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PRINCIPALES ENFERMEDADES DEL CULTIVO DE LA SÁBILA (Aloe vera) MAIN DISEASES OF THE CULTIVATION OF ALOE (Aloe vera)

Authors:

Abstract

Aloe (Alove vera) is a species of great importance worldwide and Mexico is one of the main producing countries and the main exporter, with an area sown of 5,538.63 ha; highlighting the state of Tamaulipas with a harvested area of 3,941.89 ha year. However, the crop faces some problems related to phytopathogenic microorganisms (fungi and bacteria) that cause different diseases such as root rot, leaf spot and soft rot. RESUMEN La sábila (Alove vera) es una especie de suma importancia a nivel mundial y México es uno de los principales países productores y el principal exportador, con una superficie sembrada de 5,538.63 ha; destacando el estado de Tamaulipas con una superficie cosechada de 3,941.89 ha al año. Sin embargo, el cultivo enfrenta algunos problemas relacionados con microorganismos fitopatógenos (hongos y bacterias) causantes de diferentes enfermedades como pudrición de la raíz, mancha foliar y putrefacción blanda. En este artículo se hace una descripción de estas enfermedades, los organismos causales y los principales síntomas que presentan. Palabras clave: Fitopatógenos, síntomas, pudrición de raíz, mancha foliar, putrefacción blanda.
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PRODUCTIVIDAD
Agroproductividad: Vol. 11, Núm. 7, julio. 2018. pp: 29-33.
Recibido: febrero, 2018. Aceptado: mayo, 2018.
PRINCIPALES ENFERMEDADES DEL CULTIVO DE LA SÁBILA (Aloe vera)
MAIN DISEASES OF THE CULTIVATION OF ALOE (Aloe vera)
Rubio-Tinajero, S.1; Osorio-Hernández, E.1*; Rodríguez-Mejía, M.L.2; López-Santillán, J.A.1; Estrada-Drouaillet, B.1
1Universidad Autónoma de Tamaulipas. Facultad de Ingeniería y Ciencias. Centro Universitario Adol-
fo López Mateos, Ciudad Victoria, Tamaulipas, México. 2Universidad Autónoma Chapingo. Departa-
mento de Parasitología. Carretera México- Texcoco km 38.5, Chapingo, Texcoco, Estado de México.
*Autor de correspondencia: eosorio@docentes.uat.edu.mx
ABSTRACT
Aloe (Alove vera) is a species of great importance worldwide and Mexico is one of the main producing countries and the
main exporter, with an area sown of 5,538.63 ha; highlighting the state of Tamaulipas with a harvested area of 3,941.89
ha year. However, the crop faces some problems related to phytopathogenic microorganisms (fungi and bacteria) that
cause different diseases such as root rot, leaf spot and soft rot.
Keywords: Phytopathogen, symptoms, root rot, leaf spot, soft rot.
RESUMEN
La sábila (Alove vera) es una especie de suma importancia a nivel mundial y México es uno de los principales países
productores y el principal exportador, con una superficie sembrada de 5,538.63 ha; destacando el estado de Tamaulipas
con una superficie cosechada de 3,941.89 ha al año. Sin embargo, el cultivo enfrenta algunos problemas relacionados
con microorganismos fitopatógenos (hongos y bacterias) causantes de diferentes enfermedades como pudrición de la
raíz, mancha foliar y putrefacción blanda. En este artículo se hace una descripción de estas enfermedades, los organismos
causales y los principales síntomas que presentan.
Palabras clave: Fitopatógenos, síntomas, pudrición de raíz, mancha foliar, putrefacción blanda.
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INTRODUCCIÓN
ElgéneroAloe, pertenece a la fami-
lia Xanthorrhoeaceae (Ji-
ménez, 2015) y cuenta con más de 360 especies entre
las que destaca Aloe vera, comúnmente llamada sábi-
la, que tiene su origen en África, Asia y el Mediterráneo
(Calderón-Oliver et al., 2011). Esta especie ha sido am-
pliamente distribuida en la mayoría de los continentes,
principalmente en aquellos que cuentan con zonas de
climas cálidos y secos (Gómez, 2003). Los principales
países productores de este cultivo son República Domi-
nicana, Venezuela y México (Schmelzer y Gurib-Fakim,
2008). México es considerado el principal productor y
exportador de sábila (Álvarez et al., 2012), y solo siete
estados son productores, destacando Tamaulipas (Figu-
ra 1), entidad que cuenta con una
superficie cosechada que corres-
ponde a 3,941.89 ha al año, la
mayor producción se encuentra
en los municipios de González,
Padilla, Jaumave, Llera y Tula
(SIAP, 2014).
De la planta de sábila, se obtie-
nen diversos productos como
el jugo natural, gel concentrado
y gel en polvo, cubriendo la de-
manda principalmente de Esta-
dos Unidos y países europeos
(Pedroza-Sandoval et al., 2015).
El gel, se utiliza ampliamente en
la producción de cosméticos,
fármacos y suplementos alimen-
ticios (Patishtán et al., 2010); por
consiguiente la comercialización de los subderivados
y las características de tolerancia a factores bióticos y
abióticos adversos, ha provocado que este cultivo tenga
un éxito a nivel mundial (Pedroza y Gómez, 2014). Sin
embargo, una de las principales limitantes que afectan
el rendimiento y provocan pérdidas económicas, es el
ataque de diversos fitopatógenos como los hongos y las
bacterias que causan diversas enfermedades en la planta
(Jiménez, 2015). El mercado al que se dirige la sábila,
establece estándares de calidad y sanidad, por lo tanto
es de vital importancia evitar las infecciones causadas
por los hongos, dado que algunos géneros producen
micotoxinas en el hospedero, provocando riesgos en
la salud del consumidor (Kawuri et al., 2012). En Esta-
dos Unidos (EUA) se han reportado como los principa-
les fitopatogenos fúngicos, causantes de manchas fo-
liares a Physalospora sp., Alternaria sp., Exserohilum sp.,
Botryodiplodia sp., Macrophoma sp., Microsphaeropsis
sp., Cercosporidium sp., Corynespora sp., y Phyllosticta
sp., y en cuanto a las pudriciones radicales se encontró
Phytophthora nicotianae, Pythium ultimum, Fusarium
oxysporum, Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii (Lugo
et al., 2004). Por otro lado, en las regiones de Asia, Euro-
pa y Norte América se han reportado enfermedades en
la sábila provocadas por bacterias de los géneros Erwinia,
Dickeya y Pectobacterium pertenecientes al grupo pec-
tolítico (Kumar et al., 2011). Debido a la escasa informa-
ción que se tiene sobre las enfermedades de la sábila,
el objetivo de este trabajo ha sido recopilar información
acerca de las principales enfermedades de la sábila y los
fitopatógenos que las causan.
FACTORES QUE LIMITAN
LA PRODUCCIÓN DE
SÁBILA
La sábila es considerada una
planta tolerante a factores bióti-
cos y abióticos, aunque en oca-
siones puede presentar afec-
taciones por enfermedades,
deficiencia o exceso de agua,
radiación solar, falta de nutrien-
tes, y salinidad del suelo, entre
otros, dependiendo del genotipo
y los fines para los que se cultive
(Pedroza y Gómez, 2014). Sobre
las enfermedades de este cultivo
existe poca información, que en
general han sido provocadas por
cuestiones de manejo agronómi-
co inadecuado (Moreno et al., 2012) en incremento en la
superficie sembrada (Lugo et al., 2004). Algunos de los
organismos causantes de las enfermedades son hongos,
que ocasionan daños en raíz, tallo, y hojas (Ochoa et
al., 2007). Además, las bacterias de los géneros Erwinia,
Pectobacterium y Dickeya (Mandal y Maiti 2005;Kumar
et al., 2011; Jiménez, 2015) son causantes de otras en-
fermedades en sábila. En una revisión actual se encontró
que las principales enfermedades causadas por hongos
y bacterias son la pudrición de la raíz, la mancha de la
hoja y la putrefacción blanda (Pedroza y Gómez, 2014).
Microorganismos que causan la pudrición
de raíz de la sábila
Dentro de los principales causantes de la pudrición radi-
cular se encuentran los hongos fitopatógenos Fusarium
Figura 1. Cosecha de la hoja de sábila en el munici-
pio de Xicoténcatl, Tamaulipas.
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y Rhizoctonia (Lugo et al., 2004). Hongos del género
Fusarium son causantes de enfermedades en más de
100 especies de plantas, incluyendo la sábila, debido a
que cuenta con un mecanismo de crecimiento rápido
y la producción abundante de colonias (Garces et al.,
2001). Este fitopatógeno se encuentran ampliamente
distribuidos en el suelo, debido a la capacidad
que tiene para desarrollarse a una tempe-
ratura de 37 °C (Tapia y Amaro, 2014).
Por consiguiente este género repre-
senta un problema en los cultivos
ya que reducen el crecimiento y
pueden ocasionar hasta la muerte
de la planta (Magallón-Alcázar et
al., 2016; Osorio-Hernández et al.,
2016). La especie de F. oxysporum
(Figura 2) causa la podredumbre de
la base, el amarillamiento y el mar-
chitamiento de las hojas y es el principal
fitopatógeno de Aloe barbadensis siendo
esta una de las especies más utilizadas
comercialmente (Kawuri et al., 2012).
Además Rhizoctonia solani Kühn ata-
ca el sistema radicular, el tallo y las
partes aéreas, puede descomponer
también los órganos de reserva así
como causar marchitez y necrosis
de las hojas (López-Cruz et al., 2013).
En el cultivo de la sábila este hongo se
ha reportado como uno de los principa-
les causantes de la pudrición radical
ya que provoca el amarillamiento de
las hojas, las manchas obscuras en
el tallo y la raíz, que con el paso del
tiempo se vuelven una pudrición a
la altura del tallo y finalmente provo-
can la caída de las hojas (Lugo et al., 2004).
Microorganismos que causan la mancha foliar
en la sábila
La mancha de la hoja dela sábila es una enfermedad de
gran importancia ya que causa grandes pérdidas. Esta
enfermedad es causada principalmente por Alternaria
alternata, que se manifiesta en cualquier parte de la
superficie de las hojas, como manchas necróticas de
color marrón oscuro y centro grisáceo, con una forma
circular u ovales, una vez que la hoja se infecta, em-
pieza a secarse desde la punta, esto trae como con-
secuencia la reducción del contenido de gel mucila-
ginoso en la hoja (Ghosh et al., 2016). Además se ha
reportado pérdidas en sábila por Colletotrichum, cau-
sando hasta 80% de daño; inicialmente se caracteriza
por la aparición de lesiones de color marrón claro con
margen castaño oscuro que con el paso del tiempo se
convierte en manchas secas de color marrón obscuro
casi negro (Cedeño et al., 2010), normalmente la man-
cha se ubica en la superficie y los bordes de las
hojas causando así el endurecimiento de
la punta (Pedroza y Gómez, 2014). Por
otra parte se ha reportado Nigrospora
oryzae como otro fitopatógeno, que
al inicio de la enfermedad causa
manchas cloróticas y de color ma-
rrón que se expanden hasta 4 mm
de diámetro y con el transcurso del
tiempo, su color se vuelve más obs-
curo. Estas lesiones pueden manifes-
tarse en las puntas de las hojas hasta un
50% por planta, y conforme la infección
avanza, las lesiones se unen invadiendo
toda la hoja y posteriormente causan la
muerte (Alam et al., 2017). Otro de los
fitopatógenos que causa daños es
Polyrostrata indica, principalmen-
te en la superficie de las hojas en
forma de manchas redondas y hú-
medas, que con el paso del tiempo
y conforme la infección avanza, las
manchas se hunden y se tornan color
marrón y por último, toma un color ne-
gro pardo causando una necrosis
total (Avasthi et al., 2017). Además,
se ha reportado a Phoma eupyrena
Sacc. en los meses lluviosos ya que
comienza con una lesión en for-
ma de raspado irregular, alargado
y hundido en la hoja, otros síntomas son en forma de
mancha abultada y a medida que la infección avanza
las manchas aumentan de tamaño y se pigmentan de
un color marrón cremoso que con el tiempo se vuel-
ven lesiones secas y color marrón obscuro hasta verse
necrótica (Avasthia et al., 2016).
Microorganismo que causa pudrición blanda
en la sábila
Uno de los organismos causales de la pudrición blan-
da de la sábila es Dyckeya gen. nov. (ex. Erwinia
chrysanthemy, Pectobacterium chrysanthemi) (Samson
et al., 2005; Palacio-Bielsa y Cambra-Alvares, 2008). Las
especies de este género bacteriano causan importantes
Figura 2. A) Crecimiento de Fusarium en me-
dio de cultivo Agar dextrosa de papa B) Sínto-
mas de plantas de Aloe enfermas por causa
del fitopatógeno Fusarium (Necrosis en la
raíz, amarillamiento y marchitez de las hojas).
A
B
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pérdidas económicas debido a la gran ac-
tividad pectolíticas que macera los te-
jidos (Figura 3) degradando la pared
celular de las plantas (Czajkowski et
al., 2015), produciendo múltiples en-
zimas hidrolíticas que le permiten
liberar los nutrientes que permiti-
rán el crecimiento bacteriano (Ló-
pez y Rodríguez, 2009). Por lo tanto
Dickeya puede producir la pudrición
acuosa del pseudo-tallo (Nagaraj et al.,
2012), además degrada plantas suculen-
tas y cuenta con un alto índice de sobre-
vivencia, ya que puede permanecer por
largos periodos de tiempo en suelo y
desechos vegetales, lo cual tiene por
consecuencia la manifestación de
infecciones latentes. Este fitopató-
geno cuenta con escasas medidas
de manejo, lo más recomendado
cuando la planta manifiesta síntomas
de infección, es la erradicación (Ramí-
rez et al., 2014). Otros estudios mues-
tra que las especies de Dickeya
conocidas como D. dadanti, D.
dieffenbachiae y D. Zeae, son alta-
mente patogénicas sobre la planta
de Aloe (Samson et al., 2005).
El género Dickeya puede causar pu-
drición foliar en sábila, con heridas en la base
de las hojas y a partir de ahí comienza a
degradarse la pared vegetal causando
una putrefacción de rápido avance
provocando, dentro de la epidermis
una formación de gas, inflándose y
posteriormente liberando una masa
fangosa (Mandal and Maiti 2005;
Pedroza y Gómez, 2014). Los sínto-
mas de la enfermedad consisten en
lesiones necróticas que presentan una
consistencia acuosa al comienzo
de la infección y que posteriormen-
te se torna seca del tercio superior
de las hojas tiernas del cogollo, una
vez que la enfermedad está avanza-
da el tercio superior se desprende
(Figura 4) terminando así el avance
del daño dejando solo una cicatriz
necrosada (Pedroza et al., 2011).
CONCLUSIONES
Elcultivo de la sábila ha resulta-
do ser de gran importancia en
el estado de Tamaulipas, México.
Sin embargo, el ataque de enfer-
medades causadas por diferentes
especies de bacterias y hongos ha
reportado hasta un 14% de pérdidas,
lo que ha generado la necesidad de
realizar una recopilación de informa-
ción acerca de los fitopatógenos cau-
santes de enfermedad en el cultivo dando
a conocer que existen una gran diversidad
de hongos y bacterias responsables de
las enfermedade. A fin de contribuir
a un manejo sustenble del cultivo,
los esfuerzos subsiguientes deben
enfocarse a buscar soluciones eco-
lógicas a fin de identificar microor-
ganismos antagonistas que ayuden
a revertir el crecimiento de los fito-
patógenos en los suelos en los que
se cultiva la sábila. Las líneas de inves-
tigación por lo tanto deben diseñar
las metodologías para identificar
cepas específicas de hongos como
Trichoderma spp. y bacterias como
Bacillus spp. Brinden la posibilidad
de controlar los fotopatógenos del
cultivo.
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Figura 3. A) Crecimiento de Dicheya
chrysanthemi en medio de cultivo de Agar
Bacteriológico. B) Síntomas de plantas de
Aloe enfermas por causa del fitopatógeno
Dicheya chrysanthemi (Pudrición blanda en
tallo que se extiende a través de las hojas).
Figura 4. Síntomas de plantas de sábila en-
fermas por causa de Dyckeya gen. nov. (ex.
Erwinia chrysanthemy, Pectobacterium
chrysanthemi) caracterizadas por lesiones
necróticas de en el tercio superior de las ho-
jas tiernas del cogollo, de consistencia acuo-
sa al comienzo de la infección y se torna
seca causando el desprendimiento del tercio
superior.
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El estudio se llevó a cabo en 2011 y 2012 y tuvo como objetivo evaluar el efecto de diferentes fuentes y dosis de fertilizantes en el crecimiento de la hoja de sábila y la calidad del gel, este último como el producto de mayor demanda en el mercado. Se usó un diseño de bloques al azar en parcelas divididas con tres repeticiones. Las parcelas grandes fueron las dosis de algaenzimas (0, 7 y 14 L ha-1) y las parcelas chicas las dosis de composta (0.5 y 10 t ha-1). Las variables que se midieron fueron: la altura de planta, ancho, largo y grosor de hoja; en tanto que en el jugo y gel, se midió el pH, °Brix, sólidos totales, sólidos precipitables en metanol, proteínas, carbohidratos, contenido de gel y macroelementos (P, K, Ca, Mg y Na). La altura de planta y largo de la hoja, fueron significativamente mayores (p≤ 0.05) al aplicar 14 L ha-1 de algaenzimas. Los contenidos de gel, azúcares y sólidos precipitables en metanol, fueron significativamente mayores, 273 días después de la primera aplicación de los biofertilizantes (DDPAB) (diciembre), 273- 393 DDPAB (diciembre-abril) y 273 DDPAB (diciembre), respectivamente. El contenido de P y Mg se redujeron significativamente, 273 DDPAB (diciembre) al aplicar 10 t ha-1 de composta, después se recupera el contenido de estos elementos. El contenido de carbohidratos y proteínas se incrementaron significativamente a los 273 DDPAB (diciembre), lo cual es determinante para identificar la fecha de corte de hoja de sábila.
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This crop has serious constraints with diseases, including those caused by bacteria, such as Dickeya sp. This research aimed to evaluate the effect of 4 resistance inductors and 3 doses in Chlorine Dioxide in handling watery rot of pseudo-stem (Dickeya sp.) in banana. Resistance inducers and their doses were Potassium Phosphite: 1.5 cm3.l-1; 3-Aminobutanoic Acid: 1.0 g.l-1; Methyl Jasmonate: 0.2 g.l-1; S-Methyl-Acibenzolar: 0.3 ml.l-1, all by foliar application, while Chlorine Dioxide was injected into the pseudo-stem, in doses of 10, 20 and 30 mg.l-1. The evaluated variables were: development of the disease, total biomass and quantification of the bacterium in the inoculated pseudo-stems. Applications of Chlorine Dioxide achieved a reduction of disease by 65.4, 91.99 and 61.5%, in addition to an inhibition of 100% of the pathogen, using 30 and 50 mg.l-1 doses. Meanwhile, the use of resistance inductors reduced up to 60.6% of the disease, but this effect failed to improve plant growth.
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En abril de 2007, el hongo Colletotrichum gloeosporioides fue consistentemente aislado de las pencas (hojas) de plantas de zábila (Aloe barbadensis Miller) cultivadas en la Estación Experimental San Juan de Lagunillas del Instituto de Investigaciones Agropecuarias de la Universidad de Los Andes, Mérida, Venezuela. Pruebas de patogenicidad realizadas en invernadero y subsecuentes re-aislamientos hechos a partir de las pencas inoculadas artificialmente, confirmaron que C. gloeosporioides causó la enfermedad investigada. La identidad de la especie se estableció sobre la base de análisis fitopatológicos tradicionales y confirmada mediante prueba molecular por PCR. Este artículo constituye para Venezuela el primer reporte formal sobre una enfermedad de antracnosis causada por C. gloeosporioides en zábila.
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Because of the current population concern and interest about health conditions and life quality, the demand for natural products has increased, inducing the pharmaceutical and food industries to focus its efforts in researches related to their use. One of the most demanding raw materials both in foreign and national markets is Aloe Vera, a vegetable which can be obtained for cosmetics, pharmaceutical and food purposes. From the point of view of human nutrition, scientists have identified more than 75 components in Aloe Vera, mainly vitamins, minerals, enzymes and amino acids, besides other substances of interest to our organism with emollient, healing, clotting, moisturizing, antiallergenic, antiseptic, antinflammatory, astringent, choleretic and laxative action. Thus this plant can provide nutritional components as raw material to elaborate functional foods, considered as «future food» nowadays. Aloe vera can become an excellent source of chemical nutritional products for the development of new products for the Chilean food industry.
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Based on phenotypic variation among Rhizoctonia solani isolates and hyphal anastomosis criteria, this fungus has been divided into 14 anastomosis groups and several subgroups. To solve the question concerning whether each anastomosis group corresponds to a distinct species or to divergent populations from a single species, several characters such as morphology, biochemistry, cytology, and ultrastructure have been used without solving this taxonomic problem. Nevertheless, recent phylogenetic studies using nuclear ribosomal DNA (ITS and 28S) have confirmed that R. solani is a species complex; therefore, several anastomosis groups should be recognized with this taxonomic rank.
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A new leaf rot disease of Aloe vera was observed for the first time in 2000, at the National Research Centre for Medicinal and Aromatic Plants, India. The disease was serious when abundant moisture was available through irrigation and /or rain. The symptoms started as water-soaked lesions at the base of leaves. The rotting progressed very fast and the whole plant died within 2–3 days. As rotting progressed, the leaf epidermis bulged out due to gas formation and the leaf content was converted to a slimy mass, which was eventually released. A bacterium was isolated from the infected tissues. The organism was a nonspore-forming, motile, short rod, and usually single. It produced circular, convex, small (< 1 mm) colonies without pigmentation after 24 h on nutrient agar. The bacterium produced positive reactions to: catalase; levan production; gelatine liquefaction; anaerobic growth; fermentative utilization of glucose and gas forma-tion; utilization and acid production from arabinose, ribose, xylose, galactose, sucrose, fructose, salicin, inositol, man-nitol, cellobiose; and lypolytic activity. Negative reactions were found to: Gram staining; oxidase; starch hydrolysis; H 2 S production; acid production from methyl-α -d -glucoside, lactose, sorbitol, maltose, trehalose, dulcitol and adonitol; and production of reducing substance from sucrose. Pathogenicity was confirmed by inoculation of leaves in potted plants or excised leaves with bacterial suspension (≈ 6 × 10 6 CFU mL − 1) either infiltrated or injected. Char-acteristic symptoms appeared within 24 h of inoculation. The bacterium was identified as Pectobacterium chry-santhemi on the basis of the above characteristics along with quantitative fatty acid methyl ester analysis and metabolic profiling (Biolog) at CABI Bioscience (IMI 389157). This disease was first reported from the Carib-bean island of Aruba (de Laat et al ., 1994) and Korea (Jin et al ., 1994). This is the first report of the disease from India.
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Fungal pathogens causing the leaf spot disease of Aloe vera have been isolated from 40 randomly selected infected leaves, collected from different locations of Birbhum and Burdwan districts of West Bengal. All of the isolates showed similar morphological characteristics and the strain VBAV007, isolated from a severely infected Aloe leaf was identified as Alternaria alternata by D1/D2 region of 28S rRNA gene sequence homology. In addition to the destruction of leaf mesophyll tissues the pathogen also decreases the antimicrobial potential of Aloe vera gel. The commercially available fungicide mancozeb was effective at low concentration (100 μg/ml) to control the pathogen whereas it can tolerate 1000 μg/ml or more concentrations of bavistin. Two plant growth promoting rhizobacterial strains, viz. Burkholderia cenocepacia VBC7 and Pseudomonas poae VBK1 were able to produce prominent zones of inhibition against the pathogen in dual culture overlay plates. 89.3 ± 1.22% and 81.5 ± 2.67% inhibitions of conidial germination of the pathogen were noticed in the presence of cell free supernatant of VBK1 and VBC7 respectively. Radial growth assay also suggested prominent growth inhibition of VBAV007 by biocontrol strains. They induce mycelial breakage of pathogen as evidenced by scanning electron micrographs. Greenhouse challenge experiments also suggested excellent capabilities of biocontrol agents to reduce disease severity in good measure even after exposure to high concentration (3.1 × 104 conidia/ml) of pathogenic spores. During in vivo field experiments 54.25 ± 3.55% disease severity was observed for untreated plants, whereas only 11.69 ± 1.25% and 15.22 ± 2.64% disease severities were noticed in plants treated with VBK1 and VBC7 respectively. Since biocontrol organisms have the potential to decrease the disease severity, they also help to maintain the good health as well as antimicrobial potential of Aloe vera plants.
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Bacterial soft rot disease of Aloe caused by heterogeneous genus Erwinia was reported from different parts of the world. In the recent past the genus underwent major taxonomic modifications. In the present study, four Aloe pathogenic bacterial strains isolated from India, The Netherlands and Yugoslavia have been compared. Different cultural, biochemical, physiological and pathological characters and protein/lipid profiles indicated that the strains belonged to two different genera, Pectobacterium and Dickeya. Species specific amplification of pel gene sequences also supported this. Phylogenetic analysis of rRNA gene (rDNA) sequence placed these Dickeya strains close to D. dieffenbachiae and D. zeae. On the other hand, phenotypic tests suggested these to be either of D. dadanti, D. dieffenbachiae and D. zeae. On the basis of pathogenicity of the test strains on Dieffenbachia leaves, these were placed in D. dieffenbachiae. The Yugoslavian strain was identified as P. carotovorum. Phenotypic tests, RFLP analyses deciphered variation among the same species. However, none of the six Aloe species tested in the study showed resistance against any of the evaluated bacterial strains.