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Abejas sin aguijón (Apidae: Meliponini) en Loreto, Peru

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(APIDAE: MELIPONINI) EN LORETO, PERU
Claus RASMUSSEN & Cesar DELGADO


Claus RASMUSSEN
Bioscience, Universidad de Aarhus, Ole Worms Allé 1, 8000 Aarhus C, Dinamarca.
claus.rasmussen@bios.au.dk
Cesar DELGADO
Programa de Investigación en Biodiversidad Amazónica del Instituto de Investigaciones
de la Amazonía Peruana-IIAP, Perú. cdelgado@iiap.gob.pe
02
Comité editorial.
Revisores: Diana Silva (MHN-UNMSM), Manuel Martìn Brañas (IIAP)
Impresión:
Primera Edición:
Hecho el depósito legal en la Biblioteca Nacional del Perú:
ISBN:
Doi: http xxxxxxxxxxxxxx
Agosto 2019
(APIDAE: MELIPONINI) EN LORETO, PERU

Instituto de Investigaciones de la Amazonia Peruana
Av. José A. Quinones km. 2.5 – Iquitos
Tel.:065-265515 Fax: 065-265527
preside@iiap.org.pe
03

INTRODUCCIÓN...............................................................................................8
ÁREA DE ESTUDIO............................................................................................9
METODOLOGÍA DEL INVENTARIO......................................................................11
NIDOS DE ABEJAS SIN AGUIJÓN.....................................................................14
CLAVE PARA LOS PRINCIPALES GÉNEROS DE LAS ABEJAS SIN AGUIJÓN
EN LORETO.......................................................................................15
ESPECIES REGISTRADAS EN LORETO..............................................................25
GÉNERO: Cephalotrigona (Figs. 1 A-C)..............................................................25
1. Cephalotrigona cf. capitata (Smith, 1854) (Fig. 1 A-C)..........................25
GÉNERO: Lestrimelitta (Fig. 1 D)......................................................................25
2. Lestrimelitta cf. limao (Smith, 1863) (Fig. 1 D).....................................25
GÉNERO: Melipona (Figs. 2 A-J, 8-14)..............................................................25
3. Melipona bradleyi Schwarz, 1932 (Fig. 2 A).........................................25
4. Melipona crinita Moure & Kerr, 1950 (Figs. 2 B, 8)...............................25
5. Melipona eburnea Friese, 1900 (Figs. 2 C-D, 9)....................................30
6. Melipona fuscopilosa Moure & Kerr, 1950 (Fig. 2 E)..............................30
7. Melipona grandis Guérin, 1844 (Figs. 2 F, 10)......................................30
8. Melipona cf. illota Cockerell, 1919 (Figs. 2 G, 11)................................30
9. Melipona cf. ruventris Lepeletier, 1836 (Figs. 2 I, 12)..........................30
10. Melipona titania Gribodo, 1893 (Figs. 2 J, 13).....................................31
GÉNERO: Nannotrigona (Figs. 3 A-B, 15)..........................................................35
11. Nannotrigona melanocera (Schwarz, 1938) (Figs. 3 A, 15)....................35
12. Nannotrigona schultzei (Friese, 1901) (Fig. 3 B)...................................35
GÉNERO: Nogueirapis (Fig. 3 C).......................................................................37
13. Nogueirapis butteli (Friese, 1900) (Fig. 3 C).........................................37
GÉNERO: Oxytrigona (Fig. 3 D).........................................................................37
14. Oxytrigona cf. mulfordi (Schwarz, 1948) (Fig. 3 D)...............................37
GÉNERO: Aparatrigona (Fig. 3 E)......................................................................37
15. Aparatrigona impunctata (Ducke, 1916) (Fig. 3 E)................................37
GÉNERO: Paratrigona (Figs. 3 F-G)...................................................................37
16. Paratrigona pacica (Schwarz, 1943) (Fig. 3 F)....................................37
05
17. Paratrigona prosopiformis (Gribodo, 1893) (Fig. 3 G).............................38
GÉNERO: Partamona (Figs. 3 H-J, 16)..............................................................38
18. Partamona testacea (Klug, 1807) (Fig. 3 H).........................................38
19. Partamona vicina Camargo, 1980 (Fig. 3 I)..........................................38
20. Partamona ailyae Pedro & Camargo, 2003............................................38
21. Partamona epiphytophila Pedro & Camargo, 2003 (Figs. 3 J, 16)...........38
GÉNERO: Plebeia (Figs. 4 A-E).........................................................................40
22. Plebeia kerri Moure, 1950 auctorum (Fig. 4 A).....................................40
23. Plebeia margaritae Moure, 1962 (Fig. 4 B)...........................................40
24. Plebeia minima (Gribodo, 1893) auctorum (Fig. 4 C).............................40
25. Plebeia peruvicola Moure, 1994 (Fig. 4 D)...........................................40
26. Plebeia spp. (aún por identicar) (Fig. 4 E)...........................................40
GÉNERO: Scaptotrigona (Figs. 4 F-H, 17-18).....................................................41
27. Scaptotrigona tricolorata Camargo, 1988 (Figs. 4 G, 17).......................41
28. Scaptotrigona spp. ‘negros’ (Figs. 4 F, 18)............................................41
29. Scaptotrigona sp. ‘amarillo’ (Fig. 4 H)..................................................41
GÉNERO: Scaura (Figs. 4 I-K)...........................................................................44
30. Scaura cf. latitarsis (Friese, 1900) (Fig. 4 I)..........................................44
31. Scaura longula (Lepeletier, 1836) (Fig. 4 J)..........................................44
32. Scaura tenuis (Ducke, 1916) (Fig. 4 K)................................................44
GÉNERO: Schwarzula (Figs. 4 L-M)...................................................................44
33. Schwarzula coccidophila Camargo & Pedro, 2002 (Fig. 4 L)...................44
34. Schwarzula timida (Silvestri, 1902) (Fig. 4 M)......................................44
GÉNERO: Frieseomelitta (Figs. 4 O-P, 19-20).....................................................45
35. Frieseomelitta trichocerata Moure, 1988 (Figs. 4 O, 19)........................45
36. Frieseomelitta sp. (Figs. 4 P, 20)..........................................................45
GÉNERO: Geotrigona (Fig. 4 N)........................................................................48
37. Geotrigona fulvohirta (Friese, 1900) (Fig. 4 N)......................................48
GÉNERO: Ptilotrigona (Figs. 5 A-B, 21).............................................................48
38. Ptilotrigona lurida (Smith, 1854) (Fig. 5 A)..........................................48
39. Ptilotrigona pereneae (Schwarz, 1943) (Figs. 5 B, 21)..........................48
GÉNERO: Tetragona (Figs. 5 D-I, 22-23)...........................................................50
40. Tetragona clavipes (Fabricius, 1804) (Fig. 5 D).....................................50
41. Tetragona dissecta Moure, 1999 (Fig. 5 E)...........................................50
42. Tetragona cf. dorsalis (Smith, 1854) (Fig. 5 F)......................................50
06
43. Tetragona goettei (Friese, 1900) (Figs. 5 G, 22)....................................50
44. Tetragona handlirschii (Friese, 1900) (Fig. 5 H)....................................50
45. Tetragona truncata Moure, 1971 (Figs. 5 I, 23)....................................50
GÉNERO: Tetragonisca (Figs. 5 C, 24)...............................................................53
46. Tetragonisca angustula (Latreille, 1811) (Figs. 5 C, 24).........................53
GÉNERO: Trigona (Figs. 6 A-O, 25-32)..............................................................54
47. Trigona amalthea (Olivier, 1789) (Figs. 6 A, 25)....................................54
48. Trigona truculenta Almeida, 1984 (Fig. 6 B).........................................54
49. Trigona amazonensis (Ducke, 1916) (Figs. 6 C, 26)...............................54
50. Trigona cf. fuscipennis Friese, 1900 (Figs. 6 D).....................................54
51. Trigona branneri Cockerell, 1912 (Fig. 6 E)...........................................54
52. Trigona cilipes (Fabricius, 1804) (Fig. 6 F)............................................57
53. Trigona crassipes (Fabricius, 1793) (Figs. 6 H, 27)................................57
54. Trigona dimidiata Smith, 1854 (Fig. 6 G).............................................57
55. Trigona guianae Cockerell, 1910 (Figs. 6 J, 28)....................................57
56. Trigona hypogea Silvestri, 1902 (Figs. 6 I, 29)......................................57
57. Trigona recursa Smith, 1863 (Figs. 6 K, 30).........................................61
58. Trigona chanchamayoensis Schwarz, 1948 (Figs. 6 M)..........................61
59. Trigona dallatorreana Friese, 1900 (Figs. 6 N, 31).................................61
60. Trigona pallens (Fabricius, 1798) (Fig. 6 O)..........................................61
61. Trigona williana Friese, 1900 (Figs. 6 L, 32).........................................61
GÉNERO: Trigonisca (Figs. 7 A-B).....................................................................64
62. Trigonisca bidentata Albuquerque & Camargo, 2007 (Fig. 7 A)...............64
63. Trigonisca cf. ceophloei (Schwarz, 1938) (Fig. 7 B)...............................64
64. Trigonisca pediculana (Fabricius, 1804)...............................................64
65. Trigonisca spp...................................................................................64
GÉNERO: Leurotrigona (Figs. 7 D-E).................................................................64
66. Leurotrigona muelleri (Friese, 1900) (Fig. 7 D).....................................64
67. Leurotrigona pusilla Moure & Camargo, 1988 (Fig. 7 E).........................64
GÉNERO: Dolichotrigona (Fig. 7 C)...................................................................65
68. Dolichotrigona browni Camargo & Pedro, 2005 (Fig. 7 C).......................65
69. Dolichotrigona moratoi Camargo & Pedro, 2005....................................65
07
BIBLIOGRAFÍA:......................................................................................66
REFERENCIAS:...............................................................................................71

Las abejas sin aguijón o meliponinos son abejas sociales que producen
miel. Su distribución se restringe a las zonas tropicales y subtropicales de
África, Asia, Australia y América (Michener, 2007), pero son más diversas
y numerosas en América del Sur. Michener (2007) estima que hay cerca
de 400 especies, pero el número real parece ser muy superior, más de 800
especies, incluyendo las que aún no se han descrito (Rasmussen & Cameron,
2007, 2010). Alrededor de unas 400 especies han sido reconocidas hasta
el momento en América (Camargo y Pedro 2007); la mayoría de ellas son
abundantes en altitudes bajas y medias, pero algunas especies habitan en
los bosques andinos en altitudes superiores a los 2 000 metros (Gonzalez &
Engel, 2004). Estas abejas son criadas artesanalmente en cajas de madera o
troncos o en colmenas diseñadas para la extracción de cera, miel o polen. En
América Latina son llamadas de diferentes maneras; por ejemplo, Tetragonisca
angustula (Latreille), una especie muy común y ampliamente distribuida, es
conocida como “ramichi” en Perú, “jatay” en Brasil, “mariquita” o “mariola”
en Costa Rica y “angelita” o “virgencita” en Colombia (Rosso Londoño &
Nates-Parra, 2005).
Las abejas sin aguijón han jugado un papel importante en la subsistencia de los
indígenas americanos, proveyéndoles miel, cera y polen; actualmente se están
empezando a usar como polinizadores de cultivos (Crane, 1999; Rasmussen
& Castillo, 2003). Sin embargo, recientemente estas abejas son motivo de
preocupación ya que pueden ser sensibles a la alteración del hábitat, cambios
que resultan en la disminución de sus poblaciones y consecuente extinción
(Brown & Albrecht, 2001; Kerr et al., 2001; Quezada-Euán et al., 2001).
Se conoce poco sobre las abejas sin aguijón en la mayoría de los países
de Latinoamérica, incluyendo Perú. La única publicación que trata sobre las
abejas del Perú es la de Moure (1944), en la que se registran 55 especies de
abejas sin aguijón. Este número se ha incrementado con recientes estudios
taxonómicos (Pedro & Camargo, 2003) o inventarios ecológicos (Baumgartner
& Roubik, 1989; Rasmussen & Gonzalez, 2009). Actualmente se conocen
175 especies de abejas sin aguijón para todo el país, muchas de ellas todavía
por describir y aún más por descubrir (Rasmussen, observación personal).
El objetivo de este estudio es contribuir al conocimiento de las abejas sin
aguijón en Loreto y así motivar futuros estudios sobre su ecología, teniendo
como propósito inventariar su diversidad y registrar su potencial para crianza
(“Meliponicultura”).
08

El Departamento de Loreto se localiza en el extremo Nor-oriental del Perú, en
la región denominada “Selva baja u Omagua”, cuya altitud más baja es de 61
msnm y la más alta de 220 msnm. Se distinguen dos tipos de terrenos: aluvial
y colinoso, en los cuales se identican islas, playas, orillares, meandros,
terrazas y colinas bajas. El Departamento de Loreto es el más grande del país,
con una extensión de 368 851 km² (29% del territorio nacional), limita al
noroeste con Ecuador, al noreste con Colombia, al sureste con Brasil (Estado
de Amazonas), al sur con el Departamento de Ucayali, al Oeste con los
departamentos de Amazonas y San Martín (Mapa 1).
Según la clasicación climática de Köppen (1936), el Departamento de Loreto
experimenta un clima ecuatorial (Af). El Servicio Nacional de Meteorología e
Hidrología del Perú (SENAMHI), la entidad meteorológica del Perú, denomina
al clima de la región como “cálido húmedo tropical”. La temperatura promedio
anual es de 26,9 °C, variando entre 21,0 °C y 32,3 °C entre la máxima y
mínima diaria. Noviembre es el mes registrado como el mes más caliente
para Loreto. Las lluvias llegan a los 2 827 mm al año. La temporada de
lluvias se extiende desde el mes de diciembre a mayo. Existe un alto índice
de humedad en todo el año que, junto a la evapotranspiración, llega a un
porcentaje de 88%, siendo el mes de mayo el más húmedo con 89,7%, y
octubre el menos húmedo con 81,9%. La radiación solar registra 4,2 horas/
día aproximadamente.
El Perú es uno de los países de mayor diversidad biológica en el mundo
(Heywood, 1995). Esta diversidad se encuentra localizada en las zonas
altas y bajas de la Amazonía; por ejemplo, en Mishana y Yanamono (Loreto)
se reporta más de 300 especies arbóreas por hectárea (Gentry, 1988). Un
estudio reciente estima la ora de Loreto en 7 959 especies, la de mamíferos
en 267 especies, la de aves en 914 especies, la de anbios en 216 especies,
y la de reptiles en 170 especies (Pitman et al., 2013). Aún existe una gran
parte de esta diversidad y de los bosques de Loreto que aún permanecen
relativamente intactos.
09
10
Mapa 1: Mapa de la region Loreto, Peru

Colecta con redes entomológicas y observaciones en el campo, combinadas
con visitas a criaderos de abejas sin aguijón en numerosas ocasiones y luego
identicación de Claus Rasmussen y J.M.F. Camargo (2000, 2001, 2004).
2000: Colectas por Claus Rasmussen:
• Cerca de Iquitos
• Nueva Esperanza en Rio Yahuashyacu - Ampiyacu (cerca de Pebas)
• Quistococha
2001: Colectas por Claus Rasmussen (cf. Rasmussen, 2009):
• Km 1.5 en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 7 en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 8 en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 10 (Peña Negra) en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 15 (Varrillal) en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 25.7 en la Carretera Iquitos-Nauta
• Km 26.5 (IIAP) en la Carretera Iquitos-Nauta
• Trocha de INIA en la Carretera Iquitos-Nauta
• Puerto Almendras
• Camino a Santa Clara
• Camino a Zungarococha
• Nauta
• El Porvenir, Rio Momón (-3.65, -73.30)
• Panguana III, Zona Yanayacu (-3.9112, -73.1279)
2004: Colectas por Claus Rasmussen y Brian Brown:
• Quistococha (-3.83, -73.32)
• Km 31.5 en la Carretera Iquitos-Nauta
• El Porvenir, Rio Momón (-3.65, -73.30)
2010: Colectas con trampas por Tracy Misiewicz et al. (Misiewicz et al., 2014):
• Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana, entre Rio Nanay
y Rio Itaya (-3.91, -73.55)
• Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana, entre Rio Nanay
y Rio Itaya (-3.95, -73.40)
• Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana, entre Rio Nanay
y Rio Itaya (-3.90, -73.55)
• Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana, entre Rio Nanay y Rio
11
Itaya (-3.97, -73.42)
• Cerca de Jenaro Herrera (-4.86, -73.61)
• Cerca de Jenaro Herrera (-4.88, -73.64)
2014: Colectas por Cesar Delgado y Guy Couturier:
• San Antonio de Cacao, Rio Amazonas
• Chingana, Rio Ucayali (-4.7190, -73.54)
• Bagazán, Rio Ucayali (-4.7238, -73.5327)
• Jenaro Herrera, Rio Ucayali (-4.9827, -74.3271)
• Requena, Rio Ucayali (-5.0637, -73.8586)
• Sapuena, Rio Ucayali (-4.7711, -73.6286)
2017: Colectas por Cesar Delgado y Claus Rasmussen:
• Santa Rita, Rio Nanay (-3.7335, -73.3239)
• Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (-3.7312,
-73.3362)
• San Pedro, Rio Nanay (-3.7509, -73.3374)
• Fundo Junior, Nauta (4.4843, -73.5741)
• San Francisco, Rio Marañón (-4.4468, -73.5148)
• Bagazán, Rio Ucayali (-4.7238, -73.5327)
• Chingana, Rio Ucayali (-4.7190, -73.54)
• Sapuena, Rio Ucayali (-4.7711, -73.6286)
• Flor de Castaña, Rio Ucayali (-4.7704, -73.5971)
• Payurute, Rio Marañon (-4.4424, -73.4893)
• San Francisco, Rio Marañón (-4.4468, -73.5148)
• Allpahuayo Mishana (-3.9790, -73.4220)
• Comunidad de Huaturi, Rio Nanay (-3.7758, -73.4055)
• San José, Rio Mazan (-3.5042, -73.1060)
• Santa Cruz, Rio Mazan (-3.5172, -73.1645)
• Quistococha (-3.8289, -73.3219)
• Carretera a Zungarococha (-3.8300, -73.3519)
• Cerca de LLanchama (-3.8548, -73.4009)
Además, se han examinado las abejas sin aguijón de Loreto depositadas en
las colecciones del Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional
Mayor de San Marcos, del Museo de Entomología “Klaus Raven Büller” de la
Universidad Nacional Agraria La Molina y del Illinois Natural History Survey,
Illinois, EE.UU.
Colecciones históricas en reconocidos museos y que forman la base del
presente estudio son producto de los esfuerzos de colecta por:
Harvey Bassler, geólogo norteamericano que realizó exploraciones de campo
12
en Loreto contratado por Standard Oil Co. de New Jersey, EE.UU. La colección
que registra abejas sin aguijón corresponde sobre todo de Iquitos en 1921 y
los siguientes años (Lamas, 1980), aunque el año como tal no está indicado
en las etiquetas.
Herbert Simpson Parish, colector profesional de Canada; llegó desde Brasil
para colectar en Pebas, Iquitos (incluyendo el Rio Napo) y Yurimaguas,
durante el año 1920 (Alexander, 1959).
James Chester Bradley, profesor de la Universidad de Cornell, EE.UU., en
su viaje por Loreto, entrando por Puerto Bermudez pasando por Contamana,
Iquitos, y saliendo por el Rio Putumayo luego de visitar La Chorrera, Oriente,
El Encanto, La Sombra, y saliendo a Brasil en 1920 (Rasmussen, 2016).
Igualmente, se incluyeron las colectas en las cercanías de Iquitos por Marc
Dourojeanni en 1963 y Calaway H. Dodson en 1964 (Dodson, 1965).
Otras colectas mencionadas pertenecen a los registros basados en la literatura
citada, por ejemplo, ‘Teniente López’ (-2.594, -76.115), etc.
13

Los nidos de abejas sin aguijón pueden encontrarse expuestos o cubiertos.
Suelen ser fabricados en huecos naturales que pueden hallar en troncos,
rocas o paredes; otras especies preeren formar su nido en el suelo, adherido
al tronco de un árbol, o en el nido del comején, hormigas o hasta avispas
(Wille & Michener, 1973; Rasmussen, 2004). Todas las especies tienen
distintas maneras de construir sus nidos y formar la entrada, pero siempre
fabrican panales para la cría y otros depósitos de alimentación que son usados
para guardar miel y polen. Los panales o depósitos de alimentación son de
tamaño mayor a los de cría. Los panales de cría protegidos por el involucrum
(estructura del nido de una abeja sin aguijón con nes de termoregulación),
y los depósitos de alimentos, son de material suave, hechos de pura cera
segregada por las abejas y mezclada con resinas de plantas. El soporte del
nido y sus paredes de protección son de material endurecido, conocido como
batumen, que es una mezcla de cera con barro, arena, e incluso con partes de
plantas y heces o excrementos (Wille & Michener, 1973; Roubik, 2006). Las
abejas sin aguijón establecen nuevos nidos llevando material y alimentación
del nido anterior al nuevo. El periodo de mudanza puede demorar de pocas
semanas hasta meses (Michener, 2007).
14



Las abejas sin aguijón, tribu Meliponini, tienen la supercie externa de la tibia
posterior con un área usualmente plana o cóncava, brillante, mayormente
glabra, orlada de pelos, formando una corbícula. Ojos glabros; alas con venas
transversas cubitales y segunda recurrente débiles, comparadas con otras
venas, comúnmente ausentes; celda marginal abierta o cerrada por una vena
débil. La clave es sólo para obreras de abejas sin aguijón, no para machos ni
para reinas (Modicada de Michener et al. (1994).
1. Primer agelómero casi tan largo como el segundo y el tercero juntos; tibia
posterior sin corbícula brillante rodeada de pelos .................… Lestrimelitta
-. Primer agelómero más corto que el segundo y el tercero juntos (usualmente
mucho más corto); tibia posterior deprimida apicalmente, brillante, formando
una corbícula rodeada de pelos …......................................................... 2
2. Estigma alar angosto, su borde dentro de la celda marginal recto o cóncavo;
alas no excediendo o excediendo escasamente el metasoma; tórax con pelos
abundantes, en algunas áreas tan largos como la tégula ............… Melipona
-. Estigma alar ancho, su borde dentro de la celda marginal distintamente
convexo; alas excediendo considerablemente el metasoma; tórax con pelos
relativamente esparcidos, más cortos que la tégula ….............................. 3
3. Vena M del ala anterior termina abruptamente en el punto de unión
con la primera vena recurrente (la cual es no pigmentada); celda marginal
apicalmente abierta, excepto por una línea no pigmentada; celdas 1a M y
2a M Cu abiertas, excepto por la presencia de líneas no pigmentadas; largo
del cuerpo usualmente 3 mm o menos ..................................................
… grupo de Trigonisca (Trigonisca/Leurotrigona/Dolichotrigona/(Celetrigona))
-. Vena M del ala anterior curvada apicalmente junto al punto de unión con la
primera vena recurrente y sobrepasando este punto; celda marginal angostada
o cerrada por una vena pigmentada; celdas 1a M y 2a M Cu cerradas o casi
cerradas por venas pigmentadas; largo del cuerpo usualmente 3 mm o más
......................................................................................................… 4
4. Clípeo con puntuación más bien uniforme y distintamente más gruesa que
en la frente, separado del ojo por una distancia mucho mayor que el largo
del área malar …................................................................................. 5
15
-. Clípeo con extensas áreas no puntuadas, enteramente sin puntuación, o
puntuado como la frente; clípeo separado del ojo por una distancia poco o
nada mayor que el largo del área malar ..............................................… 6
5. Dorso de cabeza y tórax opacos, con puntuación na y sumamente densa;
mandíbula con un solo diente grande en el extremo superior del margen apical,
separado por una emarginación leve del resto del margen …. Cephalotrigona
-. Dorso de cabeza y tórax brillantes, con puntos diminutos bien separados;
mandíbula con dos dientecitos en el extremo superior del margen apical ....
.........................................................................................… Oxytrigona
6. Supercie interna de la tibia posterior con una elevación media longitudinal
(cubierta con keirotrichia), casi tan ancha como la zona deprimida brillante
detrás de ésta; tibia posterior delgada, margen posterior con pelos plumosos
(a veces inconspicuos y escasos en el género Geotrigona) además de pelos
simples …..............................................................................................
......... Trigona/Geotrigona/Tetragona/Ptilotrigona/Frieseomelitta/Tetragonisca
-. Supercie interna de la tibia posterior con zona ancha de keirotrichia,
alcanzando el margen posterior o separada de éste por un angosto margen
brillante; tibia posterior más robusta, margen posterior sólo con pelos simples
…...................................................................................................... 7
7. Tórax y cabeza lisos y brillantes, a veces puntuados, pero los interespacios
brillantes, de modo que el brillo es apagado, puede presentar pelos .......… 8
-. Tórax y usualmente la cabeza con supercie distintamente opaca, con
puntos densos, hoyuelos, o teselada .................................................… 11
8. Tibia posterior muy expandida, su ancho más o menos la mitad del largo,
concavidad de la supercie externa extendiéndose casi hasta la base, margen
anterior casi tan convexo como el posterior ............................… Partamona
-. Tibia posterior mucho menos expandida, concavidad no aproximándose a
la base, margen anterior escasamente o no convexo .............................… 9
9. Basitarso trasero hinchado, más ancho que la tibia; mandíbula edentada.
Cuerpo sin marcas amarillas o blanquecinas ..............… Scaura/Schwarzula
-. Basitarso trasero no hinchado, más estrecho que la tibia; mandíbula con
dos dientes pequeños en el extremo superior de la margen apical; cara y tórax
usualmente con marcas amarillas o blanquecinas ….............................. 10
10. Supercie interna de la tibia posterior con margen posterior brillante
poco deprimido; cuerpo con marcas amarillas que incluyen el lado del tórax,
propodeo, y gran parte de la cara ........................................… Nogueirapis
-. Supercie interna de la tibia posterior con margen posterior brillante
16
claramente deprimido; cuerpo usualmente negro con marcas amarillas
opacas, pero a veces casi totalmente testáceos …........................... Plebeia
11. Margen apical de la mandíbula más o menos claramente cuadridentado,
a veces con tabiques entre los dientes que pueden confundir la dentición;
margen anterior del escutelo sin depresión media … Paratrigona/Aparatrigona
-. Margen apical de la mandíbula con dos dientecitos en el extremo superior,
el resto edentado; margen anterior del escutelo con una depresión pequeña
en forma de V o de U; puntos en tórax muy densos ............................… 12
12. Margen posterior del escutelo sobresaliendo por encima del propodeo
ocultándolo, con una emarginación apical media; tórax fuertemente puntuado
…..................................................................................... Nannotrigona
-. Margen posterior del escutelo no ocultando el propodeo, redondeado, sin
emarginación apical media; tórax teselado a namente puntuado …..............
.........................................................................................Scaptotrigona
17
18
FIGURA 1: A-B-C, Cephalotrigona cf. capitata (Smith, 1854). Dentro del mismo
nido había ejemplares negros y marrones. D, Lestrimelitta cf. limao (Smith, 1863).
Escala = 0,5 mm.
19
FIGURA 2: A, Melipona bradleyi Schwarz, 1932. B, M. crinita Moure & Kerr, 1950.
C-D, M. eburnea Friese, 1900. E, M. fuscopilosa Moure & Kerr, 1950. F, M. grandis
Guérin, 1844. G, M. cf. illota Cockerell, 1919. H, M. sp. I, M. cf. illota Cockerell,
1919. J, M. titania Gribodo, 1893. Escala = 0,5 mm.
20
FIGURA 3: A, Nannotrigona melanocera (Schwarz, 1938). B, Nannotrigona
schultzei (Friese, 1901). C, Nogueirapis butteli (Friese, 1900). D, Oxytrigona
cf. mulfordi (Schwarz, 1948). E, Aparatrigona impunctata (Ducke, 1916). F,
Paratrigona pacica (Schwarz, 1943). G, Paratrigona prosopiformis (Gribodo,
1893). H, Partamona testacea (Klug, 1807). I, Partamona vicina Camargo, 1980.
J, Partamona epiphytophila Pedro & Camargo, 2003. Escala = 0,5 mm.
21
FIGURA 4: A, Plebeia kerri Moure, 1950 auctorum. B, Plebeia margaritae Moure,
1962. C, Plebeia minima (Gribodo, 1893) auctorum. D, Plebeia peruvicola Moure,
1994. E, Plebeia spp. F, Scaptotrigona spp. G, Scaptotrigona tricolorata Camargo,
1988. H, Scaptotrigona sp. ‘amarillo’, I, Scaura cf. latitarsis (Friese, 1900). J,
Scaura longula (Lepeletier, 1836). K, Scaura tenuis (Ducke, 1916). L, Schwarzula
coccidophila Camargo & Pedro, 2002. M, Schwarzula timida (Silvestri, 1902). N,
Geotrigona fulvohirta (Friese, 1900). O, Frieseomelitta trichocerata Moure, 1988.
P, Frieseomelitta sp. Escala = 0,5 mm.
22
FIGURA 5: A, Ptilotrigona lurida (Smith, 1854). B, Ptilotrigona pereneae (Schwarz,
1943). C, Tetragonisca angustula (Latreille, 1811). D, Tetragona clavipes (Fabricius,
1804). E, Tetragona dissecta Moure, 1999. F, Tetragona cf. dorsalis (Smith, 1854).
G, Tetragona goettei (Friese, 1900). H, Tetragona handlirschii (Friese, 1900). I,
Tetragona truncata Moure, 1971. Escala = 0,5 mm.
23
FIGURA 6: A, Trigona amalthea (Olivier, 1789). B, Trigona truculenta Almeida,
1984. C, Trigona amazonensis (Ducke, 1916). D, Trigona cf. fuscipennis Friese,
1900. E, Trigona branneri Cockerell, 1912. F, Trigona cilipes (Fabricius, 1804). G,
Trigona dimidiata Smith, 1854. H, Trigona crassipes (Fabricius, 1793). I, Trigona
hypogea Silvestri, 1902. J, Trigona guianae Cockerell, 1910. K, Trigona recursa
Smith, 1863. L, Trigona williana Friese, 1900. M, Trigona chanchamayoensis
Schwarz, 1948. N, Trigona dallatorreana Friese, 1900. O, Trigona pallens (Fabricius,
1798). Escala = 0,5 mm.
24
FIGURA 7: A, Trigonisca bidentata Albuquerque & Camargo, 2007. B, Trigonisca
cf. ceophloei (Schwarz, 1938). C, Dolichotrigona browni Camargo & Pedro, 2005.
D, Leurotrigona muelleri (Friese, 1900). E, Leurotrigona pusilla Moure & Camargo,
1988. Escala = 0,5 mm.


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1. Cephalotrigona cf. capitata (Smith, 1854)
Originalmente descrita de Brasil (Smith, 1854).
Nidos: En tronco. La colmena a veces forma una pequeña entrada de resina y
propóleo; propóleo sobre todo en la parte inferior. Las abejas son muy mansas
y tímidas en la entrada.
Registros: Quistococha (2004), se hizo una nueva búsqueda el año 2017
pero ya no existe el árbol que contenía su nido.
2. Lestrimelitta cf. limao (Smith, 1863)
Originalmente descrita de Brasil (Smith, 1863).
Nidos: En tronco. La entrada es un tubo largo de cera con numerosos
abultamientos construidos de cera. Las abejas no son muy agresivas.
Registros: Reserva Nacional Allpahuayo Mishana en la trocha de INIA (2001).
(Figs. 1 A-C)
(Figs. 1 D)
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3. Melipona bradleyi Schwarz, 1932 (Fig. 2 A)
Originalmente descrita de La Chorrera-La Sombra, Putumayo, la zona
fronteriza entre Perú y Colombia (Schwarz, 1932).
Nidos: Desconocemos su nido, pero debe ser en tronco.
Registros: Reportado cerca del Río Putumayo, caminando desde La Chorrera
hacia La Sombra en 1920, actualmente son localidades en Colombia
(Schwarz, 1932; Rasmussen, 2016). Misiewicz et al. (2014) la registran en
la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
4. Melipona crinita Moure & Kerr, 1950 (Figs. 2 B, 8)
Originalmente descrita de Rio Chaparé, auente del Rio Mamoré, Bolivia
(Moure & Kerr, 1950).
Nidos: En troncos. La entrada es un simple agujero que sobresale poco de la
supercie.
Registros: El Indio en los Cerros de Contamana (1986). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera. Bagazán, Rio Ucayali (2017).
(Figs. 2 A-J, 8-14)
25
26
FIGURA 8: Melipona cf. crinita Moure & Kerr, 1950 en la entrada del nido y dentro
del nido trabajando con la cera.
27
FIGURA 9: Melipona eburnea Friese, 1900. Al parecer la forma de la entrada y el
color del abdomen varían en esta especie.
28
FIGURA 10: Melipona grandis Guérin, 1844 en la entrada del nido y mordiendo
cinta puesta para protegerle de plagas.
FIGURA 11: Melipona cf. illota Cockerell, 1919. Entrada del nido con abejas
saliendo y llegando.
29
5. Melipona eburnea Friese, 1900 (Figs. 2 C-D, 9)
Originalmente descrita de las Yungas, Bolivia y Vilcanota, Cusco, Perú (Friese,
1900).
Nidos: En troncos. La entrada es comúnmente llamada boca de sapo. La
abertura puede ser horizontal o vertical, también puede ser lisa o presentar
rayas.
Registros: El Porvenir en el Rio Momón (2001), camino hacia Zungarococha
(2001) sobre ores de Convolvulacea; Km 7, 25.7 y 26.5 en la carretera
Iquitos-Nauta (2001); Panguana III (2001); Nueva Esperanza (2001);
Iquitos (1963, 1970); Rio Putumayo en lo que es ahora Colombia. Bagazán,
Rio Ucayali (2017); Chingana, Rio Ucayali (2017); Comunidad de Huaturi,
Rio Nanay (2017); Fundo Junior, Nauta (2017); LLamchama (2017); San
Francisco, Rio Marañón (2017); San Pedro, Rio Nanay (2017); Santa Cruz,
Rio Mazán (2017); Santa Rita, Rio Nanay (2017).
6. Melipona fuscopilosa Moure & Kerr, 1950 (Fig. 2 E)
Originalmente descrita de Santarém, Rio Ariramba, Pará, Brasil (Moure &
Kerr, 1950).
Nidos: Vea M. eburnea, especie muy parecida.
Registros: Quistococha (2004).
7. Melipona grandis Guérin, 1844 (Figs. 2 F, 10)
Originalmente descrita de Chiquitos, Bolivia (Guérin-Méneville, 1844).
Nidos: En troncos. La entrada del nido posee un agujero. Su estructura es un
ornamento, en forma de estrella, compuesto por barro y sustancias resinosas
que muchas veces le dan una coloración blanquecina. Dependiendo de la
edad la entrada puede tener mucho material acumulado.
Registros: Km 15 en la carretera Iquitos-Nauta (2001), sobre ores de
Asteraceae. Putumayo (1920) en lo que es ahora Colombia. Comunidad de
Huaturi, Rio Nanay (2017); LLamchama (2017); San Francisco, Rio Marañón
(2017); San Pedro, Rio Nanay (2017).
8. Melipona cf. illota Cockerell, 1919 (Figs. 2 G, 11)
Originalmente descrita de Palcazu, Pasco, Perú (Cockerell, 1919).
Nido: En troncos. La entrada del nido posee un agujero; su estructura en
Loreto a veces está levantada en un ornamento en forma de estrella.
Registros: El Porvenir en el Rio Momón (2001), Km 15 en la carretera Iquitos-
Nauta (2001), sobre ores de Asteraceae. Bagazán, Rio Ucayali (2017),
Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017), Llanchama (2017), San
Francisco, Rio Marañón (2017), Santa Cruz, Rio Mazán (2017).
9. Melipona cf. ruventris Lepeletier, 1836 (Figs. 2 I, 12)
Melipona ruventris es un complejo de especies en Perú. La auténtica M.
30
ruventris fue originalmente descrita de São Paulo, Brasil (Lepeletier de Saint
Fargeau, 1836).
Nido: En troncos o cavidades. La entrada parece boca de sapo, pero
comúnmente hacia abajo.
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera. Bagazán, Rio Ucayali (2017),
Chingana, Rio Ucayali (2017).
10. Melipona titania Gribodo, 1893 (Figs. 2 J, 13)
Originalmente descrita de La Rioja, Argentina (Gribodo, 1893).
Nidos: La entrada es un simple agujero anillado que sobresale de manera
regular de la supercie. Utiliza abundante resina para la construcción de la
piquera. En épocas de oración utiliza también las semillas rojas del género
Coussapoa.
Registros: Rio Napo (1920). San Francisco, Rio Marañón (2017).
31
32
FIGURA 12: Melipona cf. ruventris Lepeletier, 1836. Generalmente nido con
entrada más grande, pero por ser una colonia nueva aún no se ha completado.
33
FIGURA 13: Melipona titania Gribodo, 1893 casi siempre deposita semillas rojas
del género Coussapoa en la entrada.
34
FIGURA 14: Especie de Melipona aún por identicar.

11. Nannotrigona melanocera (Schwarz, 1938) (Figs. 3 A, 15)
Originalmente descrita de Santa Elena, cerca del Alto Río Beni, Bolivia
(Schwarz, 1938).
Nidos: En cavidades, incluso en cajas, paredes, troncos, etc. La entrada es de
cera, porosa, y varia en coloración del color amarillo al café claro (Rasmussen
& Gonzalez, 2017).
Registros: Km 31.5 en la carretera Iquitos-Nauta (2004). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera. Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017).
12. Nannotrigona schultzei (Friese, 1901) (Fig. 3 B)
Originalmente descrita de Pará, Brasil, volando sobre Croton chamaedryfolius
(Euphorbiaceae) (Friese, 1901; Ducke, 1903).
Nidos: Desconocemos su nido, pero debe ser en tronco.
Registros: Peña Negra a 10 km desde Iquitos (2001). Misiewicz et al. (2014) la
registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
(Figs. 3 A-B, 15)
35
FIGURA 15: Nannotrigona melanocera (Schwarz, 1938) cierra su entrada por la
noche.
36


13. Nogueirapis butteli (Friese, 1900) (Fig. 3 C)
Originalmente descrita de Vilcanota, Cusco, Perú (Friese, 1900).
Nidos: En el suelo, entre raíces.
Registros: En la Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana por la trocha de
INIA (2001). Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera. Reserva Nacional Allpahuayo
Mishana (2017).
14. Oxytrigona cf. mulfordi (Schwarz, 1948) (Fig. 3 D)
Originalmente descrita de Tumupasa, Bolivia (Schwarz, 1948).
Nidos: Generalmente en troncos. No construye piquera, teniendo una entrada
amplia (ranura).
Registros: Reserva Nacional Allpahuayo Mishana.
(Fig. 3 C)
(Fig. 3 D)

15. Aparatrigona impunctata (Ducke, 1916) (Fig. 3 E)
Originalmente descrita de Ilha do Marajó, Rio Anajás, Brasil (Ducke, 1916).
Nidos: Dentro de nidos de comején en árboles.
Registros: Camino hacia Santa Clara (2001), sobre ores de Fabaceae, Iquitos
(<1916) (Ducke, 1916; Camargo & Moure, 1994).
(Fig. 3 E)

16. Paratrigona pacica (Schwarz, 1943) (Fig. 3 F)
Originalmente descrita de San Ramón, Junín, Perú (Schwarz, 1943).
Nidos: Entre las raíces de orquídeas y epitas en los árboles.
Registros: Iquitos (<1989) (Moure, 1989; Camargo & Moure, 1994).
(Figs. 3 F-G)
37
17. Paratrigona prosopiformis (Gribodo, 1893) (Fig. 3 G)
Originalmente descrita de Pebas, Loreto, Perú (Gribodo, 1893).
Nidos: Desconocemos su nido.
Registros: Iquitos (1920, 1964), Pebas (<1893) (Gribodo, 1893; Camargo
& Moure, 1994). San Pedro, Rio Nanay (2017); San José, Rio Mazan (2017).

18. Partamona testacea (Klug, 1807) (Fig. 3 H)
Originalmente descrita de Brasil (Klug, 1807).
Nidos: Ocupan los nidos abandonados en el suelo de las hormigas cortadoras
de hojas Atta sp. La entrada es ancha.
Registros: Campo Venado, Cerros de Orellana (1988), Puerto Almendras
(2001), Teniente López (1993) (Camargo & Pedro, 2003). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera.
19. Partamona vicina Camargo, 1980 (Fig. 3 I)
Originalmente descrita de São Paulo de Olivença, Amazonas, Brasil (Camargo,
1980).
Nidos: Dentro de nidos de comején en árboles.
Registros: Puerto Almendras (2001), 25 km de Iquitos en Rio Nanay (1980),
Teniente López (1993) (Camargo & Pedro, 2003).
20. Partamona ailyae Pedro & Camargo, 2003
Originalmente descrita de Tefé, Amazonas, Brasil (Pedro & Camargo, 2003).
Nidos: Dentro de nidos de comején en suelo (Camargo & Pedro, 2003).
Registros: Iquitos (1931) (Pedro & Camargo, 2003).
21. Partamona epiphytophila Pedro & Camargo, 2003 (Figs. 3 J, 16)
Originalmente descrita de São Paulo de Olivença, Amazonas, Brasil (Pedro &
Camargo, 2003).
Nidos: Pegado en troncos, paredes o entre raíces de epitas, expuesto,
incluyendo resina y tierra. Abejas agresivas en el nido.
Registros: Iquitos (1964), Quistococha (2000), Km 31.5 Carretera Iquitos-
Nauta (2004), Rio Shishista (1992), Rio Apayacu (1992), Rio Atacuari
(1992), Teniente López (1993), Iquitos (1963, 1964, 1992) (Camargo &
Pedro, 2003). Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera. Carretera a Zungarococha
(2017).
(Figs. 3 H-J, 16)
38
FIGURA 16: Partamona epiphytophila Pedro & Camargo, 2003 es común en
paredes o troncos.
39

22. Plebeia kerri Moure, 1950 auctorum (Fig. 4 A)
Originalmente descrita de Porongo, cerca de Santa Cruz de la Sierra, Bolívia
(Moure, 1950).
Nidos: En troncos. La piquera es como un agujero redondo, de cera clara.
Registros: El Porvenir en Rio Momón (2001), 31.5 Km en la Carretera Iquitos-
Nauta (2004).
23. Plebeia margaritae Moure, 1962 (Fig. 4 B)
Originalmente descrita de Pimenta Bueno, Rondônia, Brasil (Moure, 1962).
Nidos: Desconocemos su nido.
Registros: Km 31.5 en la Carretera Iquitos-Nauta (2004).
24. Plebeia minima (Gribodo, 1893) auctorum (Fig. 4 C)
Originalmente descrita de Santarém, Pará, Brasil (Gribodo, 1893).
Nidos: En ramas, paredes, o troncos de caña.
Registros: Iquitos (1920), Reserva Nacional Allpahuaya Mishana trocha de
INIA (2001), Peña Negra (2001), Nueva Esperanza cerca de Pebas (2000),
Km 31.5 en la Carretera Iquitos-Nauta (2004). Misiewicz et al. (2014) la
registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro
Herrera. San Pedro, Rio Nanay (2017); San José, Rio Mazan (2017).
25. Plebeia peruvicola Moure, 1994 (Fig. 4 D)
Originalmente descrita de Puerto Maldonado, Madre Dios, Perú (Moure,
1994).
Nidos: Desconocemos su nido.
Registros: Km 31.5 en la Carretera Iquitos-Nauta (2004).
26. Plebeia spp. (aún por identicar) (Fig. 4 E)
Nidos: Desconocemos su nido.
Registros: Reserva Nacional Allpahuayo Mishana trocha de INIA (2001),
Nueva Esperanza cerca de Pebas (2000), El Porvenir en Rio Momón (2001).
Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de Allpahuayo
Mishana y cerca de Jenaro Herrera. San José, Rio Mazán (2017); Fundo
Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017).
(Figs. 4 A-E)
40

27. Scaptotrigona tricolorata Camargo, 1988 (Figs. 4 G, 17)
Originalmente descrita entre Dos de Mayo y El Porvenir, Camino del Pichis en
Junín, Perú (Camargo, 1988).
Nidos: En forma de corneta porosa, compuesta de resina, cera y barro.
Registros: Reserva Nacional Allpahuayo Mishana (2017).
28. Scaptotrigona spp. ‘negros’ (Figs. 4 F, 18)
Nidos: En forma de tubo largo y oscuro.
Registros: Km 25.7 en la Carretera Iquitos-Nauta, Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana (2001). Bagazán, Rio Ucayali (2017), Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana (2017).
29. Scaptotrigona sp. ‘amarillo’ (Fig. 4 H)
Nidos: Muy parecido al nido de S. tricolorata.
Registros: Nueva Esperanza, cerca de Pebas (2000), Nauta (2001).
(Figs. 4 F-H, 17-18)
41
FIGURA 17: Scaptotrigona tricolorata Camargo, 1988. La entrada parece haber
sido reconstruida.
42
FIGURA 18: Scaptotrigona sp. Generalmente las especies de Scaptotrigona forman
un tubo de entrada para su nido.
43

33. Schwarzula coccidophila Camargo & Pedro, 2002 (Fig. 4 L)
Originalmente descrita de Tapurucuara-Mirim, Rio Negro, Amazonas, Brasil
(Camargo & Pedro, 2002b).
Nidos: En troncos y ramas de Campsiandra angustifolia (Caesalpiniaceae),
en las galerías hechas por larvas de polillas (Cossidae). Siempre co-existe con
Cryptostigma (Coccidae) (Camargo & Pedro, 2002a).
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
34. Schwarzula timida (Silvestri, 1902) (Fig. 4 M)
Originalmente descrita de Coxipó, Mato Grosso, Brasil (Silvestri, 1902).
(Figs. 4 L-M)

30. Scaura cf. latitarsis (Friese, 1900) (Fig. 4 I)
Originalmente descrita de Jundiahy, São Paulo, Brasil (Friese, 1900).
Nidos: Dentro de nidos de comején en árboles. La entrada tiene forma de
tubo, cera clara, con una porosidad na.
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
31. Scaura longula (Lepeletier, 1836) (Fig. 4 J)
Originalmente descrita de São Paulo, Brasil (Lepeletier de Saint Fargeau,
1836).
Nidos: En troncos. Tubo de cera clara.
Registros: Panguana III (2001), La Sombra, hacia El Encanto (1920) cerca
del Putumayo en lo que ahora es Colombia (Schwarz, 1948).
32. Scaura tenuis (Ducke, 1916) (Fig. 4 K)
Originalmente descrita de Pará y Mato Grosso, Brasil (Ducke, 1916).
Nidos: En troncos. La entrada de cera tiene forma de tubo pero de menor
diámetro que S. longula. Tamaño promedio de 53 entradas estudiadas en
Tarapoto, 6.3 cm, ancho siempre menor de 1 cm.
Registros: Reserva Nacional Allpahuaya Mishana (2001). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera.
(Figs. 4 I-K)
44

35. Frieseomelitta trichocerata Moure, 1988 (Figs. 4 O, 19)
Originalmente descrita de Jacareacanga, Pará, Brasil (Moure, 1989(“1988”)).
Nidos: No forman piquera, la entrada es solamente un agujero con pequeñas
acumulaciones de resina alrededor del mismo.
Registros: Pebas, Llamchama (2017); Flor de Castaña, Rio Ucayali (2017).
36. Frieseomelitta sp. (Figs. 4 P, 20)
Nidos: No forman piquera, la entrada es solamente un agujero con pequeñas
acumulaciones de resina alrededor del mismo.
Registros: Iquitos (1992); Flor de Castaña, Rio Ucayali (2017).
(Figs. 4 O-P, 19-20)
Nidos: En troncos. Siempre co-existe con Coccidae (Camargo & Pedro, 2002a).
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
45
FIGURA 19: Frieseomelitta trichocerata Moure, 1988. El género Frieseomelitta
tiene sus discos de cría en racimos.
46
FIGURA 20: Frieseomelitta sp., especie aun por describir de Loreto.
47
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37. Geotrigona fulvohirta (Friese, 1900) (Fig. 4 N)
Originalmente descrita de una serie de abejas colectadas en Colombia, Bolivia,
Brasil (Pará) y Perú (Iquitos).
Nidos: En el suelo. La entrada está reforzada con resina y barro, pero es poco
visible. Sus nidos pueden encontrarse en profundidades de hasta dos metros.
Registros: Iquitos (1920, 1992) (Camargo & Moure, 1996).
(Fig. 4 N)
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38. Ptilotrigona lurida (Smith, 1854) (Fig. 5 A)
Originalmente descrita de Pará, Brasil (Spinola, 1853; Smith, 1854).
Nidos: A diferencia de P. pereneae el tubo de entrada es más redondo, no
estrecho. Las abejas son muy agresivas.
Registros: Iquitos (1964) (Camargo & Pedro, 2004). Misiewicz et al. (2014) la
registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
39. Ptilotrigona pereneae (Schwarz, 1943) (Figs. 5 B, 21)
Originalmente descrita de El Campamento, Colonia de Perené, Perú (Schwarz,
1943).
Nidos: Nidica en huecos de árboles vivos y la entrada es como un tubo
muy estrecho, aproximadamente de 1 cm de ancho por 6-8 cm de altura
y relativamente corto, 3-4 cm; construido con resinas muy endurecidas y
liso, sin los ornamentos tipo estrella apenas el borde distal un poco revisado
y ligeramente crenulado (Camargo & Pedro, 2004). Las abejas son muy
agresivas.
Registros: Teniente López (1993) (Camargo & Pedro, 2004). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera. Bagazán, Rio Ucayali (2017), Chingana, Rio Ucayali (2017),
Flor de Castaña, Rio Ucayali (2017).
(Figs. 5 A-B, 21)
48
FIGURA 21: Ptilotrigona pereneae (Schwarz, 1943) en la entrada de su nido.
49
50
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40. Tetragona clavipes (Fabricius, 1804) (Fig. 5 D)
Originalmente descrita de Sur América, sin indicar la procedencia (Fabricius,
1804), posiblemente en Guayana (Moure, 1960).
Nidos: Tiene la entrada en forma de oreja.
Registros: Km 7 en la Carretera Iquitos-Nauta (2001), Reserva Nacional
Allpahuayo Mishana (2001). Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva
Nacional de Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
41. Tetragona dissecta Moure, 1999 (Fig. 5 E)
Originalmente descrita del ámbito de Villavicencio, Colombia (Moure,
2000(“1999”)).
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
42. Tetragona cf. dorsalis (Smith, 1854) (Fig. 5 F)
Originalmente descrita de Pará, Brasil (Smith, 1854).
Registros: Rio Napo (1920), Quistococha (2004). Misiewicz et al. (2014)
la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro
Herrera.
43. Tetragona goettei (Friese, 1900) (Figs. 5 G, 22)
Originalmente descrita de Bolivia (Yungas), Perú (Vilcanota, Callanga) y Brasil
(Amazonas) (Friese, 1900).
Nidos: Tubo construido con mucha resina.
Registros: Iquitos (1920, 1963), Km 25.7 en la Carretera Iquitos-Nauta,
Reserva Nacional Allpahuaya Mishana (2001), Contamana (2001). Bagazán,
Rio Ucayali (2017); Sapuena, Rio Ucayali (2017).
44. Tetragona handlirschii (Friese, 1900) (Fig. 5 H)
Originalmente descrita de Brasil (Amazonas) (Friese, 1900; Moure et al.,
2007).
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
45. Tetragona truncata Moure, 1971 (Figs. 5 I, 23)
Originalmente descrita de Aragarças, Goiás, Brasil (Moure, 1971).
Nidos: En troncos y otras cavidades. La entrada tiene forma de cigarro marrón.
Puede romperse fácilmente.
Registros: Bagazán, Rio Ucayali (2017).
(Figs. 5 D-I, 22-23)
51
FIGURA 22: Tetragona goettei (Friese, 1900) vigilando en la entrada.
52
FIGURA 23: Tetragona truncata Moure, 1971 en su entrada de forma típica.
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46. Tetragonisca angustula (Latreille, 1811) (Figs. 5 C, 24)
Originalmente descrita de Brasil (Latreille, 1811). Especie muy popular bajo
el nombre ‘ramichi’ en Perú.
Nidos: Se encuentra en toda clase de cavidades. La entrada es un tubo
cilíndrico elaborado de cera de color claro, a veces es oscuro en la base,
debido a las resinas impregnadas.
Registros: Km 26.5 en la Carretera Iquitos-Natura, trocha IIAP (2001), El
Porvenir en Rio Momón (2001), Nauta (2001). Misiewicz et al. (2014)
la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro
Herrera. Cerca de Llamchama (2017); Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio
Nanay (2017).
(Figs. 5 C, 24)
FIGURA 24: Tetragonisca angustula (Latreille, 1811) en la entrada de su nido.
53
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47. Trigona amalthea (Olivier, 1789) (Figs. 6 A, 25)
Originalmente descrita de Cayenne, Guiana Francesa (Olivier, 1789).
Nidos: Expuestos o libres, jados externamente alrededor de las ramas de los árboles
o palmeras, en troncos, paredes de casas, en piedras (en laderas de montañas).
Registros: Iquitos (1920); Rio Napo (1920); Peña Negra (a km 10 de Iquitos)
(2001); Nueva Esperanza, Pebas (2000); entre La Chorrera y La Sombra, cerca
del Rio Putumayo, actualmente en territorio colombiano (1920); Campo Venado en
los Cerros de Orellana. Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional
de Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
48. Trigona truculenta Almeida, 1984 (Fig. 6 B)
Originalmente descrita de Tefé, Amazonas, Brasil (Almeida, 1984).
Nidos: Nidos en árboles con huecos parcialmente abiertos, de modo que parte del
nido queda expuesto.
Registros: Iquitos (1920, 1964), Reserva Nacional de Allpahuayo Mishana (2001)
(Almeida, 1984).
49. Trigona amazonensis (Ducke, 1916) (Figs. 6 C, 26)
Originalmente descrita de Amazonas y Acre, Brasil (Ducke, 1916).
Nidos: Expuestos o libres, jados externamente alrededor de las ramas de los árboles
o palmeras, en troncos, paredes de casas, en piedras (en laderas de montañas).
Esta especie construye los nidos más populosos de abejas sin aguijón.
Registros: Nueva Esperanza, Pebas (2000); El Porvenir por Rio Momón (2001);
Quistococha (2004); Iquitos (1920); entre La Chorrera-La Sombra, cerca del Rio
Putumayo en lo que ahora es Colombia (1920) (Schwarz, 1948). Comunidad de
Huaturi, Rio Nanay (2017), Llamchama (2017), San José, Rio Mazan (2017).
50. Trigona cf. fuscipennis Friese, 1900 (Figs. 6 D)
Originalmente descrita de Panamá (Friese, 1900).
Nidos: Comúnmente con termitas.
Registros: Km 31.5 en la carretera Iquitos-Nauta (2004).
51. Trigona branneri Cockerell, 1912 (Fig. 6 E)
Originalmente descrita de Manaus, Amazonas, Brasil (Cockerell, 1912).
Nidos: Expuestos o libres, jados externamente alrededor de las ramas de los árboles
o palmeras, en troncos, paredes de casas, en piedras (en laderas de montañas).
Registros: Km 8 y 26.5 en la carretera Iquitos-Nauta (2001), Panguana III (2001).
Bagazán, Rio Ucayali (2017).
(Figs. 6 A-O, 25-32)
54
55
FIGURA 25: Trigona amalthea (Olivier, 1789) entre las raíces de una bromelia.
56
FIGURA 27: Nido de Trigona crassipes (Fabricius, 1793).
FIGURA 26: Nido de Trigona amazonensis (Ducke, 1916).
57
52. Trigona cilipes (Fabricius, 1804) (Fig. 6 F)
Originalmente descrita de Sur América, sin indicar la procedencia (Fabricius,
1804), posiblemente en Guayana (Moure, 1960).
Nidos: Dentro de colónias de térmitas o de hormigas.
Registros: Chorrera y La Sombra cerca del Rio Putumayo, en lo que ahora es
Colombia (1920) (Schwarz, 1948). Misiewicz et al. (2014) la registran en la
Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
53. Trigona crassipes (Fabricius, 1793) (Figs. 6 H, 27)
Originalmente descrita de América Latina sin más detalle (Fabricius, 1793).
Nidos: En troncos; sólo con una pequeña abertura donde se construye la
entrada y sin asociación con nidos de otros insectos sociales. Debido a la resina
la entrada del nido es frágil y puede romperse fácilmente.
Registros: La Chorrera hacia La Sombra cerca del Rio Putumayo, en lo que
ahora es Colombia (Schwarz, 1948). Reserva Nacional Allpahuayo Mishana
(2017).
54. Trigona dimidiata Smith, 1854 (Fig. 6 G)
Originalmente descrita de Pará, Brasil (Smith, 1854).
Nidos: Desconocemos el nido, pero es probable que sea expuesto (Schwarz,
1948; Rasmussen & Camargo, 2008).
Registros: Varillal (km 15) en la carretera Iquitos-Nauta (2001).
55. Trigona guianae Cockerell, 1910 (Figs. 6 J, 28)
Originalmente descrita de Guiana (Cockerell, 1910).
Nidos: Subterráneo, en cualquier cámara subterránea, principalmente en
aquellas donde hubo raíces de árboles muertos o en cámaras de termitas
activas o abandonadas.
Registros: Iquitos (1920), Puerto Almendras (2000), Camino hacia
Zungarococha (2001), camino hacia Santa Clara (2001). Misiewicz et al.
(2014) la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y cerca de
Jenaro Herrera. Bagazán, Rio Ucayali (2017); Sapuena, Rio Ucayali (2017).
56. Trigona hypogea Silvestri, 1902 (Figs. 6 I, 29)
Originalmente descrita de Coxipó, Mato Grosso, Brasil (Silvestri, 1902). La
especie alimenta a sus larvas con proteína animal proveniente de animales
muertos.
Nidos: En troncos; sólo con una pequeña abertura donde se construye la entrada
y sin asociación con nidos de otros insectos sociales.
Registros: Peña Negra (km 10) en la carretera Iquitos-Nauta (2001), Varillal
Negra (km 15) en la carretera Iquitos-Nauta (2001), Campo Venado en los
Cerros de Orellana (1988), Camino desde La Chorrera hacia La Sombra (1920)
(Schwarz, 1948). San Francisco, Rio Marañón (2017).
58
FIGURA 28: Trigona guianae Cockerell, 1910 entre raíces.
59
FIGURA 29: Nido de Trigona hypogea Silvestri, 1902.
60
FIGURA 30: Trigona recursa Smith, 1863 en su entrada.
61
57. Trigona recursa Smith, 1863 (Figs. 6 K, 30)
Originalmente descrita de Brasil (Smith, 1863).
Nidos: Subterráneos, en cualquier cámara subterránea, principalmente aquellas
en las que hubo raíces de árboles muertos o en cámaras de termitas activas o
abandonadas.
Registros: Camino desde La Chorrera hacia La Sombra (1920) (Schwarz, 1948).
Bagazán, Rio Ucayali (2017).
58. Trigona chanchamayoensis Schwarz, 1948 (Figs. 6 M)
Originalmente descrita de San Ramón, Junín, Perú (Schwarz, 1948).
Nidos: Dentro de nidos del comején.
Registros: Yurimaguas (1920) (Schwarz, 1948).
59. Trigona dallatorreana Friese, 1900 (Figs. 6 N, 31)
Originalmente descrita de Pebas, Loreto, Perú (Friese, 1900).
Nidos: Expuestos o libres, jados externamente alrededor de las ramas de los árboles
o palmeras, en troncos, paredes de casas, en piedras (en laderas de montañas).
Registros: Santa Soa, Rio Utoquinia, Reserva Nacional Allpahuayo Mishana en
la trocha de INIA (2001), Iquitos (1920, 1963), Pebas (<1900) (Friese, 1900;
Schwarz, 1948). Payurute, Rio Marañón (2017).
60. Trigona pallens (Fabricius, 1798) (Fig. 6 O)
Originalmente descrita de Cayenne, Guiana Francesa (Fabricius, 1798).
Nidos: Comúnmente con termitas.
Registros: Pebas (Friese, 1900). Comunidad de Huaturi, Rio Nanay (2017); Fundo
Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017); San José, Rio Mazán (2017).
61. Trigona williana Friese, 1900 (Figs. 6 L, 32)
Originalmente descrita de Coari, Amazonas, Brasil (Friese, 1900).
Nidos: En troncos; sólo con una pequeña abertura donde se construye la entrada y
sin asociación con nidos de otros insectos sociales.
Registros: Km 26.5 en la Carretera Iquitos-Nauta (2001), Quistococha (2004),
Iquitos (1920), Rio Putumayo, incluso La Sombra (1920) (Schwarz, 1948).
Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional Allpahuayo Mishana y
cerca de Jenaro Herrera. Bagazán, Rio Ucayali (2017), Quistococha (2017).
62
FIGURA 31: Trigona dallatorreana Friese, 1900 en un árbol.
63
FIGURA 32: Trigona williana Friese, 1900 en un tronco.

62. Trigonisca bidentata Albuquerque & Camargo, 2007 (Fig. 7 A)
Originalmente descrita de Porto Velho, Rondônia, Brasil (Albuquerque &
Camargo, 2007).
Nidos: Desconocemos el nido.
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
63. Trigonisca cf. ceophloei (Schwarz, 1938) (Fig. 7 B)
Originalmente descrita de Kartabo, Guayana donde fue encontrada en el
estómago de un pájaro carpintero (Ceophloeus lineatus).
Nidos: Desconocemos el nido.
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
64. Trigonisca pediculana (Fabricius, 1804)
Originalmente descrita de Sur América (Fabricius, 1804).
Nidos: Desconocemos el nido.
Registros: Iquitos (Parish).
65. Trigonisca spp.
Nidos: Desconocemos los nidos.
Registros: Iquitos (1920). Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017);
Llamchama (2017); San Pedro, Rio Nanay (2017)
(Figs. 7 A-B)

66. Leurotrigona muelleri (Friese, 1900) (Fig. 7 D)
Originalmente descrita de Blumenau, Santa Catarina, Brasil (Friese, 1900).
Nidos: Nido en pequeñas cavidades (Pedro & Camargo, 2009).
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
67. Leurotrigona pusilla Moure & Camargo, 1988 (Fig. 7 E)
Originalmente descrita de Foz do Rio Curicuriari, Amazonas, Brasil (Moure et
al., 1988).
Nidos: Comúnmente en la caña brava. La entrada está fabricada con cera de
(Figs. 7 D-E)
64

68. Dolichotrigona browni Camargo & Pedro, 2005 (Fig. 7 C)
Originalmente descrita de Alta Floresta, Rondônia, Brasil (Camargo & Pedro,
2005).
Nidos: Desconocemos el nido.
Registros: Rio Napo (1920) (Camargo & Pedro, 2005).
69. Dolichotrigona moratoi Camargo & Pedro, 2005
Originalmente descrita de Parque Nacional Serra do Divisor, Acre, Brasil
(Camargo & Pedro, 2005).
Nidos: Desconocemos el nido.
Registros: Fundo Jaén, cerca Santa Rita, Rio Nanay (2017).
(Fig. 7 C)
color café, con forma de corneta, excepto la parte inferior, que tiene forma de
un labio ancho, una plataforma para aterrizaje de las abejas.
Registros: Misiewicz et al. (2014) la registran en la Reserva Nacional de
Allpahuayo Mishana y cerca de Jenaro Herrera.
65
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RESUMEN El estudio de 107 cráneos de Abrothrix hirta procedentes de las áreas geográficas de Osorno y Aysén mediante la utilización de la morfometría craneal tradicional y la morfometría geométrica, indicó la existencia de diferencias entre los especímenes de ambas localidades. Los contrastes entre ambos gru-pos para la categoría origen geográfico evidenciaron una diferencia significativa, en que las mayores diferencias en la morfometría craneal están representadas por el tamaño y luego por la forma, las que se localizan en la zona postero medial del cráneo. Mientras que los análisis de diferencias intersexuales no revelaron diferencias significativas. ABSTRACT Craneometric Study in Abrothrix hirta (Thomas, 1895) (Rodentia: Cricetidae): an Approach from the Geometric Morphometry. The study of 107 skulls of Abrothrix hirta from the geographic areas of Osorno and Aysén using traditional cranial morphology and geometric morphometry, showed differences between specimens of both locations. The comparison between the two groups for geographical origin category evidence significant difference, in that the greatest differences in cranial morphology reflected the posterior skull-media area. While the analysis focused on differences between males and females, did not reveal significant differences.
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We provide comparative comments on the morphology and provenance of the primary types of the species in the stingless bee genus Nannotrigona Cockerell. We offer an illustrated key to workers of all presently known species and designate lectotypes for the following species to stabilize their names: N. dutrae (Friese), N. mellaria (Smith), N. punctata (Smith), and N. schultezi (Friese). The type of Melipona minuta Lepeletier de Saint Fargeau could not be located and it remains an incertae sedis, but a possible member of Nannotrigona. A distinctive new species from western Ecuador, Nannotrigona camargoi n. sp. (type locality Ecuador, Pichincha) is also described and figured.
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In this paper are described six new species of yellowish Partamona: vicina, pseudomusarum, mulata, mourei, ailyae and aequatoriana, as well as testacea (Klug, s. str.) and peckolti (Friese) already known. A key to these species is included. The use of the "transect method" for the study of the geographic variation of testacea (s. str.), that inhabits the Amazon forest, led to the following conclusions: this species includes at least three different geographic forms. In relation to this some comments are made about the possible mode of differentiation, mainly related with the paleonclimatic events in the quaternary period. The vicina species inhabits the "cerrados" of the central Brazil and has disjunct populations in the Amazon enclaves of "cerrados". The species peckolti is considered polytypic, including musarum (Cockerell), n. stat., as a subspecies. Some data about nidification habits are also included.
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This work, dedicated to the study of nesting habits of the species of the Neotropical genus Partamona Schwarz, is a sequence to the taxonomic revision recently published elsewhere. A total of 214 nests and nest aggregations of 18 species [Partamona epiphytophila Pedro & Camargo, 2003; P. testacea (Klug, 1807); P. mourei Camargo, 1980; P. vicina Camargo, 1980; P. auripennis Pedro & Camargo, 2003; P. combinata Pedro & Camargo, 2003; P. chapadicola Pedro & Camargo, 2003; P. nhambiquara Pedro & Camargo, 2003; P. ferreirai Pedro & Camargo, 2003; P. pearsoni (Schwarz, 1938); P. gregaria Pedro & Camargo, 2003; P. batesi Pedro & Camargo, 2003; P. ailyae Camargo, 1980; P. cupira (Smith, 1863); P. mulata Moure in Camargo, 1980; P. seridoensis Pedro & Camargo, 2003; P. criptica Pedro & Camargo, 2003; P. helleri (Friese, 1900)] were studied , including data about habitat, substrate, structural characteristics, construction materials and behavior. The descriptions of the nests are illustrated with 48 drawings. Partial data of the nests of P. bilineata (Say, 1837), P. xanthogastra Pedro & Camargo, 1997, P. orizabaensis (Strand, 1919), P. peckolti (Friese, 1901), P. aequatoriana Camargo, 1980, P. musarum (Cockerell, 1917) and P. rustica Pedro & Camargo, 2003 are also presented. Nests of P. grandipennis (Schwarz, 1951), P. yungarum Pedro & Camargo, 2003, P. subtilis Pedro & Camargo, 2003, P. vitae Pedro & Camargo, 2003, P. nigrior (Cockerell, 1925), P. sooretamae Pedro & Camargo, 2003 and P. littoralis Pedro & Camargo, 2003 are unknown. The species of Partamona build notable nest entrance structures, with special surfaces for incoming / exiting bees; some of them are extremely well-elaborated and ornamented, serving as flight orientation targets. All species endemic to western Ecuador to Mexico with known nesting habits (P. orizabaensis, P. peckolti, P. xanthogastra, P. bilineata, P. aequatoriana and P. musarum) build their nests in several substrates, non-associated with termitaria, such as cavities and crevices in walls, among roots of epiphytes and in bases of palm leaves, in abandoned bird nests, under bridges, and in other protected places, except P. peckolti that occasionally occupies termite nests. In South America, on the eastern side of the Andes, only P. epiphytophila and P. helleri nest among roots of epiphytes and other substrates, non-associated with termitaria. All other species studied (P. batesi, P. gregaria, P. pearsoni, P. ferreirai, P. chapadicola, P. nhambiquara, P. vicina, P. mourei, P. auripennis, P. combinata, P. cupira, P. mulata, P. ailyae, P. seridoensis, P. criptica and P. rustica) nest inside active termite nests, whether epigeous or arboreous. The only species that builds obligate subterranean nests, associated or not with termite or ant nests (Atta spp.) is P. testacea. Nests of Partamona have one vestibular chamber (autapomorphic for the genus) closely adjacent to the entrance, filled with a labyrinth of anastomosing pillars and connectives, made of earth and resins. One principal chamber exists for food and brood, but in some species one or more additional chambers are filled with food storage pots. In nests of P. vicina, there is one atrium or "false nest", between the vestibule and the brood chamber, which contains involucral sheaths, cells and empty pots. All structures of the nest are supported by permanent pillars made of earth and resins (another autapomorphy of the genus). The characters concerning nesting habits were coded and combined with morphological and biogeographic data, in order to hypothesize the evolutive scenario of the genus using cladistic methodology. The phylogenetic hypothesis presented is the following: (((((P. bilineata (P. grandipennis, P. xanthogastra)) (P. orizabaensis, P. peckolti)) (P. aequatoriana, P. musarum)) P. epiphytophila, P. yungarum, P. subtilis, P. vitae) (((((P. testacea (P. mourei, P. vicina)) (P. nigrior (P. auripennis, P. combinata))) (P. ferreirai (P. pearsoni (P. gregaria (P. batesi (P. chapadicola, P. nhambiquara)))))) ((((P. ailyae, P. sooretamae) P. cupira, P. mulata) P. seridoensis) P. criptica, P. rustica, P. littoralis)) P. helleri))). One area cladogram is presented. Dates of some vicariance / cladogenesis events are suggested. For bilineata / epiphytophila group, which inhabits the Southwestern Amazonia and the Chocó-Mexican biogeographical components, the origin of ancestral species is attributed to the Middle Miocene, when the transgressions of the Maracaibo and Paranense seas isolated the tropical northwestern South America from the eastern continental land mass. The next cladogenic event in the history of the bilineata / epiphytophila group is attributed to the Plio-Pleistocene, when the Ecuadorian Andes reached more than 3000 m, and the ancestral species was fragmented in two populations, one occupying the western Andes (ancestral species of the bilineata subgroup) and other the southwestern Amazon (ancestral species of the epiphytophila subgroup). Other aspects of the history of Partamona are also discussed.
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Uma nova espécie de Frieseomemelitta do oeste da Amazônia (Hymenoptera, Apoidea)
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The Amazonian stingless bee Schwarzula sp. houses and attends, in its nest, soft scale insects, Cryptostigma sp. (Coccidae), from which obtains sweet secretions (honeydew) for their feeding and additional wax to build their nests. The bees nests in tunnels burrowed by moth larvae in branches of Campsiandra angustifolia, Caesalpiniaceae.