anales de bien desarrolladas, muy anchas en su base y
apuntadas en su extremo, que es redondeado. Apófisis posteriores de mediano tamaño, lo mismo que
las anteriores. El octavo segmento dispone de una escotadura en el borde posterior. Ostium con forma
de U muy abierta, remarcada por un cordón esclerotizado y un antrum campaniforme y membranoso.
Ductus bursae corto, cilíndrico y membranoso, que se ensancha visiblemente antes de su contacto con
la bursa, donde se aprecia con claridad una placa o signum alargada de bordes dentados. Bursa ovoidal,
membranosa, con el ductus seminalis colocado en su parte posterior y recubierta en su pared interna y
en uno de sus lados, de unos finos gránulos que comienzan en la mitad de la bursa y se extienden hasta
el ductus, rodeando la placa descrita anteriormente.
Biología: Desconocida. No se conocen los estados inmaduros ni las plantas que sustentan a las
orugas. Los imagos se capturaron en biotopos próximos a la costa mediterránea, fundamentalmente en
ramblas kársticas formadas por calizas y dolomías en el piso bioclimático termomediterráneo, y a
altitudes que oscilan desde el nivel del mar a 150 m. Por los datos de que disponemos, hemos
comprobado que vuela al menos en dos generaciones; la primera y más abundante en mayo y la
segunda en septiembre-octubre, aunque no descartamos que lo haga en una única generación desde
mayo a octubre, ya que se han capturado escasos ejemplares en agosto.
Distribución: Conocida únicamente de las provincias de Almería, Granada y Málaga.
Detalles: Hasta ahora se consideraba que la población española de esta especie correspondía a
Sudaniola remanella Roesler, 1973 (ROESLER, 1985), pero las diferencias en su genitalia demuestran
la validez de este nuevo taxón. En los machos éstas radican, sobre todo, en la esclerotización de la
culcita del 8º segmento (figs. 13b y 13c) además de la geometría de las valvas; en las hembras, en la
ausencia de la placa esclerotizada que está presente en la base del ductus bursae de Sudaniola
asselbergsi Vives & Gastón, sp. n. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), debería colocarse donde está
Sudaniola remanella Roesler, 1973, especie que debe de eliminarse de la fauna española.
Etimología: Dedicamos esta nueva especie a nuestro estimado colega Jan E. F. Asselbergs (GD
Bergen op Zoom, Países Bajos), eminente especialista en Pyraloidea.
NOCTUIDAE
Spodoptera frugiperda (Smith, 1797)
Phalaena frugiperda Smith, 1797, in Smith & Abbot. Lep. Ins. Georgia, 2: 191, pl. 96
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
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LT: Georgia, EE.UU.
= Laphygma macra Guenée, 1852, in Boisduval & Guenée. Hist. nat. Ins., Noct., 5: 157
LT: BRASIL, COLOMBIA, GUYANA
= Laphygma? inepta Walker, 1856. List Specs. Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 190
LT: Santarem, BRASIL, VENEZUELA
= Prodenia signifera Walker, 1856. List Specs. Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 193
LT: Georgia, EE.UU, VENEZUELA
= Prodenia plagiata Walker, 1856. List Specs Lep. Ins. Brit. Mus., 9: 194
LT: JAMAICA
= Prodenia autumnalis Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 109, figs. 45, 46a
LT: Missouri, EE.UU.
= Laphygma frugiperda fulvosa Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 117, fig. 46b
LT: Missouri, EE.UU.
= Laphygma frugiperda obscura Riley, 1871. 3rd. Rep. Ins. Missouri: 117, fig. 46c
LT: Missouri, EE.UU.
Material estudiado: ESPAÑA, TENERIFE, 2 11, 15-VII-2020, A. González leg., prep. gen.
61725AV (MNCN_Ent 265978) (fig. 14), capturados en trampas adhesivas tipo Delta en cartón
engomado con feromonas específicas.
Biología: Es una especie polífaga y sus principales plantas nutricias son el maíz (Zea mays L.), la
caña de azúcar (Saccharum officinarum L.), el sorgo (Sorghum bicolor (L.) Moench), el arroz (Oryza
sativa L.) y en Brasil, el algodón (Gossypium hirsutum L.). Cuenta con una veintena de plantas huésped
menores, entre las que se incluyen la cebolla (Allium cepa L.), el cacahuete (Arachis hypogaea L.), el
pimiento (Capsicum annuum L.), el crisantemo de floristería (Dendranthema grandiflorum Ramat.), el
clavel (Dianthus caryophyllus L.), el boniato (Ipomoea batatas(L.) Lam.), la alfalfa (Medicago sativa
L.), el tabaco (Nicotiana tabacum L.), la judía (Phaseolus vulgaris L.), el tomate (Solanum
lycopersicum L.), la berenjena (Solanum melongena L.) y otras especies de Brasicacea, Cucurbitacea y
Poaceae.
Distribución: Por los datos que disponemos, esta especie se distribuye desde el sur de Canadá
hasta el norte de Argentina y Chile (POGUE, 2002). En el año 2016 se detectó su presencia en el África
subsahariana, concretamente en Nigeria, Santo Tomé y Príncipe (GOERGEN et al., 2016) ocupando
toda la región Afrotropical y alcanzando Egipto en 2019 (VENNILA et al., 2019), Mauritania (EPPO,
2020a) e Israel (EPPO, 2020b). Se extiende por Asia llegando a la India en 2018 (REPALLE et al.,
2020) y en 2019 ya se encuentra en el Yemen, Bangladesh, Myanmar, Sri Lanka, Tailandia y más
recientemente en China, Corea del Sur, Japón (VENNILA et al., 2019), Pakistán (NAEEM-ULLAH et
al., 2019), Laos (FAO, 2019), Filipinas (IPPC, 2019), Indonesia (EPPO, 2019) y Vietnam (USDA
GAIN, 2019). Durante los primeros meses de 2020 ha sido capturada, en trampas, en las islas de Saibai
y Erub en el Estrecho de Torres (IPPC, 2020) y en el norte de Australia continental (QUEENSLAND
GOVERNMENT, 2020). Ahora se encuentra en las Islas Canarias, España.
Detalles: Es considerada como una de las más importantes plagas para la agricultura a nivel
mundial. Siguiendo a VIVES MORENO (2014), esta especie hay colocarla detrás de S. cilium (Guenée,
1852, in Boisduval & Guenée). En la misma trampa pudimos encontrar y estudiar 3 11 de Leucania
loreyi (Duponchel, 1827, in Godart & Duponchel), prep. gen. 61724 (MNCN_Ent 265977).
Agradecimientos
No podemos terminar este trabajo sin agradecer la colaboración y la ayuda prestada por las
siguientes personas e Instituciones: al Dr. Ing. Pedro del Estal (Madrid, España), Dr. Lauri Kaila
(Helsinki, Finlandia), Txema Revilla (Vizcaya, España) y a Emili Requena (Barcelona, España) por la
aportación de material para su estudio; a Francisco Javier Conde de Saro, por su ayuda lingüística; a las
Direcciones Generales de Medio Ambiente por las autorizaciones concedidas allí donde se han
desarrollado los muestreos, en parte, dentro del Proyecto Científico de SHILAP y a la Dra. Amparo
A. VIVES MORENO & J. GASTÓN
724 SHILAP Revta. lepid., 48 (192) diciembre 2020

Blay, Conservadora de Entomología, en el Museo Nacional de Ciencias Naturales (Madrid, España),
que siempre ha estado dispuesta a ayudarnos en cuantas consultas la hemos solicitado.
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*A. V. M
Cátedra de Entomología Agraria
E.T.S. de Ingeniería Agronómica, Alimentación y Biosistemas
Avenida de Puerta de Hierro, 2
E-28040 Madrid
ESPAÑA / SPAIN
E-mail: avives1954@outlook.es
https://orcid.org/0000-0003-3772-2742
J. G.
Amboto, 7-4ª-Dcha.
E-48993 Getxo (Vizcaya)
ESPAÑA / SPAIN
E-mail: fjgaston@yahoo.es
https://orcid.org/0000-0003-3382-3874
*Autor para la correspondencia / Corresponding author
(Recibido para publicación / Received for publication 10-X-2020)
(Revisado y aceptado / Revised and accepted 2-XI-2020)
(Publicado / Published 30-XII-2020)
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
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Figs 1-8.– Adulto: 1. Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020, 1. 2. Symmoca mimetica Gozmány,
2008, 0. 3. Turatia scioneura (Meyrick, 1929), 0. 4. Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936, 0. 5.
Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n., 1, holotypus. 6. Cochylimorpha erlebachi Huemer &
Trematerra, 1997, 1. 7. Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n., 1, holotypus. 8. Sudaniola asselbergsi
Vives & Gastón, sp. n., 0, paratypus.
A. VIVES MORENO & J. GASTÓN
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2
4
6
8
1
3
5
7

Figs 9-13.– Genitalia macho: 9. Paraswamerdamia kitamurae Gastón & Vives, 2020, prep. gen. 8219JG. 10.
Paraswamerdamia albicapitella (Scharfenberg, 1805), prep. gen. 8221JG. 10a. Idem, aedeagus. 11.
Megacraspedus sinevi Vives & Gastón, sp. n., holotypus, prep. gen. 8245JG. 11a. Idem, aedeagus. 11b. Idem,
detalle del aedeagus. 12. Cochylimorpha erlebachi Huemer & Trematerra, 1997, prep. gen. 8177JG. 12a. Idem,
aedeagus. 13. Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n., holotypus, andropigio, prep. gen. 1316AV. 13a.
Idem, aedeagus. 13b. Idem, culcita del 8º segmento, paratypus, prep. gen. 7321JG. 13c. Sudaniola remanella
Roesler, 1973, culcita del 8º segmento, paratypus, siguiendo a ROESLER (1973).
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
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10
12
9
11
13
10a
11b
12a
11a
13a
13b
13c

Figs 14-16.– Genitalia macho y hembra: 14. Spodoptera frugiperda (Smith, 1797), prep. gen. 61725AV. 14a.
Idem, aedeagus. 15. Symmoca mimetica Gozmány, 2008, prep. gen. 1240ER. 15a. Idem, detalle ostium y
antrum. 15b. Idem, detalle del signum. 16. Aproaerema ochrofasciella Toll, 1936, prep. gen. 8275JG. 16a.
Idem, detalle del antrum y ductus bursae.
A. VIVES MORENO & J. GASTÓN
730 SHILAP Revta. lepid., 48 (192) diciembre 2020
14
16
15
14a
15b
16a
15a

Figs 17-18.– Genitalia hembra: 17. Turatia scioneura (Meyrick, 1929), prep. gen. 1-14AV. 17a. Idem,
ostium. 17b. Idem, signum de la bursa. 18. Sudaniola asselbergsi Vives & Gastón, sp. n., paratypus, prep.
gen. 7370JG.
CINCO NUEVAS ESPECIES PARA LA FAUNA DE ESPAÑA Y OTRAS INTERESANTES INFORMACIONES LEPIDOPTEROLÓGICAS
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18
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17a
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