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Vaginomdiagnostik – eine neue Ära in der gynäkologischen Infektiologie

Authors:
Genitale Infektionen stellen ein häufi-
ges Problem in der gynäkologischen
Sprechstunde dar. Die Diagnose ergibt
sich aus der Anamnese und dem Be-
fund der gynäkologischen Unter-
suchung. Dabei wird ein Nativpräparat
zur direkten mikroskopischen Beurtei-
lung angefertigt. Zusätzlich wird typi-
scherweise ein bakteriologischer Ab-
strich entnommen. Die Therapie folgt
entsprechenden Leitlinien so werden
bei einer bakteriellen Vaginose meist
Metronidazol oder Clindamycin to-
pisch oder systemisch verordnet.
In der klinischen Routine zeigt sich, dass
beim oben beschriebenen Vorgehen die
Rekurrenzrate zwischen 3060% liegt.
Hierfür gibt es mehrere Erklärungen:
1. Durch die antibiotische Therapie wird
oft auch die physiologische Laktobazil-
len-Flora der Vaginalschleimhaut be-
einträchtigt. Das begünstigt eine Re-In-
fektion.
2. Im bakteriologischen Standardabstrich
wird nur ein geringer Anteil der poten-
ziell pathogenen Keime erfasst. Viele
Keime, die als Verursacher der bakte-
riellen Vaginose infrage kommen, las-
sen sich nur schlecht oder gar nicht an-
züchten und entgehen somit dem
Nachweis. Damit geht die antibiotische
Therapie oftmals an den relevanten pa-
thogenen Keimen vorbei.
Neue mikrobiologische Methoden auf
der Grundlage des Next-Generation Se-
quencing (NGS) können die gesamte
Keimbesiedlung z. B. im Darm (= Darm-Mi-
krobiom) oder im Bereich der Vaginal-
schleimhaut (= Vaginom) erfassen und da-
mit auch eine Vielzahl potenziell pathoge-
ner Keime identifizieren. Quantitativ wird
das Vaginom normalerweise durch Lakto-
bazillenarten (Lactobacillus species) domi-
niert, jedoch lassen sich in Abhängigkeit
vom Gesundheitszustand insgesamt ca.
300 Bakterienarten nachweisen [1]. Diese
Artenvielfalt wird mit dem Shannon-Index
beschrieben: Je höher der Index, desto
mehr Bakteriengattungen lassen sich
nachweisen.
Um die jeweilige Zusammensetzung der
Keimbesiedlung klassifizieren und verglei-
chen zu können, wurde zusätzlich der Be-
griff Community State Types(CSTs) ein-
geführt [2, 3]. Ursprünglich wurden 5 CSTs
beschrieben (Tab. 1), mit zunehmender
Datenfülle zeigt sich jedoch die Notwen-
digkeit der Unterscheidung in bis zu
12 CSTs, um die tatsächliche Komplexität
des Vaginoms zu beschreiben.
Veränderung der Keimbesied-
lung im Lebenszyklus und
Bedeutung der Laktobazillen
Unmittelbar nach der Geburt überwiegen
bei Neugeborenen unter dem Einfluss des
mütterlichen Östrogens Laktobazillen in
der Vagina. Während der Kindheit steigt
die Artenvielfalt an, um mit Beginn der
Menarche in Abhängigkeit von den Tan-
ner-Stadien wieder abzunehmen [4].
Grund hierfür ist die Erhöhung der Anteile
von Laktobazillen in der Vaginalflora, was
wiederum durch die Bildung von Laktat zu
einer Abnahme des pH-Wertes führt [5
7].
Es konnten inzwischen mehr als 120 Arten
von Laktobazillen identifiziert werden. Die
wichtigsten Arten von Laktobazillen in der
Vagina sind Lactobacillus crispatus (CST I),
Lactobacillus gasseri (CST II), Lactobacillus
iners (CST III) und Lactobacillus jensenii
(CST V). Durch die Adhärenz von Lakto-
bazillen an Epithelzellen, Bildung von Bak-
teriozinen und Senkung des pH-Wertes
sowie Produktion von H2O2bauen Lakto-
bazillen einen Abwehrmechanismus ge-
gen das Eindringen pathogener Mikro-
organismen auf [810].
Hierzu kommt es vor allem auf die Bildung
von Laktat an. Es existieren 2 Isoformen:
D-Laktat und L-Laktat. Während D-Laktat
eine ausgesprochene Schutzwirkung am
Vaginalepithel entfaltet, trägt L-Laktat
kaum etwas zum Schutz vor pathogenen
Keimen bei. Nun unterscheiden sich die
verschiedenen Laktobazillusarten u. a. hin-
sichtlich ihrer Fähigkeit zur D- und L-Lak-
tat-Bildung: L. crispatus,L.gasseri und
L. jensenii bilden sowohl D- als auch L-Lak-
tat, während L. iners überwiegend L-Laktat
bildet [11].
Ein hoher Anteil an L. iners mit überwie-
gender L-Laktat-Bildung führt somit zu
einem erhöhten Risiko für die Besiedlung
der Vaginalschleimhaut mit pathogenen
Keimen wie z. B. Gardnerella vaginalis oder
Chlamydia trachomatis [1214]. Damit
wird deutlich, dass es bei der Analyse des
Vaginoms entscheidend darauf ankommt,
die vorhandenen Laktobazillenarten ge-
nau zu identifizieren, um zwischen D- und
L-Laktat-Bildnern differenzieren zu können
und damit das Risikopotenzial für eine bak-
terielle Vaginose abschätzen zu können.
Bakterielle Vaginose
Die Prävalenz des Krankheitsbildes der
bakteriellen Vaginose (BV) beträgt in Ab-
hängigkeit von der geografischen Region
und der Ethnizität zwischen 23 % in Europa
und 33% bei Afroamerikanerinnen [15].
Folgen einer BV sind nicht nur lokale Ver-
änderungen wie Ausfluss oder Geruchsbil-
dung, sondern das Bestehen einer BV hat
auch einen negativen Einfluss auf den Ver-
Vaginomdiagnostik eine neue Ära
in der gynäkologischen Infektiologie
Tab. 1 Klassifikation der Community
State Types entsprechend dem jeweili-
gen Leitkeim. Daten nach [2].
Leitkeim CST
Lactobacillus crispatus I
Lactobacillus g asseri II
Lactobacillus iners III
Gardnerella vag inalis/
Atopobium vaginae
IV
Lactobacillus jensenii V
484 Geburtsh Frauenheilk 2020; 80
GebFra Mag azin | Aktuell diskutiert
Online publiziert: 18.05.2020
lauf einer Schwangerschaft, den Erfolg
einer In-vitro-Fertilisation oder auf die Sus-
zeptibilität für sexuell übertragbare Er-
krankungen [1619]. Die Pathogenese
der BV ist komplex, es kann aber nach heu-
tigen Erkenntnissen davon ausgegangen
werden, dass vor allem Bakterien aus der
G.vaginalis-Gruppe in Kombination mit
weiteren pathogenen Keimen ursächlich
an der Entstehung einer bakteriellen Vagi-
nose beteiligt sind [20 22].
Bereits vor mehreren Jahren konnten Sub-
gruppen von G.vaginalis identifiziert wer-
den, die sich vor allem im Hinblick auf ihre
Virulenzfaktoren (Bildung von Biofilmen,
Expression von Sialidasen und Vaginolysin)
unterscheiden. Die Ausprägung dieser Vi-
rulenzfaktoren entscheidet darüber, ob es
sich um einen eher pathogenen Subtyp
von G. vaginalis handelt, oder um einen
eher apathogenen Subtyp, der mehr oder
weniger der physiologischen Schleimhaut-
flora zuzurechnen ist [23].
Letztendlich ist bei der BV von einem poly-
mikrobiellen Geschehen auszugehen, so-
dass neben G. vaginalis meist noch weitere
potenziell pathogene Keime gefunden
werden, wie z.B. Atopobium vaginae,
Bacterial Vaginosis associated Bacteria
(BVAB 1 und 2), Mageeibacillus indolicus
(BVAV 3), Mobiluncus curtisii,Mobiluncus
mulieris,Sneathia sanguinegens und andere
Spezies [2426] (Abb. 1).
Um das Krankheitsbild einer BV zu definie-
ren und sicher zu diagnostizieren, ist es
folglich notwendig, alle vorhandenen Bak-
terienarten zu identifizieren, um hieraus
individualisierte Therapieempfehlung ab-
leiten zu können. Ziel einer individualisier-
ten Therapie ist es, die als pathogen ein-
zuschätzenden Bakterienarten in ihrer
Zahl zu vermindern oder, wenn möglich,
zu eliminieren und gleichzeitig das Wachs-
tum von Laktobazillen, insbesondere
L. crispatus,L. jensenii und L.gasseri,zuför-
dern.
Klinischer Einsatz
der Vaginom-Analyse
Die Vaginom-Analyse bietet im Vergleich
zur mikrobiologischen Standarddiagnostik
Vorteile bei Patientinnen mit rezidivieren-
den bakteriellen Vaginosen sowie bei
Frauen mit unerfülltem Kinderwunsch/ha-
bituellen Aborten und Frühgeburtsnei-
gung.
Rezidivierende bakterielle
Vaginose
Wohl jeder Frauenarzt kennt Patientinnen,
die immer und immer wieder mit bakte-
riellen Vaginosen vorstellig werden und
bei denen bereits mehrfach eine entspre-
chende Antibiose z. B. m it Metronidazol
und/oder Clindamycin durchgeführt wur-
de. Ein Grund für die hohe Rate an Re-In-
fektionen liegt u. a. in dem für Metronida-
zol und Clindamycin jeweils unterschied-
lichen Wirkspektrum: G. vaginalis und
A. vaginae sind zwar gegen Clindamycin
empfindlich, nachteilig ist aber die gleich-
zeitige Wirksamkeit von Clindamycin ge-
gen Laktobazillen. Somit können zwar
G.vaginalis und A. vaginae durch die Be-
handlung meist eliminiert werden, gleich-
zeitig führt dies jedoch zur Depletion der
protektiven Laktobazillen.
Metronidazol ist im Gegensatz zu Clinda-
mycin gegen Laktobazillen nicht wirk-
sam, aber gleichzeitig sind auch die
G.vaginalis-Subgruppen A und D gegen
Metronidazol resistent. Die Metronidazol-
Behandlung führt somit in vielen Fällen of-
fensichtlich nur zu einer Teil-Elimination
von G. vaginali s [27].
Ein weiterer Grund für häufige Rezidive
einer bakteriellen Vaginose liegt in dem
heterogenen Keimspektrum: Neben den
o.g. typischenErregern (G. va ginalis/
A. vaginae) findet sich meist eine Vielzahl
potenziell pathogener Keime, die ggf. gar
nicht auf Metronidazol oder Clindamycin
ansprechen.
Mit der Vaginom-Analytik ist nun der
Nachweis des gesamten Keimspektrums
möglich, ebenso die Identifizierung ent-
sprechender Subgruppen. Damit eröffnet
sich im Gegensatz zum bisherigen Vor-
gehen die Möglichkeit einer gezielten
antibiotischen Therapie zur Elimination
der pathogenen Keime sowie die Option
zur Gabe von Probiotika zur (Wieder-)Her-
stellung des physiologischen Keimspek-
trums.
Unerfüllter Kinderwunsch/
habituelle Aborte
Bei Frauen mit unerfülltem Kinderwunsch
und ebenso bei Frauen mit habituellen
Aborten lässt sich mit der herkömmlichen
mikrobiologischen Diagnostik meist keine
spezifische Infektion als Ursache der Infer-
tilität nachweisen. Unter anderem deshalb
empfiehlt auch die aktuelle Leitlinie zur
Diagnostik und Therapie vor einer assis-
tierten reproduktionsmedizinischen Be-
60504030
relative Häufigkeit (%)
20100
Dialister sp.
Sneathia sanguinegens
Porphyromonas uenonis
Parvimonas micra
Sneathia amnii
Prevotella AY72
Prevotella amnii
Mycoplasma hominis
Clostridiales BVAB2
Atopobium vaginae
Prevotella timonensis
Prevotella sp.
Gardnerella vaginalis
Lachnospira BVAB1
Abb. 1 Typische Zusammensetzung des Vaginoms bei einer Patientin mit bakterieller Vagi-
nose.
485
Geburtsh Frauenheilk 2020; 80
handlung zwar ein Screening auf eine
chronische Chlamydieninfektion, aller-
dings darüber hinaus keine spezifische
Diagnostik zum Ausschluss genitaler Infek-
tionen [28]. Hier bietet die Vaginom-Ana-
lytik neue Ansatzpunkte: es konnte ge-
zeigt werden, dass pathologische Verän-
derungen des Vaginoms sich unmittelbar
auf die Erfolgswahrscheinlichkeit einer
IVF-Behandlung auswirken. Es gibt einen
direkten Zusammenhang zwischen dem
vorliegenden Community State Type (CST)
und der Konzeptionschance sowie der kli-
nischen Schwangerschaftsrate bei repro-
duktionsmedizinischen Behandlungen.
Es erscheint daher sinnvoll, vor Einleitung
einer IVF/ICSI-Behandlung eine Vaginom-
diagnostik vorzunehmen [29 31].
Auch in der aktuellen Leitlinie zu habituel-
len Aborten wird ein generelles Screening
auf vaginale Infektionen außerhalb der im
Rahmen der Schwangerenvorsorge übli-
chen Untersuchungen abgelehnt, da bis-
lang unklar war, ob es einen Zusammen-
hang zwischen habituellen Aborten und
Infektionen gibt [32].
Mit Anwendung der Vaginom-Analytik
konnte jedoch gezeigt werden, dass bei
Frauen mit Abort die Diversität des Keim-
spektrums signifikant erhöht war
(p = 0,003) und gleichzeitig eine Depletion
der Laktobazillen vorlag (p = 0,005) [33].
Darüber hinaus konnte im Gegensatz
zur früheren Lehrmeinung nachgewie-
sen werden, dass das Endometrium mikro-
biell besiedelt und keineswegs steril ist,
dabei gibt es eine große Übereinstim-
mung des vaginalen mit dem endometria-
len Keimspektrum. Erwartungsgemäß war
die Anzahl der Bakterien im Uterus im Ver-
hältnis zur Vagina um 24log
10-Stufen
niedriger [34,35].
Bei Frauen mit habituellen Aborten oder
Implantationsstörungen bei IVF/ICSI-Be-
handlungen können wir nach gegenwär-
tiger Datenlage davon ausgehen, dass es
mithilfe der Vaginom-Analytik gelingen
wird, aus der Gruppe der idiopathischen
Fällediejenigen zu identifizieren, bei de-
nen eine genitale Infektion als (Teil-)Ursa-
che des Geschehens gefunden werden
kann. Damit eröffnet sich dann grundsätz-
lich die Möglichkeit einer individualisierten
Behandlung.
Prävention der Frühgeburt
Neben anderen Faktoren gelten intraute-
rine Infektionen als eine potenzielle Ursa-
che von Frühgeburten [36]. Diese Infektio-
nen lassen sich mit konventionellen mikro-
biologischen Techniken kaum nachweisen,
da der direkte Zugang zum intrauterinen
Kompartiment nur bedingt gegeben ist
und sich zahlreiche potenziell pathogene
Keime dem Nachweis durch Standard-Kul-
turtechniken entziehen.
Laktobazillen spielen wie auch außerhalb
der Schwangerschaft eine wichtige Rolle
zur Abwehr potenziell pathogener Keime.
Es konnte gezeigt werden, dass das Risiko
für vaginale Infektionen und daraus resul-
tierende Schwangerschaftskomplikatio-
nen davon abhängt, welche Laktobazillus-
Spezies nachweisbar ist: Bei Frauen mit
Dominanz von L. iners zeigten sich im Ver-
gleich zu Frauen mit Dominanz von
L. crispatus erhöhte Entzündungsmarker in
der Amnionflüssigkeit. Daraus resultierte
in letzter Konsequenz ein erhöhtes Früh-
geburtsrisiko [37].
Liegt eine manifeste Infektion vor, die zu
entsprechenden Frühgeburtsbestrebun-
gen führt, so muss sofort eine entspre-
chende Therapie eingeleitet werden. In
einer solchen Situation kommt die Vagi-
nom-Analytik gewissermaßen zu spät
schon durch die Befundlaufzeit von meh-
reren Tagen. Die Vaginom-Analytik zielt
vielmehr darauf ab, bereits im Vorfeld
eines Frühgeburtsereignisses idealerwei-
se sogar vor der Schwangerschaft patho-
logische Veränderungen der vaginalen
Keimbesiedlung zu erfassen, um dann ge-
zielt präventive Maßnahmen einleiten zu
können. Dabei geht es nicht nur um die Eli-
mination potenziell pathogener Mikro-
organismen, sondern um die Wiederher-
stellung eines physiologischen Vaginoms
mit Laktobazillen der entsprechenden
Subtypen.
Praktisches Vorgehen
Für die Praxis kann nun unter Berücksichti-
gung der konventionellen mikrobiologi-
schen Diagnostik und der Vaginom-Ana-
lytik folgendes Vorgehen bei vaginalen In-
fektionen empfohlen werden:
akute (Erst-)Infektion: konventioneller
bakteriologischer Abstrich zum Nach-
weis von typischen Erregern der bakte-
riellen Vaginose. Je nach Befund ggf.
Antibiose nach Leitlinie.
Verdacht auf sexuell übertragbare Er-
reger: molekularbiologische Methoden
(PCR) sowie ggf. Antikörpernachweis
im Serum. Je nach Befund ggf. Antibio-
se nach Leitlinie und Meldung an die
Gesundheitsbehörden.
Rezidivierende bakterielle Vaginose/
unerfüllter Kinderwunsch/habituelle
Aborte/Frühgeburtsneigung: vollstän-
dige Analyse des Vaginoms mittels Se-
quenzierung bakterieller Genome zur
Erfassung sämtlicher Bakterienarten
sowie Identifikation der entsprechen-
den Subgruppen. In Abhängigkeit vom
gefundenen Keimspektrum und deren
Subgruppen kann daraus eine indivi-
dualisierte Therapieempfehlung abge-
leitet werden, unter Einsatz einer ziel-
gerichteten Antibiose, die ggf. durch
die Gabe entsprechender Probiotika er-
gänzt wird. Damit lässt sich das Rezidiv-
risiko bei bakteriellen Vaginosen sen-
ken, und Paare mit idiopathischer In-
fertilitätkönnen einer individualisier-
ten Therapie zugeführt werden.
Interessenkonflikt
Prof. Heizmann sowie Prof. Keck sind
Angestellte der amedes GmbH, Hamburg.
Autorinnen/Autoren
Wolfgang R. Heizmann
Prof. Dr. med., amedes
Holding GmbH, Hamburg
Christoph Keck
Prof. Dr. med., Vice President
Medical Affairs, amedes
Holding GmbH, Hamburg
486 Geburtsh Frauenheilk 2020; 80
GebFra Mag azin | Aktuell diskutiert
Korrespondenzadresse
Prof. Dr. med. Christoph Keck
amedes Holding GmbH
Haferweg 40
22769 Hamburg
Christoph.Keck@amedes-group.com
Literatur
[1] Rojo D, Méndez-García C, Raczkowska BA et
al. Exploring the human microbiome from
multiple perspectives: factors altering its
composition and function. FEMS Microbiol
Rev 2017; 41: 453478
[2] Ravel J, Gajer P, Abdo Z et al. Vaginal micro-
biome of reproductive-age women. Proc
Natl Acad Sci U S A 2011; 108 (Suppl. 1):
46804687
[3] Brooks JP, Buck GA, Chen G et al. Changes in
vaginal community state types reflect major
shifts in the microbiome. Microb Ecol Health
Dis 2017; 28: 1303265
[4] Hickey RJ, Zhou X, Settles ML et al. Vaginal
microbiota of adolescent girls prior to the
onset of menarche resemble those of repro-
ductive-age women. mBio 2015; 6: e00097-
15
[5] Aldunate M, Srbinovski D, Hearps AC et al.
Antimicrobial and immune modulatory ef-
fects of lactic acid and shor t chain fatty acids
produced by vaginal microbiota associated
with eubiosis and bacterial vaginosis. Front
Physiol 2015; 6: 164
[6] Mirmonsef P, Hotton AL, Gilbert D et al. Free
glycogen in vaginal fluids is associated with
Lactobacillus colonization and low vaginal
pH. PLoS One 2014; 9: e102467
[7] OʼHanlon DE, Moench TR, Cone RA. Vaginal
pH and microbicidal lactic acid when lacto-
bacilli dominate the microbiota. PLoS One
2013; 8: e80074
[8] Ocaña VS, Nader-Macías ME. Vaginal lacto-
bacilli: self- and co-aggregating ability. Br J
Biomed Sci 2002; 59: 183190
[9] Maldonado-Barragán A, Caballero-Guerrero
B, Martín V et al. Purification and genetic
characterization of gassericin E, a novel co-
culture inducible bacteriocin from Lactoba-
cillus gasseri EV1461 isolated from the vagi-
na of a healthy woman. BMC Microbiol 2016;
16: 37
[10] Vaneechoutte M. The human vaginal micro-
bial community. Res Microbiol 2017; 168:
811825
[11] Witkin SS, Mendes-Soares H, Linhares IM et
al. Influence of vaginal bacteria and D- and
L-lactic acid isomers on vaginal extracellular
matrix metalloproteinase inducer: implica-
tions for protection against upper genital
tract infections. mBio 2013; 4: e00460-13
[12] van der Veer C, Bruisten SM, van der Helm JJ
et al. The Cer vicovaginal Microbiota in Wom-
en Notified for Chlamydia trachomatis Infec-
tion: A Case-Control Study at the Sexually
Transmitted Infection Outpatient Clinic in
Amsterdam, The Netherlands. Clin Infect Dis
2017; 64: 2431
[13] van Houdt R, Ma B, Bruisten SM et al. Lacto-
bacillus iners-dominated vaginal microbiota
is associated with increased susceptibility to
Chlamydia trachomatis infection in Dutch
women: a case-control study. Sex Transm In-
fect 2018; 94: 117123
[14] Tamarelle J, Ma B, Gajer P et al. Nonoptimal
Vaginal Mi crobiota Af ter Azithromyci n Treat-
ment for Chlamydia trachomatis Infection.
J Infect Dis 2020; 221: 627635
[15] Peebles K, Velloza J, Balkus JE et al. High
Global Burden and Costs of Bacterial Vagino-
sis: A Systematic Review and Meta-Analysis.
Sex Transm Dis 2019; 46: 304311
[16] Mendling W, Palmeira-de-Oliveira A, Biber S
et al. An update on th e role of Atopobium va-
ginae in bacterial vaginosis: what to consider
when choosing a treatment? A mini review.
Arch Gynecol Obstet 2019; 300: 16
[17] Haahr T, Jensen JS, Thomsen L et al. Abnor-
mal vaginal microbiota may be associated
with poor reproductive outcomes: a pro-
spective study in IVF patients. Hum Reprod
2016; 31: 795803
[18] Giakoumelou S, Wheelhouse N, Cuschieri K
et al. The role of infection in miscarriage.
Hum Reprod Update 2016; 22: 116133
[19] Moreno I, Codoñer FM, Vilella F et al. Evi-
dence that the endometrial microbiota has
an effect on implantation success or failure.
Am J Obstet Gynecol 2016; 215: 684703
[20] Leopold S. Heretofore undescribed organism
isolated from the genitourinary system. U S
Armed Forces Med J 1953; 4: 263266
[21] Gardner HL, Dukes CD. Haemophilus vagi-
nalis vaginitis: a newly defined specific infec-
tion previously classified non-specific vagini-
tis. Am J Obstet Gynecol 1955; 69: 962976
[22] Heizmann WR, Meixner M, Glaubitz R et al.
Bedeutung des Mikrobioms für die Pathoge-
nese der bakteriellen Vaginose. Frauenarzt
2019; 60: 238241
[23] Janulaitiene M, Gegzna V, Baranauskiene L et
al. Phenotypic characterization of Gardnerel-
la vaginalis subgroups suggests differences
in their virulence potential. PLoS One 2018;
13: e0200625
[24] Rodriguez Jovita M, Collins MD, Sjödén B et
al. Characterization of a novel Atopobium
isolate from the human vagina: description
of Atopobium vaginae sp. nov. Int J Syst Bac-
teriol 1999; 49: 15731576
[25] Austin MN, Rabe LK, Srinivasan S et al. Ma-
geeibacillus indolicus gen. nov., sp. nov.: A
novel bacterium isolated from the female
genital tract. Anaerobe 2015; 32: 3742
[26] Malaguti N, Ba hls LD, Uchimura NS et al. Se n-
sitive Detection of Thirteen Bacterial Vagino-
sis-Associated Agents Using Multiplex Poly-
merase Chain Reaction. Biomed Res Int
2015; 2015: 645853
[27] Schuyler JA, Mordechai E, Adelson ME et al.
Identification of intrinsically metronidazole-
resistant clades of Gardnerella vaginalis.
Diagn Microbiol Infect Dis 2016; 84: 13
[28] NN. Diagnostik und Therapie einer assistier-
ten reproduktionsmedizinischen Behand-
lung (ART). AWMF Registriernummer 015-
085, Stand 01.02.2019, gültig bis
31.01.2022
[29] Moreno I, Codoñer FM, Vilella F et al. Evi-
dence that the endometrial microbiota has
an effect on implantation success or failure.
Am J Obstet Gynecol 2016; 215: 684703
[30] Haahr T, Jensen JS, Thomsen L et al. Abnor-
mal vaginal microbiota may be associated
with poor reproductive outcomes: a pro-
spective study in IVF patients. Hum Reprod
2016; 31: 795803
[31] Singer M, Borg M, Ouburg S et al. The rela-
tion of the vaginal microbiota to early preg-
nancy development during in vitro fertiliza-
tion treatment-A meta-analysis. J Gynecol
Obstet Hum Reprod 2019; 48: 223229
[32] NN. Diagnostik und Therapie von Frauen mit
wiederholten Spontanabor ten. AWMF Regis-
triernummer 015-050, Stand 01.02.2018,
gültig bis 31.01.2021
[33] Al-Memar M, Bobdiwala S, Fouri e H et al. The
association between vaginal bacterial com-
position and miscarriage: a nested case-con-
trol study. BJOG 2020; 127: 264274
[34] Mitchell CM, Haick A, Nkwopara E et al.
Colonization of the upper genital tract by
vaginal bacterial species in nonpregnant
women. Am J Obstet Gynecol 2015; 212:
611.e1611.e9
[35] Kyono K, Hashimoto T, Nagai Y et al. A nalysis
of endometrial microbiota by 16S ribosomal
RNA gene sequencing among infertile pa-
tients: a single-center pilot study. Reprod
Med Biol 2018; 17: 297306
[36] Romero R, Dey SK, Fisher SJ. Preterm labor:
one syndrome, many causes. Science 2014;
345: 760765
[37] Kindinger LM, Bennett PR, Lee YS et al. The
interaction between vaginal microbiota, cer-
vical length, and vaginal progesterone treat-
ment for preterm birth risk. Microbiome
2017; 5: 6
Bibliografie
DOI https://doi.org/10.1055/a-1109-1696
Geburtsh Frauenheilk 2020; 80: 484487 © Georg
Thieme Verlag KG Stuttgart · New York |
ISSN 00165751
487
Geburtsh Frauenheilk 2020; 80
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Article
Full-text available
We characterized the composition and structure of the vaginal microbiota in a cohort of 149 women with genital Chlamydia trachomatis infection at baseline who were followed quarterly for 9 months post antibiotic treatment. At time of diagnosis, the vaginal microbiota was dominated by Lactobacillus iners or a diverse array of bacterial vaginosis associated bacteria including Gardnerella vaginalis. Interestingly, L. iners-dominated communities were most common post azithromycin treatment (1 g monodose), consistent with the observed relative resistance of L. iners to azithromycin. L .iners-dominated communities have been associated with increased risk of C. trachomatis infection, suggesting that the impact of antibiotic treatment on the vaginal microbiota could favor reinfections. These results provide support for the dual need to account for the potential perturbing effect(s) of antibiotic treatment on the vaginal microbiota, and to develop strategies to protect and restore optimal vaginal microbiota.
Article
Full-text available
Objective: To characterise vaginal bacterial composition in early pregnancy and investigate its relationship with first and second trimester miscarriages. Design: Nested case-control study. Setting: Queen Charlotte's and Chelsea Hospital, Imperial College Healthcare NHS Trust, London. Population: 161 pregnancies; 64 resulting in first trimester miscarriage, 14 in second trimester miscarriage and 83 term pregnancies. Methods: Prospective profiling and comparison of vaginal bacteria composition using 16S rRNA gene-based metataxonomics from 5 weeks gestation in pregnancies ending in miscarriage or uncomplicated term deliveries matched for age, gestation and body-mass index. Main outcome measures: Relative vaginal bacteria abundance, diversity and richness. Pregnancy outcomes defined as first or second trimester miscarriage, or uncomplicated term delivery. Results: First trimester miscarriage associated with reduced prevalence of Lactobacillus spp.-dominated vaginal microbiota classified using hierarchical clustering analysis (65.6% vs. 87·7%; P=0·005), higher alpha diversity (mean Inverse Simpson Index 2.5 (95% confidence interval 1.8-3.0) vs. 1.5 (1.3-1.7), P=0·003) and higher richness 25.1 (18.5-31.7) vs. 16.7 (13.4-20), P=0·017), compared to viable pregnancies. This was independent of vaginal bleeding and observable before first trimester miscarriage diagnosis (P=0·015). Incomplete/complete miscarriage associated with higher proportions of Lactobacillus spp.-deplete communities compared to missed miscarriage. Early pregnancy vaginal bacterial stability was similar between miscarriage and term pregnancies. Conclusions: These findings associate the bacterial component of vaginal microbiota with first trimester miscarriage and indicate suboptimal community composition is established in early pregnancy. While further studies are required to elucidate the mechanism, vaginal bacterial composition may represent a modifiable risk factor for first trimester miscarriage.
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Introduction Bacterial vaginosis (BV) is the most common vaginal disorder in reproductive-age women. The condition is characterised by the replacement of a healthy, lactobacilli-dominated vaginal microbiota by anaerobic and facultative anaerobic bacteria. BV increases the risk of acquisition of STIs and is associated with pregnancy complications. Although the composition of the bacteria in BV varies between individuals, there are some species such as Gardnerella, Atopobium, Mycoplasma, Snethia, Megasphera, Dialister, etc., that are found most frequently. Material and Methods Literature research to the importance of Atopobium vaginae in BV and treatment options. Results Atopobium (A.) vaginae is an important component of the complex abnormal vaginal flora in BV; even though A. vaginae, like Gardnerella vaginalis, has also been detected in the normal flora, it is much more common in BV patients. A. vaginae has been shown to play an important role in the pathophysiology of BV and is thought to be at least a partial cause of the known negative sequelae. The presence of A. vaginae in the BV-associated biofilms and its resistance to some antimicrobial substances has been described - this seems to have a major impact on treatment outcome. Conclusion Current scientific data demonstrate that dequalinium chloride (Fluomycin®) is one of the valid therapeutic options for BV treatment, since it displays a broad antimicrobial spectrum against relevant vaginal pathogens, especially against G. vaginalis and A. vaginae, without having safety concerns.
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The well-known genotypic and phenotypic diversity of G. vaginalis resulted in its classification into at least four subgroups (clades) with diverse genomic properties. To evaluate the virulence potential of G. vaginalis subgroups, we analyzed the virulence-related phenotypic characteristics of 14 isolates of clade 1, 12 isolates of clade 2, 8 isolates of clade 4 assessing their in vitro ability to grow as a biofilm, produce the toxin vaginolysin, and express sialidase activity. Significant differences in VLY production were found (p = 0.023), but further analysis of clade pairs did not confirm this finding. The amount of biofim did not differ significantly among the clades. Analysis of sialidase activity indicated statistically significant differences among the clades (p < 0.001). Production of active recombinant G. vaginalis sialidase demonstrated the link between the sld gene and enzymatic activity, which may be differentially regulated at the transcriptional level. Statistical classification analysis (random forests algorithm) showed that G. vaginalis clades could be best defined by the profiles of two phenotypic characteristics: sialidase activity and vaginolysin production. The results of principal component analysis and hierarchical clustering suggested that all isolates can be subgrouped into three clusters, the structures of which are determined based on phenotypic characteristics of the isolates. Clade 4 was the most homogenous group, as all isolates were found in the same cluster, which is characterized by low production of all studied virulence factors. Clade 2 isolates were mainly distributed between two clusters, whereas clade 1 isolates were found in all three clusters that were characterized by a distinct profile of phenotypic characteristics. Our findings suggest that G. vaginalis subgroups with different virulence potential might play distinct roles in vaginal microbiota.
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Purpose The present study aimed to analyze the endometrial and vaginal microbiome among a Japanese infertile population by sequencing and the impact of the endometrial and vaginal environment on implantation. Methods In total, 102 infertile (79 in vitro fertilization [IVF] and 23 non‐IVF) patients and seven healthy volunteers were recruited from August to December, 2017. Endometrial fluid and vaginal discharge samples for sequencing were collected by using an intrauterine insemination catheter. The bacterial status of the endometrium and vagina were analyzed. Results The Lactobacillus‐dominated microbiota (>90% Lactobacillus spp.) in the endometrium vs vagina was 38% (30/79) vs 44.3% (44/79) in the IVF patients, 73.9% (17/23) vs 73.9% (17/23) in the non‐IVF patients, and 85.7% (6/7) vs 85.7% (6/7) in the healthy volunteers. The percentage of endometrial Lactobacillus in the healthy volunteers was highly stable within the same menstrual cycle and even in the following cycle. The major taxonomies were Gardnerella, Streptococcus, Atopobium, Bifidobacterium, Sneathia, Prevotella, and Staphylococcus. Fifteen patients achieved pregnancy by a single vitrified‐warmed blastocyst transfer during this study; the median percentage of Lactobacillus in the pregnant women was 96.45 ± 33.61%. Conclusion A considerable percentage of non‐Lactobacillus‐dominated (NLD) microbiota was found in the endometrium of Japanese infertile women. Increasing the endometrial level of the Lactobacilli to >90% might favor the implantation outcome of NLD infertile patients.
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Introduction This prospective study aimed to study the composition and structure of the vaginal microbiota prior to Chlamydia trachomatis infection. Methods A nested case–control study was performed in 122 women, half of which acquired C. trachomatis within a year after their first visit. At the first visit, the composition and structure of vaginal microbial communities were analysed using 16S rRNA sequencing in the context of the sociodemographic and sexual risk behaviour information using logistic regression. Results Five vaginal community state types (CSTs) were identified. Four CSTs were dominated by Lactobacillus spp., of which L. crispatus (37%) and L. iners (33%) were the most common. One CST was characterised by the absence of Lactobacillus spp. (25%) and the presence of an array of strict and facultative anaerobes. Multivariate logistic regression analysis revealed that women with a L. iners-dominated CST had an increased risk of C. trachomatis infection (p=0.04; OR: 2.6, 95% CI 1.0 to 6.6). Conclusions The distribution of CSTs dominated by Lactobacillus spp. agreed with previous studies. However, the frequency of dysbiosis among Caucasian women was relatively high (24%). Having vaginal microbiota dominated by L. iners was associated with an increased risk for C. trachomatis infection. Therefore, we hypothesise that specific signatures of vaginal microbiota are indicative of increased host predisposition to acquiring STIs.
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An abnormal vaginal microbiota composition has been shown to lead to pre-term births, miscarriage, and problems with conceiving. Studies have suggested that dysbiosis reduces successful early pregnancy development during IVF. However, conflicting reports exist. This meta-analysis aims to answer the following question: what is the aggregated effect found by studies investigating the influence of the vaginal microbiota composition on early pregnancy rates after IVF treatment? A systematic review was performed using the Medline and EMBASE databases, using search terms for healthy vaginal microbiota, abnormal vaginal microbiota, fertility and pregnancy. The search resulted in six included articles. Of these, all six were used for further meta-analysis. The main outcome measures were the clinical pregnancy rate, determined through ultrasound proven fetal heartbeat and/or hCG results before 10 weeks gestation, in relation to the vaginal microbiota composition. We found a correlation between abnormal vaginal microbiota and lower rates of early pregnancy development after IVF treatment (OR = 0.70, 95% CI = 0.49 - 0.99). One study showed the reverse correlation. However, heterogeneity between study methodologies in various forms was found. In conclusion, women with an abnormal vaginal microbiota are roughly 1.4 times less likely to have a successful early pregnancy development after IVF treatment when compared to women with normal microbiota.
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Background: Bacterial vaginosis (BV) is the most common vaginal infection among women of reproductive age and is associated with important adverse health outcomes. Estimates of the burden of BV and associated costs are needed to inform research priorities. Methods: We conducted a systematic review and meta-analysis of global BV prevalence among reproductive-aged women in the general population. We searched PubMed and Embase and used random effects models to estimate BV prevalence by global regions. We estimated the direct medical costs of treating symptomatic BV. Assuming a causal relationship, we also estimated the potential costs of BV-associated preterm births and human immunodeficiency virus cases in the United States. Results: General population prevalence of BV is high globally, ranging from 23% to 29% across regions (Europe and Central Asia, 23%; East Asia and Pacific, 24%; Latin America and Caribbean, 24%; Middle East and North Africa, 25%; sub-Saharan Africa, 25%; North America, 27%; South Asia, 29%). Within North America, black and Hispanic women have significantly higher (33% and 31%, respectively) prevalence compared with other racial groups (white, 23%; Asian, 11%; P < 0.01). The estimated annual global economic burden of treating symptomatic BV is US $4.8 (95% confidence interval, $3.7-$6.1) billion. The US economic burden of BV is nearly tripled when including costs of BV-associated preterm births and human immunodeficiency virus cases. Conclusions: The BV prevalence is high globally, with a concomitant high economic burden and marked racial disparities in prevalence. Research to determine the etiology of BV and corresponding prevention and sustainable treatment strategies are urgently needed to reduce the burden of BV among women. Additionally, the exceptionally high cost of BV-associated sequelae highlights the need for research to understand potential causal linkages between BV and adverse health outcomes.
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(Abstracted from Am J Obstet Gynecol 2016;215(6):684–703) In 2002, the vaginal microbiota was first identified using molecular methods that allowed detection of nonculturable bacteria. Alterations in vaginal microbiota could have clinical implications for reproductive and obstetric processes.