Content uploaded by P. A. Poluboyarinov
Author content
All content in this area was uploaded by P. A. Poluboyarinov on May 03, 2019
Content may be subject to copyright.
Available via license: CC BY
Content may be subject to copyright.
14 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ
И БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ СОЕДИНЕНИЙ
УДК 546.23:577.15:615.9 DOI: 10.32362/2410-6593-2019-14-7-XX-YY
МЕТАБОЛИЗМ И МЕХАНИЗМ ТОКСИЧНОСТИ СЕЛЕНСОДЕРЖАЩИХ
ПРЕПАРАТОВ, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ДЛЯ КОРРЕКЦИИ ДЕФИЦИТА
МИКРОЭЛЕМЕНТА СЕЛЕНА
П.А. Полубояринов1,@, Д.Г. Елистратов2, В.И. Швец3
1Пензенский государственный университет архитектуры и строительства, г. Пенза,
440028, Россия
2ООО «Парафарм», г. Пенза 440033, Россия
3МИРЭА – Российский технологический университет (Институт тонких химических
технологий имени М.В. Ломоносова), Москва 119571, Россия
@ Автор для переписки, e-mail: ipoluboyarinovpavel@yandex.ru
Приведены обзор литературы и результаты собственных исследований, посвященных ме-
таболизму и механизму токсичности селенсодержащих препаратов: элементного селена,
селенита натрия, диацетофенонилселенида, селенопирана, эбселена, диметилдипиразо-
лилселенида и селенсодержащих аминокислот, используемых для коррекции дефицита се-
лена.
Элементный селен обладает труднорегулируемой и труднопрогнозируемой биодоступно-
стью, проникая через клеточные стенки, а не по транспортным каналам клетки. Селе-
нит натрия является наиболее токсичным, плохо совестимым с компонентами пищи и
малоуправляемым соединением селена. Ксенобиотик диацетофенонилселенид, в целом,
имеет схожий с селенитом натрия механизм метаболизма, взаимодействуя с тиолами,
например с восстановленным глутатионом, с образованием селеноводорода. Эбселен не
является биодоступным источником селена и поэтому малотоксичен. Считается, что
ксенобиотик селенопиран может элиминировать селен только в процессах ксенобиотиче-
ского обмена печени, однако, как показано в наших исследованиях – частично и в процессе
кислотно-катализируемого гидролиза. Отмечается малое число исследований, посвящен-
ных метаболизму малотоксичного ксенобиотика диметилдипиразолилселенида.
Токсичность избытка селенометионина определяется в первую очередь некорректным
включением в белки и жизненно важные ферменты, т.е. связана с изменением простран-
ственной структуры белка. Токсичность избытка метилселеноцистеина определяется,
по-видимому, отсутствием обменного пула в организме и быстрой генерацией селеноводо-
рода из метилселенола, который образуется при ферментативном расщеплении амино-
кислоты.
Также рассматривается концепция выбора оптимального донора микроэлемента селе-
на. По совокупности таких свойств, как полная физиологическая совместимость, низкая
токсичность, наличие обменного пула в организме, наличие антиоксидантных свойств и
простота производства, определен оптимальный донор селена – аминокислота селеноци-
стин.
Ключевые слова: селен, селенодефицит, метаболизм, токсичность, селеноцистин,
элементный селен, селенит натрия, селенометионин, диацетофенонилселенид, эбсе-
лен, селенопиран, диметилдипиразолилселенид, метилселеноцистеин.
CHEMISTRY AND TECHNOLOGY OF MEDICINAL COMPOUNDS
AND BIOLOGICALLY ACTIVE SUBSTANCES
15Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
METABOLISM AND MECHANISM OF TOXICITY OF SELENIUM- CONTAINING
SUPPLEMENTS USED FOR OPTIMIZING
HUMAN SELENIUM STATUS
P.A. Poluboyarinov1, @, D.G. Elistratov2, V.I. Shvets3
1Penza State University of Architecture and Construction, Penza 440028, Russia
2“Parafarm” Ltd, Penza 440033, Russia
3MIREA – Russian Technological University (M.V. Lomonosov Institute of Fine Chemical
Technologies), Moscow 119571 Russia
@Corresponding author e-mail: poluboyarinovpavel@yandex.ru
The work presents a review devoted to metabolism and toxicity mechanism of selenium containing
supplements: elemental selenium, sodium selenite, diacetophenonyl selenide, selenopyrane,
ebselen, dimethyl dipyrasolyl selenide and selenium containing amino acids, used for correction
of selenium deciency.
Elemental selenium penetrating through cell walls but not through transport channels demonstrates
poorly predicted and difcultly regulated bioavailability. Sodium selenate is known to be the most
toxic form of selenium in food. Metabolism of xenobiotic diacetophenonyl selenide resembles that
of sodium selenide ,reacts with thiols, for instance with reduced form of glutathione leading to a
formation of hydrogen selenide. Ebselen is not considered to be a well bioavailable form of selenium
and thus possesses low toxicity. Xenobiotic selenopyrane eliminates selenium only in processes
of xenobiotic liver exchange, and in our investigations- partially in acid-catalyzed hydrolysis.
Metabolism of xenobiotic dimethyl dipyrasolyl selenide with low toxicity is poorly investigated.
Toxicity of high doses of selenomethionine is determined by the possibility of incorporation in
proteins and vitally important enzymes with dramatic changes of protein quaternary structure.
Toxicity of high doses of methylselenocysteine seems to be connected apparently, by the lack of
an exchange pool in the body and quick regeneration of hydrogen selenide from methylselenol
which is formed as a result of enzymatic destruction of this amino acid.
Also the question of the most prospect selenium donor is discussed. Physiological compatibility,
low toxicity, the presence of exchangeable pool in the organism, antioxidantal properties and
simplicity of production indicate selenocystine as an optimal selenium donor.
Keywords: selenium, selenium deciency, metabolism, toxicity, selenocystine, elemental
selenium, sodium selenite, selenomethionine, diacetophenonyl selenide, ebselen, selenopyrane,
dimethyl dipyrasolyl selenide, methylselenocystine.
Селен – это микроэлемент с ярко выраженны-
ми каталитическими свойствами, формирующий
активные селенольные центры и входящий в состав
примерно 30 белков эукариотов [1]. На основе со-
отношения в геноме часто и редко встречающихся
протеинов выдвигается предположение о существо-
вании до 100 селенсодержащих белков [2]. В насто-
ящее время установлено, что селен входит в состав
глутатионпероксидаз четырех типов, трех йодтиро-
ниндейодиназ [3] и трех тиоредоксинредуктаз [4].
Селен участвует в регуляции функций иммун-
ной системы: стимулирует активность естественных
киллеров (ЕКК), повышает продукцию интерлейки-
нов (ИЛ-1 и ИЛ-2), усиливает клеточный и гумораль-
ный иммунные ответы, стимулирует фагоцитарную
функцию лейкоцитов и повышает реакцию лимфо-
цитов на различные митогены [5].
Выявлены антимутагенная и антиканцерогенная
активность селена в отношении ряда органических
веществ и таких металлов, как кадмий, ртуть, свинец
и др. [5–7].
Высокая биологическая активность органиче-
ских форм селена – аминокислот, их уникальная ан-
тиоксидантная активность, способность защиты от
онкологических, кардиологических и нейрогенных
заболеваний (болезнь Альцгеймера, болезнь Паркин-
сона) определяют важность исследования данных
соединений [8–10].
Содержание селена в растительной пище и в
первую очередь в хлебопродуктах варьирует в зави-
симости от содержания селена в почве той местно-
сти, где это растение произрастает. Поэтому дефицит
селена в пище человека, прежде всего, вызван низ-
ким содержанием данного микроэлемента в почве.
Очень низкое содержание селена в почве и зерне
отмечается для некоторых провинций Китая [11].
Низким геохимическим уровнем селена также отли-
чаются Швеция и Финляндия. В Российской Федера-
16 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
ции крайне низкие концентрации селена отмечаются
в почвах Читинской области, Бурятии и Хабаровско-
го края, а для многих областей страны характерен
«субоптимальный» уровень селена в почвах и, как
следствие, в пище человека [12, 13]. В целом, по дан-
ным Института питания РАМН, в России не менее
чем у 80% населения обеспеченность селеном ниже
оптимальной. Поэтому коррекция селенового стату-
са населения нашей страны представляется жизнен-
но необходимой.
Сегодня очевидным фактом является то, что ме-
таболизм органических и минеральных форм селена
в организме животных и человека тесно связан с их
биологической активностью и доступностью. Са-
мым сложным и не решенным до сих пор вопросом
является выбор оптимальной формы селена, исполь-
зуемой для коррекции селенового статуса человека,
которая бы сочетала целый ряд параметров:
- полная физиологическая совместимость (долж-
на проходить естественный путь от поступления в
организм с пищей, являясь ее природным компонен-
том, всасывания и дальнейшего метаболизма);
- низкая токсичность;
- наличие обменного пула в организме, не при-
водящего к изменению пространственной структуры
белков организма;
- наличие антиоксидантных свойств;
- совместимость с витаминами и другими ком-
понентами пищи.
Также важным является возможность широкого
внедрения и простота промышленного получения
оптимального носителя селена.
Целью нашей работы является определение оп-
тимального носителя селена из тех, которые приме-
няются для коррекции селенового статуса человека
или являются перспективными, с учетом выше пере-
численных требований.
Все основные, используемые сегодня для кор-
рекции селенодефицита селенсодержащие вещества
можно разделить на группы:
- неорганические соединения селена – элемен-
тарный селен, соли селеновой и селенистой кислоты
– селенит и селенат натрия (Na2SeO3, Na2SeO4,);
- продукты биотрансформации неорганических
соединений селена культурами дрожжей, водорос-
лей, растений (в основном содержат аминокислоты
селенометионин и селеноцистин в составе белков);
- селенсодержащие ксенобиотики (эбселен, се-
ленопиран, диацетофенонилселенид);
- индивидуальные аминокислоты, селенометио-
нин и селеноцистин, полученные путем химического
синтеза.
Во всех обобщающих схемах метаболических
путей микроэлемента селена [14, 15] центральным
метаболитом является селеноводород. При этом он
может быть образован как из неорганических соеди-
нений селена: элементного селена, селената и селе-
нита натрия (Na2SeO4, Na2SeO3) и восстановленного
глутатиона, так и ферментативно из селенсодержа-
щих аминокислот.
Селеноводород – наиболее токсичное соедине-
ние селена. В клетках присутствующий селеноводо-
род находится в основном в виде гидроселенид-ани-
она (HSe–).
Механизм токсичности избытка селеноводорода,
как и сероводорода, по литературным данным, сле-
дующий: инактивация металлсодержащих фермен-
тов, в первую очередь оксидаз (цитохромоксидазы,
каталазы, пероксидазы) [16, 17], и повреждение мо-
лекул ДНК за счет активных форм кислорода (АФК)
[18]. Считается, что реакция окисления селеноводо-
рода имеет сложную кинетику, которая указывает на
механизм образования свободнорадикальной цепи:
8HSe– + 4O2 = Se8 + 8OH–
Предполагаемые промежуточные продукты ре-
акции включают супероксид-ион, пероксид водорода
и полиселениды [19].
Образовавшийся селеноводород (гидроселени-
данион НSe–) может выделяться из организма (ка-
таболический путь), последовательно ферментатив-
но метилируясь с участием S-аденозилметионина
(SAM) до триметилселенония-иона – конечного про-
дукта метаболизма всех селеносодержащих соедине-
ний [20]. Этот путь обратим только на первой стадии
метилирования селена (метилселенол). Триметилсе-
леноний выводится из организма через почки с мо-
чой. Диметилселенид может выводиться с потом и
через легкие, придавая выделениям запах чеснока,
что обычно служит качественным критерием избыт-
ка селена. Во втором случае (анаболический путь)
селеноводород претерпевает последовательные фер-
ментативные превращения. Происходит его актива-
ция (фосфорилирование) селенофосфатсинтетазой с
образованием селенофосфата. Аминокислота серин
присоединяется к своей специфической транспорт-
ной рибонуклеиновой кислоте с образованием со-
ответствующего комплекса – серино-ацил-тРНК-а-
денилата. Затем селенофосфат ферментативно
присоединяется к комплексу серин-тРНК. Реакцию
катализирует фермент селеноцистеинсинтетаза. В
результате этой реакции образуется селеноцистеин
[21] (см. схему 3 на стр. ХХ).
Элементный (элементарный) селен. Элемент-
ный селен, как и сера, существует в нескольких ал-
лотропных модификациях: красный селен, состоя-
щий из молекул Se8; аморфный селен – коричневый
порошок; стеклообразный селен, тоже аморфный, и,
наконец, серый (или металлический) селен, не име-
ющий аналогов среди аллотропных модификаций
17Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
серы. Металлический селен – самая термодинами-
чески устойчивая форма.
Наиболее химически активной считается крас-
ная модификация элементного селена, она же, по-ви-
димому, является и самой биологически активной.
Элементный селен уже давно считается био-
логически инертным. Биологическая доступность
(в процентах от биодоступности Na2SeO3) у крыс
составляет 0.7% [22], у цыплят 7% [23], в первом
случае регистрируемый эффект – защита от некроза
печени, во втором – защита от экссудативного диа-
теза. Также следует отметить, что элементный селен
– одна из наименее токсичных форм элемента (см.
табл. 2 в конце обзора, стр. YY).
Метаболизм элементного селена с учетом его
полной нерастворимости в биологических средах
может проходить только гетерофазно, т. е., по сути,
это прямой синтез селеноводорода из элементов:
Se + 2[H] = H2Se
При определенных условиях тиолы, такие, как
восстановленный глутатион (GSH), дитиотреитол
(DTT), могут восстанавливать коллоидный селен с
генерацией селеноводорода [24]:
Se + 2GSH = H2Se + GS–SG
Также известно о восстановлении элементного
селена до селеноводорода (селенида) у бактерий [25].
Очевидно, что скорость данной гетерофазной
реакции напрямую будет зависеть от площади
поверхности твердой фазы элементного селена.
Поэтому сегодня, для восполнения дефицита се-
лена, применяется коллоидный элементный селен
с размером частиц до 100 нм – это так называе-
мый наноселен (нанокрасный элементный селен).
Размер частиц влияет на клеточное потребление
наноселена – поглощение in vitro частиц размером
100 нм было в 2.5 и 6 раз выше по сравнению с
поглощением частиц размером 1000 и 10000 нм,
соответственно [26].
Отмечается способность наноселена связывать
свободные радикалы in vitro и повышать активность
селензависимых ферментов, таких, как глутатионпе-
роксидазы, тиоредоксинредуктазы и S-трансферазы
глутатиона [27].
В другом исследовании [285] наноселен влиял
на содержание IgM, глутатиона и малонового ди-
альдегида в сыворотке, ингибирование свободных
радикалов в печени и активность глутатионперок-
сидазы в мышцах у цыплят-бройлеров, получавших
0.20 мг/кг селена.
Ожидаемо, что из-за большей поверхности фазы
у наноселена, а, как следствие, большей скорости
реакции генерации селеноводорода, его токсичность
значительно выше, чем у простого элементного се-
лена [26] (см. табл. 2). С другой стороны, антиокси-
дантная, антирадикальная активность и влияние на-
носелена на активность селензависимых ферментов,
на наш взгляд, связана с образованием сильного вос-
становителя – селеноводорода, но никак не собствен-
но элементного селена.
Вероятнее всего, что частицы наноселена могут
проникать в клетки трансцеллюлярным транспор-
том (через клеточные стенки). Трансцеллюлярный
транспорт начинается с эндоцитоза (пиноцитоза
или макропиноцитоза). Поскольку клеточная мем-
брана состоит из липидов, то липофильные частицы
наноселена будут иметь высокую эффективность
поглощения.
Поведение и трансформация наночастиц се-
лена в живых системах, таких, как микроорганиз-
мы, описаны в работе [30]. Отмечается, что 90%
элементного селена были метаболически транс-
формированы в органические соединения селена,
в основном в селеноцистин и в меньшей степени
в селенометионин. Стабилизаторы суспензии эле-
ментного селена также оказывали влияние как на
эффективность поглощения, так и на метаболизм
элементного селена.
Проблема применения данной формы селена
заключается в его труднорегулируемой и трудно-
прогнозируемой биодоступности, которая зависит
от размера частиц, покольку элементный селен
проникает в клетки, растворяясь в липидах кле-
точной мембраны, а не через транспортные кана-
лы клетки, что является характерным для ионов и
аминокислот.
Селенит и селенат натрия. Неорганические со-
единения – селенат, селенит натрия вступают в не-
ферментативную реакцию с восстановленным глу-
татионом (GSH) с образованием селенодиглутатиона
(GS–Se–SG) [31, 32]:
4GSH + Na2SeO3 = GS–Se–SG + GS–SG + 2NaOH + Н2О
Согласно общей схеме окислительно-восста-
новительной реакции, при избытке GSH селеноди-
глутатион легко восстанавливается с образованием
селеноперсульфида (GSSeH), селеноводорода. Селе-
новодород окисляется до элементного селена [33]:
18 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
Наши исследования показали, что интермедиат
селенодиглутатион присутствует в реакционной сме-
си в незначительных количествах [34], нестабилен
[35] и не может служить полноценным обменным
пулом (буфером) для организма.
При избыточном поступлении в организм селе-
нита натрия образуется высокотоксичный селеново-
дород (гидроселенид-анион), а перечисленные выше
пути его утилизации ограничены [36]. Также селенит
натрия является прооксидантом и не совместим с ви-
таминами-антиоксидантами, например, с аскорбино-
вой кислотой [37], что может вызывать оксидатив-
ный стресс.
Таким образом, селенит натрия является наибо-
лее токсичным (см. табл. 2), малоуправляемым сое-
динением селена, который используется для коррек-
ции селенодефицита.
Диацетофенонилселенид (ДАФС-25, Селено-
бел, 1,5-дифенил-3-селенапентадион-1,5), по нашим
исследованиям [38, 39], в целом, имеет схожий с се-
ленитом натрия механизм метаболизма, взаимодей-
ствуя с тиолами, например, с восстановленным глу-
татионом (GSH).
На первом этапе образуются следующие полу-
продукты – ацетофенон и S-(ацетофенилселенил)
глутатион:
Следующим этапом является образование еще
одной молекулы ацетофенона и селенодисульфида
глутатиона:
Далее из селенодисульфида при избытке восста-
новленного глутатиона образуется селеноперсуль-
фид глутатиона и дисульфид глутатиона. Конечной
стадией является образование селеноводорода:
Образовавшийся селеноводород как сильный
восстановитель может быть окислен как кислородом
воздуха, так и дисульфидом глутатиона до элемент-
ного селена.
Подобная реакция с образованием элементного
селена идет и в клетках растений [40] (рис. 1).
б
а
Рис. 1. Образование гранул элементного селена
в клетках корней проростков кукурузы
(увеличение 100×): а – контроль; б – после добавления
диацетофенонилселенида в питательную среду.
При добавлении в раствор Кнопа с диацетофе-
нонилселенидом восстановленного глутатиона или
цистеина образование элементного селена происхо-
дит в растворе, а не в клетках.
В качестве тест-объекта для изучения механизма
взаимодействия диацетофенонилселенида с сульфги-
дрильными группами был выбран гриб-микромицет
Aspergillus niger. Отфильтрованные конидии гриба
в отличие от мицелия содержат малое количество
сульфгидрильных групп и более чувствительны к дей-
ствию препаратов, которые их ингибируют (рис. 2).
19Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
а б в
Рис. 2. Концентрация сульфгидрильных групп (мМоль) в конидиях
(0 (нулевые) сутки) и растущем мицелии гриба A. niger.
Таким образом, концентрация в культуре A. niger
сульфгидрильных групп в течение 3 суток возраста-
ет в 7.2 раза, а, следовательно, также возрастает и
устойчивость к диацетофенонилселениду.
Диацетофенонилселенид в концентрации 10-2 г/л
полностью подавляет прорастание конидий, при
этом добавление в питательную среду цистеина сни-
мает эффект ингибирования (рис. 3).
Рис. 3. Прорастание конидий гриба A. niger в сахарозной питательной среде:
а – контроль; б – отсутствие прорастания конидий A. niger в среде с диацетофенонилселенидом (10-2 г/л);
в – прорастание конидий в питательной среде с диацетофенонилселенидом (10-2 г/л) и цистеином (0.1%).
Взаимодействие диацетофенонилселенида с вос-
становленным глутатионом представляет собой клас-
сический пример обезвреживания ксенобиотика путем
нуклеофильного замещения, в результате которого об-
разуется селеноводород и ацетофенон. Промежуточны-
ми продуктами реакции являются как S-(ацетофенил-
селенил)глутатион, так и селенодисульфид глутатиона
[38], что дает возможность сделать предположение о
наличии некоторого обменного пула для диацетофено-
нилселенида в биологических средах.
Токсичность диацетофенонилселенида намного
ниже, чем у селенита натрия (см. табл. 2), несмотря
на сходный механизм образования селеноводорода.
По-видимому, это связано с меньшим содержанием
селена в молекуле диацетофенонилселенида по срав-
нению с селенитом и наличием обменного пула в
виде промежуточных продуктов реакции.
Эбселен (2-фенилбензоселеназол-1,2-3(2н)-он) – сое-
динение, копирующее работу фермента глутатионперокси-
дазы в присутствии восстановленного глутатиона [41].
Эбселен является фармакологическим препара-
том, не зарегистрированным в РФ, и используется в
качестве лекарственного средства в Германии.
В работе [42] было проведено исследование, кото-
рое показало, что реакции фермента глутатионперокси-
дазы и эбселена с тиолами, пероксидами идентичны.
Эбселен (a) вступает в реакцию с восстановленным
глутатионом (GSH) с образованием селенилсульфида (b)
(схема 1). Селенилсульфид взаимодействует со второй
молекулой восстановленного глутатиона с образованием
селенола (c). И, наконец, селенол реагирует с Н2О2 или ор-
ганическими пероксидами (ROOH) с образованием H2O и
селеновой кислоты эбселена (d), которая, после отщепле-
ния молекулы H2O, превращается в эбселен [43].
20 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
Схема 1. Антиоксидантная активность эбселена.
Возможность реакции между эбселеном и сульф-
гидрильными группами белков делает его мощным
модулятором ферментов, которым для нормального
функционирования требуются остатки цистеина.
Избыток эбселена ингибирует активность мно-
жества ферментов, участвующих в различных биоло-
гических процессах, – таких, как алкогольдегидроге-
наза, липоксигеназы и многие другие (табл. 1).
Таблица 1. Ферменты, ингибируемые эбселеном
Ферменты Действие эбселена Литература
Алкогольдегидрогеназа и металлотионеин Разрывает участок белка, удерживающий цинк [44]
Липоксигеназы Изменение формы лигандов атома железа [45, 46]
NO-Синтазы Реагирует с критически важной сульфгидрильной
группой [47]
НАДФH-оксидаза (NOX) Замедляет сборку регуляторных субъединиц NOX2 [48]
Натрий-калиевая аденозинтрифосфатаза Реагирует с критически важными сульфгидрильными
группами [49]
Лактатдегидрогеназа Реагирует с сульфгидрильными группами [50]
Пероксидаза хрена Реагирует с сульфгидрильными группами [51]
В большинстве случаев эбселен реагирует с сульф-
гидрильными группами ферментов, но ингибирование
может быть полностью нивелировано добавлением вос-
становителей, таких как дитиотреитол (DTT) [52–54].
Эбселен так же, как и диацетофенонилселенид,
ингибирует прорастание конидий A. niger, а ингиби-
рование снимается избытком тиолов.
В то же время эбселен не является биодоступным
источником селена [55], а в жировых тканях он присут-
ствует в виде метаболитов, которые при действии GSH
легко восстанавливаются до исходного эбселена [56].
Таким образом, ксенобиотик эбселен обратимо
взаимодействует с тиолами, с чем связана его актив-
ность как модулятора ферментов, без образования
селеноводорода, и является наименее токсичным
соединением из-за биологической недоступности се-
лена, вследствие чего эбселен не может служить его
источником для организма.
Селенопиран (СП-1, 9-фенил-сим-нона-
гидро-10-селенаантрацен) – широко применяется в
качестве малотоксичного источника селена в биологиче-
ски активных добавках (Селен-Актив, Селен ЕС и др.).
Выраженная антиоксидантная активность селе-
нопирана в отношении свободных радикалов, актив-
ных форм кислорода и в разрушении гидропереки-
сей была показана в исследовании [54]:
21Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
Считается, что селенопиран может элиминиро-
вать селен только в процессах ксенобиотического
обмена печени. Электрофоретическое исследование
белков микросомальной фракции позволило уста-
новить, что препарат специфически индуцирует
изоформу цитохрома Р-450, находящуюся в области
белков с молекулярной массой 49 кДа [58]. Именно
данная форма цитохрома, как полагают авторы, от-
ветственна за метаболизацию 9-фенил-сим-нонаги-
дро-10-селенаантрацена. В работе [59] установлено
что 2,4,6-трифенил-4Н-селенопиран вследствие ин-
дукции цитохрома Р-450 увеличивает токсичность и
иммунотоксичность тетрахлорметана и снижает дан-
ные свойства карбофоса.
В наших исследованиях показано, что кислот-
но-катализируемый процесс гидролиза селенопира-
на до селеноводорода идет лишь частично (схема 2)
[60]. А количество выделившегося селеноводорода
(элементного селена) находится в прямой зависимо-
сти от рН раствора, то есть кислая среда, в сравнении
со щелочной, способствует несколько лучшему про-
хождению гидролиза селенопирана.
Схема 2. Кислотно-катализируемый гидролиз селенопирана.
В целом, селенопиран не имеет установлен-
ных путей метаболизма, что требует дальнейших
исследований, а малая токсичность ксенобиотика и
его ценность как источника селена, на наш взгляд,
напрямую связана с затруднением элеминирования
микроэлемента из молекулы гетероцикла. Это кос-
венно подтверждает исследование [61], где показано
отсутствие быстрого изменения селенового статуса в
эритроцитах и сыворотке крови у спортсменов, при-
нимавших селенопиран.
Диметилдипирозолилселенид (Селекор,
Селедант, ДМДПС, 4,4-ди[3-(5-метилпиразолил)]
селенид) – представляет собой органическую форму
селена с содержанием действующего вещества 34.7%.
Диметилдипиразолилселенид относится к ма-
лоопасным (см. табл. 2), слабокумулирущим веще-
ствам, его коэффициент кумуляции равен 5.42, он не
обладает кожно-раздражающим, аллергенным и му-
тагенным действием [62].
Диметилдипиразолилселенид обладает антиок-
сидантными свойствами – при его введении проявля-
ется тенденция к снижению концентрации малоно-
вого диальдегида (МДА) и стабилизация активности
глутатионпероксидазы, снижается содержание об-
щих липидов и холестерина в крови [63]. Также от-
мечается иммуномодулирующее действие и нейро-
протекторный эффект ДМДПС.
К сожалению, в литературе отсутствуют дан-
ные о механизме метаболизма диметилдипира-
золилселенида и накоплении селена в сыворотке
крови и тканях животных после введения препара-
та. Можно лишь предположить, что, по аналогии с
эбселеном, очень низкая токсичность диметилди-
пиразолилселенида связана с отсутствием биодо-
22 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
ступного для организма селена, т. е. с отсутствием
механизма, позволяющего элиминировать селен из
молекулы вещества.
Таким образом, из всех ксенобиотиков только ди-
ацетофенонилселенид имеет основной путь метаболиз-
ма, механизм которого мало отличается от взаимо-
действия селенита натрия с тиолами. Но и более высокая
токсичность диацетофенонилселенида, в отличие от эб-
селена, селенопирана и диметилдипиразолилселенида,
связана с генерацией селеноводорода (схема 3).
Схема 3. Общая схема метаболизма селенсодержащих ксенобиотиков
и селенит- и селенат-ионов.
Таким образом, применение селенсодержа-
щих ксенобиотиков – эбселена, диметилдипира-
золилселенида, селенопирана оправдано, в пер-
вую очередь, в качестве биологически активных
веществ – обладающих антимикробным действи-
ем, антиоксидантов, иммуномодуляторов. Непри-
годны как источник селена эбселен и, вероятно,
диметилдипиразолилселенид. Частично пригоден
как источник селена, при длительном приеме ве-
щества, селенопиран, но наиболее доступен селен
из диацетофенонилселенида.
Селенометионин (Sem) – селеносодержащая ами-
нокислота, является важным пищевым источником се-
лена. Метаболизм аминокислоты селенометионина в
гомогенатах печени крыс проходит через транс-сульфи-
рующий путь в селеноцистеин [64], а уже селеноцисте-
ин расщепляется ферментом селеноцистеин-β-лиазой
в селеноводород, или, точнее, в гидроселенид-анион
(HSe–) [65, 66]. Другой путь метаболизма селеномети-
онина заключается в его расщеплении γ-лиазой до ме-
тилселенола (MeSeH), хотя эффективность этого пути
не определённа [67–69] (схема 4).
Селенометионин у дрожжей неконтролируемо
включается в белки вместо метионина, минуя ге-
нетическую регуляцию [70]. Некорректное вклю-
чение селенометионина в белки и жизненно важ-
ные ферменты может изменять пространственную
структуру белка [71, 72] и сопровождаться токси-
козом [73, 74].
По всей видимости, именно некорректное вклю-
чение селенометионина в белки определяет его ток-
сичность (см. табл. 2).
Метаболический путь ферментативного образо-
вания метилселенола из селенометионина, по-види-
мому, лимитирован, а реакции транссульфирования
идут с образованием менее токсичного селеноцисте-
ина/селеноцистина (см. табл. 2).
Селеноцистеин/селеноцистин (Sec/Sec-Sec) –
21-ая протеиногенная аминокислота, которую на ма-
тричной РНК кодирует терминирующий кодон UGA
при условии, что за ним следует особая стимули-
рующая последовательность нуклеотидов [75]. Это
самое значимое природное соединение селена, а все
остальные – найденные в природных источниках –
либо лежат на пути его биосинтеза (интермедиаты),
либо являются его метаболитами.
Основной путь метаболизма селеноцистина
представлен на схеме 5 [76].
23Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
Схема 4. Общая схема метаболизма селенсодержащих аминокислот.
Схема 5. Путь метаболизма аминокислоты селеноцистина.
После перорального введения животным се-
леноцистин (Sec–Sec) взаимодействует с восста-
новленным глутатионом с образованием селено-
цистеин-глутатиона селеносульфида (Sec–SG).
Отмечается, что данная реакция проходит в тонком
кишечнике [77, 78]. Наличие Seс–SG определяется
хроматографически [34].
На втором этапе Seс–SG неферментативно вос-
станавливается до селеноцистеина (Sec) избытком
GSH в печени. Было также признано, что Sec–SG мо-
жет ферментативно метаболизирован в Sec с участи-
ем глутатионредуктазы в присутствии НАДФН. И
только на третьем этапе L-селеноцистеин расщепля-
ется селеноцистеин-β-лиазой (классификационный
номер фермента 4.4.1.16) до селеноводорода и ами-
нокислоты аланина [79]. Таким образом, в отличие
от неорганических форм селена, у L-селеноцистеина
присутствует обменный пул в виде Sec–SG, а про-
цесс образования гидроселенид-аниона происходит
только ферментативно.
Считается, что только полученный из селеново-
дорода и серина селеноцистеин способен включаться
в селеносодержащие белки у позвоночных [80], од-
нако имеются данные о возможности прямого вклю-
чения селеноцистеина в белки эритроцитов без раз-
ложения до селеноводорода [81].
Селеноцистин – один из самых мощных эндо-
генных антиоксидантов и может существовать как в
окисленной (диселенидной), так и в восстановлен-
ной (селенильной) формах (схема 6).
Реакция селеноцистина с тиолами также имити-
рует работу глутатионпероксидазы, как и аналогич-
ная реакция эбселена. Важным отличием является
возможность ферментативного расщепления ами-
нокислоты и реутилизация селена в биологических
средах.
24 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
Токсичность рацематической смеси D- и L-се-
леноцистина составила 35.8 мг/кг (ЛД50 35.8 мг/кг,
мыши, перорально), что существенно ниже, чем у
селенометионина (ЛД50 4.3 мг/кг) и селенита натрия
(ЛД50 3.5 мг/кг) [82]. По другим данным, ЛД50 селе-
ноцистина составила 76 мг/кг (мыши, перорально)
[83]. Для крыс при внутрибрюшинном и подкожном
способе введения токсичность аминокислоты суще-
ственно выше: 8.46 и 13 мг/кг соответственно [84].
В наших исследованиях острую токсичность L-се-
леноцистина изучали на лабораторных белых мышах, на
основании вычисленного по «накопленным частотам»
процента смертельных исходов была построена харак-
теристическая кривая по методу Беренса [85] (рис. 4).
Схема 6. Антиоксидантная активность селеноцистина.
Рис. 4. Характеристическая кривая токсичности L-селеноцистина.
Исходя из данной характеристической кривой,
LD50 L-селеноцистина = 51.7 мг/кг. Полученные ре-
зультаты исследования острой токсичности синтези-
рованного L-селеноцистина входят в диапазон значе-
ний LD50, ранее приведенных в литературе: 35.8–76
мг/кг. Согласно ГОСТ 12.1.007-76, L-селеноцистин
относится ко 2-му классу опасности, он в 12-15 раз ме-
нее токсичен, чем селенометионин и селенит натрия.
Низкая токсичность L-селеноцистина, по-види-
мому, связана с наличием обменного пула, который
образует эта аминокислота с восстановленным глу-
татионом, тиолами и ферментативно контролируе-
мого селеноцистеин-β-лиазой образования гидросе-
ленид-аниона.
Метилселеноцистеин (MeSec, Se-метил-L-се-
леноцистеин) – является метильным производным
аминокислоты селеноцистеина, но, однако, име-
ет метаболический путь, отличный от метаболиз-
ма селенометионина и селеноцистеина, поскольку
его основным метаболитом является метилселенол
(CH3SeH), который образуется при расщеплении
ферментом β-лиазой [86, 87].
Метилселеноцистеин обладает выраженной про-
тивоопухолевой активностью благодаря основному
метаболиту – метилселенолу, который индуцирует
аппотоз раковых клеток [88, 89].
Длительный прием метилселеноцистеина крыса-
ми приводит к накоплению селена в почках, печени
25Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
и семенниках, синтезу селенопротеинов и экскреции
иона триметилселенония в моче, в соответствии с
преобладающей моделью метаболизма аминокисло-
ты (см. схему 4) [90].
Метилселеноцистеин обладает относительно вы-
сокой токсичностью (табл. 2), несмотря на образова-
ние малотоксичного метилселенола (LD50 > 2000 мг/кг)
[91], который, однако, может ферментативно демети-
лироваться до селеноводорода. В целом, анализируя
данные таблицы 2, можно сделать вывод о том, что
токсичность метилселеноцистеина обусловлена гене-
рацией селеноводорода и отсутствием возможности
образовывать промежуточные соединения с тиолами,
формируя «обменный пул» аминокислоты.
Название вещества Класс
Неферментативное взаимодействие
с GSH и др. тиолами с образованем H2Se
Ферментативное образование H2Se
Ферментативное образование CH3SeH
Образование промежуточных продуктов
с GSH и др. тиолами («тиоловый буфер»)
Антиоксидантная активность
Прямое встраивание молекулы
в белки организма
Токсичность, мг/кг
Объект (способ введения – орально)
Элементный селен Элементная форма ± - - - - - 6700 [92] крысы
Элементный наноселен Элементная форма + - - - - - 113 [27] мыши
Селенит натрия Неорганическая соль + - - ± - - 3.50 [82] мыши
Диацетофенонилселенид Ксенобиотик + - - +- - 44.85 [93] крысы
Эбселен Ксенобиотик - - - + + -6810 [94] мыши
Селенопиран Ксенобиотик - - - - +-1337 [57] мыши
Диметилдипирозолилселенид Ксенобиотик - - - - +-5800 [62] мыши
Селеноцистин Аминокислота -+-+ + -35-51.7- 76.0
[82, 83]
мыши
Метилселеноцистеин Аминокислота - - +-+-9.26–12.6
[90]
мыши
Селенометионин Аминокислота - - ± - + + 4.3 [82] мыши
Таблица 2. Основные характеристики селенсодержащих препаратов
Выводы
Анализ литературных данных и наших исследо-
ваний позволяет сделать следующие выводы:
- низкая токсичность ксеноботиков – селено-
пирана, эбселена и диметилдипиразолилселенида
связана с отсутствием в организме прямого пути об-
разования селеноводорода (за исключением диацето-
фенонилселенида, намного более токсичного);
- обменный пул в организме у селенсодержащих
аминокислот может быть образован за счет ошибоч-
ного встраивания в белки как у селенометионина (что
увеличивает токсичность), так и за счет образования
селено-сульфидных связей, как, например, у селено-
цистина (снижает токсичность). Наличие обменного
пула снижает токсичность вещества и, наоборот, по-
вышает токсичность при его отсутствии, как, напри-
мер, у метилселеноцистеина, селенита натрия;
- полной физиологической совместимостью обла-
дают только L-аминокислоты: селенометионин и селе-
ноцистеин / метилселеноцистеин, так как они проходят
естественный путь от поступления в организм, всасы-
вания, дальнейшего ферментативного метаболизма и
являются биодоступным источником селена;
- частично физиологически совместимы эле-
ментный селен, его неорганические соли и ксено-
биотик диацетофенонилселенид, их метаболизм
неферментативный (обусловлен взаимодействием с
тиолами) и слабо регулируется организмом;
- малосовместимы ксенобиотики эбселен и ди-
метилдипиразолилселенид, не являющиеся источни-
ками биодоступного селена, в меньшей степени селе-
нопиран, имеющий гидролизный и/или цитохромный
путь метаболизма.
В целом, совокупность таких свойств, как пол-
ная физиологическая совместимость, низкая токсич-
26 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
ность, наличие обменного пула в организме и нали-
чие антиоксидантных свойств, делает аминокислоту
L-селеноцистин самым перспективным средством
восполнения дефицита селена в пище человека и ра-
ционов животных.
К достоинствам аминокислоты L-селеноцисти-
на можно отнести доступность и крупнотоннажное
производство исходных веществ, доступность и
низкая стоимость реагентов, низкую энергоемкость
процесса, высокие выходы, возможность получения
только L-изомера селеноцистина, простоту выде-
ления (фильтрация), стабильность при хранении и
низкую токсичность целевого продукта, несложное
аппаратное оформление процесса – всё это позволя-
ет обосновать целесообразность и возможность про-
мышленной реализации процесса.
Список литературы:
1. Behn D., Weiss-Nowak C., Kalcklösch M.,
Westphal C., Gessner H., Kyriakopoulos A. Studies on
the distribution and characteristics of new mammalian
selenium-containing proteins // Analyst. 1995. V. 120.
№ 3. Р. 823–825.
2. Burk R.F., Hill K.E. Regulation of selenoproteins
// Annu. Rev. Nutr. 1993. № 13. Р. 65–81.
3. Berry M.J., Larsen P.R. The role of selenium in
thyroid hormone action // Endocr Rev. 1992. V. 13. № 2.
Р. 207–219.
4. Sun Q.A., Wu Y., Zappacosta F., Jeang K.T., Lee
B.J., Hateld D.L., Gladyshev V.N. Redox regulation
of cell signaling by selenocysteine in mammalian
thioredoxin reductases // J. Biol. Chem. 1999. V. 274.
№ 35. P. 24522–24530.
5. Кудрин А.В., Скальный А.В., Жаворонков
А.А. Скальная М.Г., Громова О.А. Иммунофармако-
логия микроэлементов. М.: Изд-во КМК, 2000. 537 с.
6. Andersen O., Nielsen J.B. Eects of simultaneous
low-level dietary supplementation with inorganic and
organic selenium on whole-body, blood, and organ levels
of toxic metals in mice // Environ. Health Perspect. 1994.
V. 102. № 3. P. 321–324.
7. Selamoglu Z. Selenium compounds for fish
health: An update // J. Survey in Fisheries Sci. 2018.
V. 4. № 2. P. 1–4.
8. Fairweather-Tait S.J., Bao Y., Broadley M.R.,
Collings R., Ford D., Hesketh J.E., Hurst R. Selenium
in human health and disease // Antioxidants & Redox
Signaling. 2011. V. 14. № 7. P. 1337–1383.
9. Zhao M., Hou Y., Fu X., Li D., Sun J., Fu X.,
Wei Z. Selenocystine inhibits JEG-3 cell growth in vitro
and in vivo by triggering oxidative damage-mediated
S-phase arrest and apoptosis // J. Can. Res. Ther. 2018.
V. 14. № 7. P. 1540–1548.
10. Hori E., Yoshida S., Fuchigami T., Haratake
M., Nakayama M. Cardiac myoglobin participates in the
metabolic pathway of selenium in rats // Metallomics.
2018. V. 10. № 4. P. 614–622.
11. Bedwal R.S., Nair N., Sharma M.P., Mathur
R.S. Selenium – Its biological perspectives // Med.
Hypotheses. 1993. № 41. P. 150–159.
12. Голубкина Н.А., Парфенова Е.О., Решетник
Л.А. Потребление селена населением Иркутской об-
ласти // Вопросы питания. 1998. № 4. С. 24–26.
References:
1. Behn D., Weiss-Nowak C., Kalcklösch M.,
Westphal C., Gessner H., Kyriakopoulos A. Studies on
the distribution and characteristics of new mammalian
selenium-containing proteins. Analyst. 1995; 120(3):
823-825.
2. Burk R.F., Hill K.E. Regulation of selenoproteins.
Annu. Rev. Nutr. 1993; 13: 65-81.
3. Berry M.J., Larsen P.R. The role of selenium
in thyroid hormone action. Endocr. Rev. 1992; 13(2):
207-219.
4. Sun Q.A., Wu Y., Zappacosta F., Jeang K.T., Lee
B.J., Hateld D.L., Gladyshev V.N. Redox regulation
of cell signaling by selenocysteine in mammalian
thioredoxin reductases. J. Biol. Chem. 1999; 274(35):
24522-24530.
5. Kudrin A.V., Skalnyj A.V., Zhavoronkov A.A.,
Skalnaya M.G., Gromova O.A. Immunopharmacology
of trace elements. Moscow: KMK Publ., 2000. 537 p.
(in Russ.)
6. Andersen O., Nielsen J. B. Eects of simultaneous
low-level dietary supplementation with inorganic and
organic selenium on whole-body, blood, and organ levels
of toxic metals in mice. Environ. Health Perspect. 1994;
102(3): 321-324.
7. Selamoglu Z. Selenium compounds for sh
health: An update. J. Survey in Fisheries Sciences. 2018;
4(2): 1-4.
8. Fairweather-Tait S.J., Bao Y., Broadley M.R.,
Collings R., Ford D., Hesketh J.E., Hurst R. Selenium
in human health and disease. Antioxidants & Redox
Signaling. 2011; 14(7): 1337-1383.
9. Zhao M., Hou Y., Fu X., Li D., Sun J., Fu X.,
Wei Z. Selenocystine inhibits JEG-3 cell growth in vitro
and in vivo by triggering oxidative damage-mediated
S-phase arrest and apoptosis. J. Can. Res. Ther. 2018;
14(7): 1540-1548.
10. Hori E., Yoshida S., Fuchigami T., Haratake
M., Nakayama M. Cardiac myoglobin participates in
the metabolic pathway of selenium in rats. Metallomics.
2018; 10(4): 614-622.
11. Bedwal R.S., Nair N., Sharma M.P., Mathur R.S.
Selenium – Its biological perspectives. Med. Hypotheses.
1993: 41: 150-159.
12. Golubkina N.A., Parfenova E.O., Reshetnik L.A.
Selenium consumption by the population of the Irkutsk
27Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
13. Голубкина Н.А., Синдирева А.В., Зайцев
В.Ф. Внутрирегиональная вариабельность селеново-
го статуса населения // Юг России: экология, разви-
тие. 2017. Т. 12. № 1. С. 107–127.
14. Sunde R.A. Selenium / In: Present Knowledge
in Nutrition / Eds. B.A. Bowman, R.M. Russell. 9th Ed.
Washington, DC, USA: ILSI Press, 2006. P. 480–497.
15. Swanson C.A., Patterson B.H., Levander O.A.
Human 75Se selenomethionine metabolism: a kinetic
model // Am. J. Clin. Nutr. 1991. V. 54. № 5. P. 917–926.
16. Cooper C.E., Brown G.C. The inhibition
of mitochondrial cytochrome oxidase by the gases
carbon monoxide, nitric oxide, hydrogen cyanide
and hydrogen sulfide: Chemical mechanism and
physiological significance // J. Bioenerg. Biomembr.
2008. V. 40. № 5. P. 533–539.
17. Dorman D.C., Moulin F.J., McManus B.E.,
Mahle K.C., James R.A., Struve M.F. Cytochrome
oxidase inhibition induced by acute hydrogen sulde
inhalation: correlation with tissue sulde concentrations
in the rat brain, liver, lung, and nasal epithelium //
Toxicol Sci. 2002. V. 65. № 1. P. 18–25.
18. Peyroche G., Saveanu C., Dauplais M., Lazard
M., Beuneu F., Decourty L., Malabat C., Jacquier A.,
Blanquet S., Plateau P. Sodium selenide toxicity is
mediated by O2-dependent DNA dreaks // PLoS ONE.
2012. V. 7. № 5. P. 1–10.
19. Nuttall K.L., Allen F.S. Kinetics of the reaction
between hydrogen selenide ion and oxygen // Inorg.
Chim. Acta. 1984. № 91. P. 243–246.
20. Nakamuro K., Okuno T., Hasegawa T.
Metabolism of selenoamino acids and contribution of
selenium methylation to their toxicity // J. Health Sci.
2000. V. 46. № 6. P. 418–421.
21. Suzuki K.T. Metabolomics of selenium: Se
metabolites based on speciation studies // J. Health Sci.
2005. V. 51. № 2. Р. 107–114.
22. Cantor А.Н., Seott M.F., Noguehi Т. Biological
availability of selenium in feedstus and selenium
compounds for prevention of exudative diathesis in
chicks // J. Nutr. 1975. V. 105. Р. 96–105.
23. Schwarz К., Foltz С.М. Factor 3 activity of
selenium compounds // J. Biol. Chem. 1958. V. 233.
Р. 245–251.
24. Nuttall K.L., Fritz S.A. Hydrogen selenide ion
and colloidal selenium in the catalytic oxidation of thiols
// Inorg. Chim. Acta. 1984. V. 93. № 2. P. 85–88.
25. Herbel M.J., Blum J.S., Oremland R.S., Borglin
S.E. Reduction of elemental selenium to selenide:
Experiments with anoxic sediments and bacteria that
respire Se-oxyanions // Geomicrobiology J. 2003. V. 20.
P. 587–602
26. Desai M.P., Labhasetwar V., Walter E., Levy R.J.,
Amidon G.L. The mechanism of uptake of biodegradable
microparticles in Caco-2 cells is size dependent // Pharm.
region. Voprosy pitaniya (Nutrition Issues). 1998; 4: 24-
26. (in Russ.)
13. Golubkina N.A., Sindireva A.V., Zaitsev V.F.
Intraregional variability of population selenium status.
Yug Rossii: ekologiya i razvitie (South of Russia: Ecology
and Development). 2017; 12(1): 107-127. (in Russ.)
14. Sunde R.A., Bowman B.A., Russell R.M.
Selenium. In: Present Knowledge in Nutrition, 9th Ed.:
Washington, DC, USA: ILSI Press, 2006: 480-497.
15. Swanson C.A., Patterson B.H., Levander O.A.
Human 75Se selenomethionine metabolism: A kinetic
model. Am. J. Clin. Nutr. 1991; 54(5): 917-926.
16. Cooper C.E., Brown G.C. The inhibition
of mitochondrial cytochrome oxidase by the gases
carbon monoxide, nitric oxide, hydrogen cyanide
and hydrogen sulfide: Chemical mechanism and
physiological significance. J. Bioenerg. Biomembr.
2008; 40(5): 533-539.
17. Dorman D.C., Moulin F.J., McManus B.E.,
Mahle K.C., James R.A., Struve M.F. Cytochrome
oxidase inhibition induced by acute hydrogen sulde
inhalation: Correlation with tissue sulde concentrations
in the rat brain, liver, lung, and nasal epithelium. Toxicol
Sci. 2002; 65(1): 18-25.
18. Peyroche G., Saveanu C., Dauplais M., Lazard
M., Beuneu F., Decourty L., Malabat C., Jacquier A.,
Blanquet S., Plateau P. Sodium selenide toxicity is
mediated by O2-dependent DNA breaks. PLoS ONE.
2012; 7(5): 1-10.
19. Nuttall K.L., Allen F.S. Kinetics of the reaction
between hydrogen selenide ion and oxygenю. Inorg.
Chim. Acta. 1984; 91: 243-246.
20. Nakamuro K., Okuno T., Hasegawa T.
Metabolism of selenoamino acids and contribution of
selenium methylation to their toxicity. J. Health Sci.
2000; 46(6): 418-421.
21. Suzuki K.T. Metabolomics of selenium: Se
metabolites based on speciation studies. J. Health Sci.
2005; 51(2): 107-114.
22. Cantor А.Н., Seott M.F., Noguehi Т. Biological
availability of selenium in feedstus and selenium
compounds for prevention of exudative diathesis in
chicks. J. Nutr. 1975; 105: 96-105.
23. Schwarz К., Foltz С.М. Factor 3 activity of
selenium compounds. J. Biol. Chem. 1958; 233: 245-251.
24. Nuttall K.L., Fritz S.A. Hydrogen selenide ion
and colloidal selenium in the catalytic oxidation of thiols.
Inorg. Chim. Acta. 1984; 93(2): 85-88.
25. Herbel M.J., Blum J.S., Oremland R.S., Borglin
S.E. Reduction of elemental selenium to selenide:
Experiments with anoxic sediments and bacteria that respire
Se-oxyanions. Geomicrobiology J. 2003; 20: 587-602.
26. Desai M.P., Labhasetwar V., Walter E., Levy R.J.,
Amidon G.L. The mechanism of uptake of biodegradable
microparticles in Caco-2 cells is size dependent. Pharm.
28 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
Res. 1997. V. 14. № 11. P. 1568–1573.
27. Zhang J., Wang X., Xu T. Elemental selenium
at nano size (Nano-Se) as a potential chemopreventive
agent with reduced risk of selenium toxicity: comparison
with Se-methylselenocysteine in mice // Toxicol Sci.
2008. V. 101. № 1. P. 22–31.
28. Zhou X., Wang Y. Inuence of dietary nano
elemental selenium on growth performance, tissue
selenium distribution, meat quality, and glutathione
peroxidase activity in Guangxi Yellow chicken // Poult.
Sci. 2011. V. 90 № 3. P. 680–686.
29. Zhang J.S., Gao X.Y., Zhang L.D., Bao Y.P.
Biological eects of a nano red elemental selenium //
Biofactors. 2001. V. 15. № 1. P. 27–38.
30. Palomo-Siguero M., Madrid Y. Exploring the
behavior and metabolic transformations of SeNPs in
exposed lactic acid bacteria. eect of nanoparticles
coating agent // Int. J. Mol. Sci. 2017. V. 18. № 8. P. 1712.
doi.org/10.3390/ijms18081712.
31. Gather H.E. Selenotrisuldes. Formation by
reaction of thiols with selenious acid // Biochemistry.
1968. V. 7. P. 2898–2905.
32. Gather H.E. Reduction of the selenotrisulde
derivarive of glutathione to a persulde analog by
glutathione reductase // Biochemistry. 1971. V. 10. P.
4089–4098.
33. Seko Y., Saito Y., Kitahara J., Imura N. Active
oxygen generation by the reaction of selenite with
reduced glutathione in vitro / In: Selenium in biology
and medicine / Ed. A. Wendel. Berlin: Springer-Verlag,
1989. P. 70–73.
34. Полубояринов П.А., Моисеева И.Я., Гле-
бова Н.Н. Определение продуктов взаимодействия
селенита натрия и аминокислоты селеноцистина с
восстановленным глутатионом методом ВЭЖХ //
Известия ВУЗов. Поволжский регион. Естественные
науки. 2016. Т. 16. № 4. С. 77–87.
35. Czauderna M., Samochocka K. Selenium
incorporation into sulphur amino acids and glutathione
and the stability of the incorporation products // J.
Labelled Comp. and Radiopharmaceut. 1981. V. 18.
№ 6. P. 829–854.
36. Гмошинский И.В., Мазо В.К., Тутельян
В.А., Хотимченко С.А. Микроэлемент селен: роль
в процессах жизнедеятельности // Экология моря.
2000. Т. 54. С. 5–19.
37. Pallud S., Lennon A.M., Ramauge M., Gavaret
J.M., Croteau W., Pierre M., Courtin F., Germain D.L.
Expression of the type II iodothyronine deiodinase in
cultured rat astrocytes is selenium-dependent // J. Biol.
Chem. 1997. V. 272 № 29. P. 18104–18110.
38. Полубояринов П.А., Лещенко П.П., Мо-
исеева И.Я., Колесникова С.Г., Эпштейн Н.Б.
Механизм реакции элиминирования селена в ди-
ацетофенонилселениде под действием восстанов-
Res. 1997; 14(11): 1568-1573.
27. Zhang J., Wang X., Xu T. Elemental selenium
at nano size (Nano-Se) as a potential chemopreventive
agent with reduced risk of selenium toxicity: Comparison
with Se-methylselenocysteine in mice. Toxicol. Sci.
2008; 101(1): 22-31.
28. Zhou X., Wang Y. Inuence of dietary nano
elemental selenium on growth performance, tissue
selenium distribution, meat quality, and glutathione
peroxidase activity in Guangxi Yellow chicken. Poult.
Sci. 2011; 90(3): 680-686.
29. Zhang J.S., Gao X.Y., Zhang L.D., Bao Y.P.
Biological eects of a nano red elemental selenium.
Biofactors. 2001; 15(1): 27-38.
30. Palomo-Siguero M., Madrid Y. Exploring the
behavior and metabolic transformations of SeNPs in
exposed lactic acid bacteria. Eect of nanoparticles
coating agent. Int. J. Mol. Sci. 2017; 18(8): 1712. doi.
org/10.3390/ijms18081712.
31. Gather H.E. Selenotrisuldes. Formation by
reaction of thiols with selenious acid. Biochemistry.
1968; 7: 2898-2905.
32. Gather H.E. Reduction of the selenotrisulfide
derivarive of glutathione to a persulfide analog by
glutathione reductase. Biochemistry. 1971; 10: 4089-
4098.
33. Seko Y., Saito Y., Kitahara J., Imura N. Active
oxygen generation by the reaction of selenite with
reduced glutathione in vitro. In: Selenium in biology and
medicine. Ed. A. Wendel. Berlin: Springer-Verlag, 1989:
70-73.
34. Poluboyarinov P.A., Moiseeva I.Ya., Glebova
N.N. Determination of the interaction products of
sodium selenite and the amino acid selenocystine
with reduced glutathione by HPLC. Izvestiya vysshih
uchebnyh zavedenij. Povolzhskij region. Estestvennye
nauki. (University Proceedings. Volga region. Natural
Sciences). 2016; 16(4): 77-87. (in Russ.)
35. Czauderna M., Samochocka K. Selenium
incorporation into sulphur amino acids and glutathione
and the stability of the incorporation products. J.
Labelled Compounds and Radiopharmaceut. 1981;
18(6): 829-854.
36. Gmoshinski I.V., Mazo V.K., Tutelyan V.A.,
Khotimchenko S.A. Selenium microelement: Its role
in vitality processes. Ekologiya morya (Ecology of the
Sea). 2000; 54: 5-19. (in Russ.)
37. Pallud S., Lennon A.M., Ramauge M., Gavaret
J.M., Croteau W., Pierre M., Courtin F., Germain D.L.
Expression of the type II iodothyronine deiodinase in
cultured rat astrocytes is selenium-dependent. J. Biol.
Chem. 1997; 272(29): 18104-18110.
38. Poluboyarinov P.A., Leshchenko P.P., Moiseeva
I.Ya., Kolesnikova S.G., Epshtein N.B. The mechanism
of selenium elimination reaction in diacetophenonyl
29Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
ленного глутатиона // Журн. аналит. химии. 2017.
Т. 72. № 7. С. 633–638.
39. Полубояринов П.А., Лещенко П.П. Каче-
ственная реакция на цистеин, восстановленный глу-
татион и диацетофенонилселенид // Журн. аналит.
химии. 2013. Т. 68. № 11. С. 1063–1066.
40. Полубояринов П.А., Голубкина Н.А. Изуче-
ние биохимической функции селена и его влияние на
содержание белковых фракций и активность перок-
сидазы в проростках кукурузы // Физиология расте-
ний. 2015. Т. 62. № 3. С. 396–403.
41. Sies H. Ebselen, a selenoorganic compound as
glutathione peroxidase mimic // Free Radic. Biol. Med.
1993. V. 14. № 3. P. 313–323.
42. Maiorino M., Roveri A., Coassin M., Ursini
F. Kinetic mechanism and substrate specicity of
glutathione peroxidase activity of ebselen (PZ51) //
Biochem Pharmacol. 1988. V. 37. № 11. P. 2267–2271.
43. Nogueira C.W., Zeni G., Rocha J.B.
Organoselenium and organotellurium compounds:
Toxicology and pharmacology // Chem. Rev. 2004. V.
104. № 12. P. 6255–6285.
44. Jacob C., Maret W., Vallee B.L. Ebselen, a
selenium containing redox drug, releases zinc from
metallothionein // Biochem. Biophys. Res. Commun.
1998. V. 248. № 3. P. 569–573.
45. Xu K.H., Zhang Y., Tang B., Laskin J., Roach
P.J., Chen H. Study of highly selective and efficient
thiol derivatization using selenium reagents by mass
spectrometry // Anal. Chem. 2010. V. 82. № 16. P.
6926–6932.
46. Schewe C., Schewe T., Wendel A. Strong
inhibition of mammalian lipoxygenases by the
antiinammatory selenoorganic compound ebselen in
the absence of glutathione // Biochem. Pharmacol. 1994.
V. 48. № 1. P. 65–74.
47. Walther M., Holzhutter H.G., Kuban R.J.,
Wiesner R., Rathmann J., Kuhn H. The inhibition of
mammalian 15-lipoxygenases by the anti-inammatory
drug ebselen: Dual-type mechanism involving covalent
linkage and alteration of the iron ligand sphere // Mol.
Pharmacol. 1999. V. 56. № 1. P. 196–203.
48. Hattori R., Yui Y., Shinoda E., Inoue R.,
Aoyama T., Masayasu H., Kawai C., Sasayama S.
Eect of ebselen on bovine and rat nitric oxide synthase
activity is modied by thiols // Jpn. J. Pharmacol. 1996.
V. 72. № 2. P. 191–193.
49. Smith S.M., Min J., Ganesh T., Diebold B.,
Kawahara T., Zhu Y., McCoy J., Sun A., Snyder J.P., Fu
H., Du Y., Lewis I., Lambeth J.D. Ebselen and congeners
inhibit NADPH oxidase 2-dependent superoxide
generation by interrupting the binding of regulatory
subunits // Chem. Biol. 2012. V. 19. № 6. P. 752–763.
50. Mishra B., Priyadarsini K.I., Mohan H., Mugesh
G. Horseradish peroxidase inhibition and antioxidant
selenide under the action of reduced glutathione. Zhurnal
analiticheskoy khimii (Russian Journal of Analytical
Chemistry). 2017; 72(7): 633-638. (in Russ.)
39. Poluboyarinov P.A., Leshchenko P.P.
Qualitative reaction to cysteine, reduced glutathione and
diacetophenonyl selenide. Zhurnal analiticheskoy khimii
(Russian Journal of Analytical Chemistry). 2013; 68(11):
1063-1066. (in Russ.)
40. Poluboyarinov P.A., Golubkina N.A. The study
of the biochemical function of selenium and its eect
on the content of protein fractions and the activity of
peroxidase in corn seedlings. Fiziologiya rasteniy (Plant
Physiology). 2015; 62(3): 396-403. (in Russ.)
41. Sies H. Ebselen, a selenoorganic compound as
glutathione peroxidase mimic. Free Radic. Biol. Med.
1993; 14(3): 313-323.
42. Maiorino M., Roveri A., Coassin M., Ursini
F. Kinetic mechanism and substrate specicity of
glutathione peroxidase activity of ebselen (PZ51).
Biochem. Pharmacol. 1988; 37(11): 2267-2271.
43. Nogueira C.W., Zeni G., Rocha J.B.
Organoselenium and organotellurium compounds:
Toxicology and pharmacology. Chem. Rev. 2004;
104(12): 6255-6285.
44. Jacob C., Maret W., Vallee B.L. Ebselen, a
selenium containing redox drug, releases zinc from
metallothionein. Biochem. Biophys. Res. Commun.
1998; 248(3): 569-573.
45. Xu K.H., Zhang Y., Tang B., Laskin J., Roach
P.J., Chen H. Study of highly selective and ecient
thiol derivatization using selenium reagents by mass
spectrometry. Anal. Chem. 2010; 82(16): 6926-6932.
46. Schewe C., Schewe T., Wendel A. Strong
inhibition of mammalian lipoxygenases by the
antiinammatory selenoorganic compound ebselen in
the absence of glutathione. Biochem. Pharmacol. 1994;
48(1): 65-74.
47. Walther M., Holzhutter H.G., Kuban R.J.,
Wiesner R., Rathmann J., Kuhn H. The inhibition of
mammalian 15-lipoxygenases by the anti-inammatory
drug ebselen: Dual-type mechanism involving covalent
linkage and alteration of the iron ligand sphere. Mol.
Pharmacol. 1999; 56(1): 196-203.
48. Hattori R., Yui Y., Shinoda E., Inoue R., Aoyama
T., Masayasu H., Kawai C., Sasayama S. Eect of
ebselen on bovine and rat nitric oxide synthase activity
is modied by thiols. Jpn. J. Pharmacol. 1996; 72(2):
191-193.
49. Smith S.M., Min J., Ganesh T., Diebold B.,
Kawahara T., Zhu Y., McCoy J., Sun A., Snyder J.P., Fu
H., Du Y., Lewis I., Lambeth J.D. Ebselen and congeners
inhibit NADPH oxidase 2-dependent superoxide
generation by interrupting the binding of regulatory
subunits. Chem. Biol. 2012; 19(6): 752-763.
50. Mishra B., Priyadarsini K.I., Mohan H., Mugesh
30 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
activity of ebselen and related organoselenium
compounds // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006. V. 16.
№ 20. P. 5334–5338.
51. Tabuchi Y., Ogasawara T., Furuhama K.
Mechanism of theinhibition of hog gastric H+, K+-
ATPase by the selenoorganic compound ebselen //
Arzneimittelforschung. 1994. V. 44. № 1. P. 51–54.
52. Borges V.C., Rocha J.B., Nogueira C.W. Eect
of diphenyldiselenide, diphenyl ditelluride and ebselen
on cerebral H+, K+-ATPase activity in rats // Toxicology.
2005. V. 215. № 3. P. 191–197.
53. Terentis A.C., Freewan M., Sempertegui
Plaza T.S., Raftery M.J., Stocker R., Thomas S.R. The
selenazal drug ebselen potently inhibits indoleamine
2,3-dioxygenase by targeting enzyme cysteine residues
// Biochemistry. 2010. V. 49. № 3. P. 591–600.
54. Xia R., Ganther H.E., Egge A., Abramson J.J.
Selenium compounds modulate the calcium release
channel/ryanodine receptor of rabbit skeletal muscle by
oxidizing functional thiols // Biochem. Pharmacol. 2004.
V. 67. № 11. P. 2071–2079.
55. Parnham M.J., Sies H. The early research and
development of ebselen // Biochem. Pharmacol. 2013.
V. 86. № 9. P. 1248–1253.
56. Masumoto H., Hashimoto K., Nakaoka M.,
Hakusui H. Metabolism of ebselen (DR-3305) // Relation
to the Antioxidant Activity. 1995. V. 10. P. 158–161.
57. Блинохватов А.Ф. 9-R-сим-нонагидро-10-ок-
са(халькогена) антрацены и соли 9-R-сим-октаги-
дро-10-оксониа (халькогенониа) антрацена: дис. …
д-ра хим. наук. Саратов: СГУ, 1993. 378 с.
58. Боряев Г.И. Использование кленбутерола в
комплексе с органическими соединениями цинка и
селена с целью повышения продуктивности и рези-
стентности цыплят-бройлеров: дис. … канд. биол.
наук. Боровск, 1992. 128 с.
59. Забродский П.Ф., Древко Б.И., Мандыч В.Г.,
Германчук В.Г., Балашов С.В., Кузьмин А.В. Изме-
нение токсичности и иммунотоксичности тетрахлор-
метана и карбофоса под влиянием 2,4,6-трифе-
нил-4Н-селенопирана и их связь с Р-450 зависимой
монооксигеназной системой // Эксперим. и клинич.
фармакология. 2008. Т. 71. № 6. С. 42–44.
60. Полубояринов П.А., Лещенко П.П., Ари-
повский А.В. Кислотно-катализируемый гидролиз
селенопирана // Башкирский химический журнал.
2016. Т. 23. № 1. С. 22–29.
61. Голубкина Н.А., Соколов Я.А., Хотимченко
С.А., Тихонов В.П., Цыб А.Ф. Оценка селенового
статуса организма при приеме селенопирана // Ми-
кроэлементы в медицине. 2005. № 6. С. 33–36.
62. Саноцкий И.В. Селекор. Биологическое дей-
ствие. М.: Mageric, 2006. 206 c.
63. Korbas M., O’Donoghue J.L., Watson G.E.,
Pickering I.J., Singh S.P., Myers G.J., Clarkson T.W.,
G. Horseradish peroxidase inhibition and antioxidant
activity of ebselen and related organoselenium
compounds. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006; 16(20):
5334-5338.
51. Tabuchi Y., Ogasawara T., Furuhama K.
Mechanism of theinhibition of hog gastric H+, K+-
ATPase by the selenoorganic compound ebselen.
Arzneimittelforschung. 1994; 44(1): 51-54.
52. Borges V.C., Rocha J.B., Nogueira C.W. Eect
of diphenyldiselenide, diphenyl ditelluride and ebselen
on cerebral H+, K+-ATPase activity in rats. Toxicology.
2005; 215(3): 191-197.
53. Terentis A.C., Freewan M., Sempertegui
Plaza T.S., Raftery M.J., Stocker R., Thomas S.R. The
selenazal drug ebselen potently inhibits indoleamine
2,3-dioxygenase by targeting enzyme cysteine residues.
Biochemistry. 2010; 49(3): 591-600.
54. Xia R., Ganther H.E., Egge A., Abramson J.J.
Selenium compounds modulate the calcium release
channel/ryanodine receptor of rabbit skeletal muscle by
oxidizing functional thiols. Biochem. Pharmacol. 2004;
67(11): 2071-2079.
55. Parnham M.J., Sies H. The early research and
development of ebselen. Biochem. Pharmacol. 2013;
86(9): 1248-1253.
56. Masumoto H., Hashimoto K., Nakaoka M.,
Hakusui H. Metabolism of ebselen (DR-3305). Relation
to the Antioxidant Activity. 1995; 10: 158-161.
57. Blinokhvatov A.F. 9-R-sim-nonahydro-10-oxa
(chalcogen) anthracenes and salts of 9-R-sim-octahydro-
10-oxonia (chalcogenonia) anthracene: D.Sc. (Chem.)
thesis. Saratov.: SGU, 1993. 378 p. (in Russ.)
58. Boryaev G.I. The use of clenbuterol in
combination with organic compounds of zinc and
selenium in order to increase the productivity and
resistance of broiler chickens: Ph.D. (Biol.) thesis.
Borovsk, 1992. 128 p. (in Russ.)
59. Zabrodskiy P.F., Drevko B.I., Mandych
V.G., Germanchuk V.G., Balashov S.V., Kuzmin A.V.
The change of toxicity of carbon tetrachloride and
immunotoxicity and malathion under the inuence of
2,4,6-triphenyl-4H-selenopyrane and their relationship
with P-450 dependent monooxygenase system.
Eksperimentalnaya i klinicheskaya farmakologiya.
(Experimental and Clinical Pharmacology). 2008; 71(6):
42-44. (in Russ.)
60. Poluboyarinov P.A., Leshchenko P.P., Aripovsky
A.V. Acid-catalyzed hydrolysis of selenopyran.
Bashkirskiy khimicheskiy zhurnal (Bashkir Chemical
Journal). 2016; 23(1): 22-29. (in Russ.)
61. Golubkina N.A., Sokolov Ya.A., Khotimchenko
S.A., Tikhonov V.P., Tsib A.F. Evaluation of the selenium
status in persons consuming selenopyran. Mikroelementy
v meditsine (Trace Elements in Medicine). 2005; 6: 33-
36. (in Russ.)
31Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
George G.N. The chemical nature of mercury in human
brain following poisoning or environmental exposure //
ACS Chem. Neurosci. 2010. № 1. P. 810–818.
64. Esaki N., Nakamura T., Tanaka H., Soda K.
Selenocysteine lyase, a novel enzyme that specically
acts on selenocysteine. Mammalian distribution and
purication and properties of pig liver enzyme // J. Biol.
Chem. 1982. № 257. P. 4386–4391.
65. Ortega R., Carmona A., Llorens I., Solari P.L.
X-ray absorption spectroscopy of biological samples.
A tutorial // J. Anal. At. Spectrom. 2012. № 27. P.
2054–2065.
66. Okuno T., Kubota T., Kuroda T., Ueno H.,
Nakamuro K. Contribution of enzymic alpha, gamma-
elimination reaction in detoxication pathway of
selenomethionine in mouse liver // Toxicol. Appl.
Pharmacol. 2001. № 176. P. 18–23.
67. Suzuki K.T., Kurasaki K., Suzuki N.
Selenocysteine beta-lyase and methylselenol demethylase
in the metabolism of Se-methylated selenocompounds
into selenide // Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 2007.
№ 1770. P. 1053–1061.
68. Aitken J.B., Levina A., Lay P.A. Studies on
the biotransformations and biodistributions of metal-
containing drugs using X-ray absorption spectroscopy //
Curr. Top. Med. Chem. 2011. № 11. P. 553–571.
69. Combs G.F. Biomarkers of selenium status //
Nutrients. 2015. V. 7. № 4. P. 2209–2236.
70. Diplock A.T. Metabolic aspects of selenium
action and toxicity // CRC Crit. Rev. Toxicol. 1976. V. 4.
№ 3. P. 271–329.
71. Maier K.J., Knight A.W. Ecotoxicology of
selenium in freshwater systems // Rev. Environ. Contam.
Toxicol. 1994. V. 134. P. 31–48.
72. Hateld D.L., Gladyshev V.N. How selenium
has altered our understanding of the genetic code // Mol.
Cell. Biol. 2002. V. 22. P. 3565–3576.
73. Rayman M.P. The use of high-selenium yeast to
raise selenium status: How does it measure up? // Br. J.
Nutr. 2004. V. 92. P. 557–573.
74. Berry M.J., Banu L., Harney J.W., Larsen P.R.
Functional characterization of the eukaryotic SECIS
elements which direct selenocysteine insertion at UGA
codons // EMBO J. 1993. V. 12. № 8. P. 3315–3322.
75. Nakamuro K., Okuno T., Hasegawa T.
Metabolism of selenoamino acids and contribution of
selenium methylation to their toxicity // J. Health Sci.
2000. V. 46. № 6. P. 418–421.
76. Hasegawa T., Mihara M., Okuno T., Nakamuro
K., Sayato Y. Chemical form of selenium-containing
metabolite in small intestine and liver of mice following
orally administered selenocystine // Arch. Toxicol. 1995.
№ 69. P. 312–317.
77. Hasegawa T., Okuno T., Nakamuro K., Sayato
Y. Identication and metabolism of selenocysteine-
62. Sanotsky I.V. Selecor. Biological action. М.:
Mageric Publ., 2006. 206 p. (in Russ.)
63. Korbas M., O’Donoghue J.L., Watson G.E.,
Pickering I.J., Singh S.P., Myers G.J., Clarkson T.W.,
George G.N. The chemical nature of mercury in human
brain following poisoning or environmental exposure.
ACS Chem. Neurosci. 2010; 1: 810-818.
64. Esaki N., Nakamura T., Tanaka H., Soda K.
Selenocysteine lyase, a novel enzyme that specically
acts on selenocysteine. Mammalian distribution and
purication and properties of pig liver enzyme. J. Biol.
Chem. 1982; 257: 4386-4391.
65. Ortega R., Carmona A., Lorens I., Solari P.L.
X-ray absorption spectroscopy of biological samples. J.
Anal. At. Spectrom. 2012; 27: 2054-2065.
66. Okuno T., Kubota T., Kuroda T., Ueno H.,
Nakamuro K. Contribution of enzymic alpha, gamma-
elimination reaction in detoxication pathway of
selenomethionine in mouse liver. Toxicol. Appl.
Pharmacol. 2001; 176: 18-23.
67. Suzuki K.T., Kurasaki K., Suzuki N.
Selenocysteine beta-lyase and methylselenol demethylase
in the metabolism of Se-methylated selenocompounds
into selenide. Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 2007;
1770: 1053-1061.
68. Aitken J.B., Levina A., Lay P.A. Studies on
the biotransformations and biodistributions of metal-
containing drugs using X-ray absorption spectroscopy.
Curr. Top. Med. Chem. 2011; 11: 553-571.
69. Combs G.F. Biomarkers of selenium status.
Nutrients. 2015; 7(4): 2209-2236.
70. Diplock A.T. Metabolic aspects of selenium action
and toxicity. CRC Crit. Rev. Toxicol. 1976; 4: 271-329.
71. Maier K.J., Knight A.W. Ecotoxicology of
selenium in freshwater systems. Rev. Environ. Contam.
Toxicol. 1994; 134: 31-48.
72. Hateld D.L., Gladyshev V.N. How selenium
has altered our understanding of the genetic code. Mol.
Cell. Biol. 2002; 22: 3565-3576.
73. Rayman M.P. The use of high-selenium yeast
to raise selenium status: How does it measure up? Br. J.
Nutr. 2004; 92: 557-573.
74. Berry M.J., Banu L., Harney J.W., Larsen P.R.
Functional Characterization of the eukaryotic SECIS
Elements which direct selenocysteine insertion at UGA
codons. EMBO J. 1993; 12(8): 3315-3322.
75. Nakamuro K., Okuno T., Hasegawa T.
Metabolism of selenoamino acids and contribution of
selenium methylation to their toxicity. J. Health Sci.
2000; 46(6): 418-421.
76. Hasegawa T., Mihara M., Okuno T., Nakamuro
K., Sayato Y. Chemical form of selenium-containing
metabolite in small intestine and liver of mice following
orally administered selenocystine. Arch. Toxicol. 1995;
69: 312-317.
32 Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
Метаболизм и механизм токсичности селенсодержащих препаратов, используемых для коррекции дефици-
та микроэлемента селена
glutathione selenenyl sulde (CySeSG) in small intestine
of mice orally exposed to selenocystine // Arch. Toxicol.
1996. V. 71. P. 39–44.
78. Chen T., Wong Y.S. Selenocystine induces
apoptosis of A375 human melanoma cells by
activating ROS-mediated mitochondrial pathway and
p53 phosphorylation // Cell. Mol. Life Sci. 2008. V.
65. № 17. P. 2763–2775.
79. Chen T., Wong Y.S. Selenocystine induces
reactive oxygen species-mediated apoptosis in human
cancer cells // Biomed. Pharmacother. 2009. V. 63 № 2.
P. 105–113.
80. Галочкин В.А., Галочкина В.П. Органиче-
ские и минеральные формы селена, их метаболизм,
биологическая доступность и роль в организме //
Сельскохозяйственная биология. 2011. № 4. С. 3–15.
81. Imai T., Mihara H., Kurihara T., Esaki N.
Selenocysteine is selectively taken up by red blood cells
// Biosci. Biotechnol. Biochem. 2009. V. 73. № 12. P.
2746–2748.
82. Sayato Y., Hasegawa T., Taniguchi S., Maeda H.,
Ozaki K., Narama I, Nakamuro K. Acute and subacute
oral toxicity of selenocystine in mice // Jap. J. Toxicol.
Environ. Health. 1993. V. 39. № 4. P. 289–296.
83. Klug H.L., Moxon A.L., Petersen D.F., Painter
E.P. Inhibition of rat liver succinic dehydrogenase by
selenium compounds // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1953.
V. 108. № 4. P. 437–441.
84. Ostadalova I., Babicky A. Toxic eect of various
selenium compounds on the rat in the early postnatal
period // Arch. Toxicol. 1980. V. 45. № 3. P. 207–211.
85. Беленький М.Л. Элементы количественной
оценки фармакологического эффекта. Л.: Медгиз,
1963. 152 с.
86. Ganther H.E.; Lawrence J.R. Chemical
transformations of selenium in living organisms.
Improved forms of selenium for cancer prevention //
Tetrahedron. 1997. № 53. P. 12299–12310.
87. George G.N., Pickering I.J., Pushie M.J.,
Nienaber K., Hackett M.J., Ascone I., Hedman B.,
Hodgson K.O., Aitken J.B., Levina A. X-ray-induced
photo-chemistry and X-ray absorption spectroscopy of
biological samples // J. Synchrotron Radiat. 2012. № 19.
P. 875–886.
88. Kim T., Jung U., Cho D., Chung A. Se-
Methylselenocysteine induces apoptosis through caspase
activation in HL-60 cells // Carcinogenesis. 2001. V. 22.
№ 4. P. 559–565.
89. Weekley C. M., Aitken J. B., Finney L., Vogt
S., Witting P.K., Harris H.H. Selenium metabolism
in cancer cells: The combined application of XAS
and XFM techniques to the problem of selenium
speciation in biological systems // Nutrients. 2013. V.
5. № 5. P. 1734–1756.
90. Yang H., Jia X. Safety evaluation of Se-
77. Hasegawa T., Okuno T., Nakamuro K., Sayato
Y. Identication and metabolism of selenocysteine-
glutathione selenenyl sulde (CySeSG) in small intestine
of mice orally exposed to selenocystine. Arch. Toxicol.
1996; 71: 39-44.
78. Chen T., Wong Y.S. Selenocystine induces
apoptosis of A375 human melanoma cells by activating
ROS-mediated mitochondrial pathway and p53
phosphorylation. Cell Mol. Life Sci. 2008; 65(17):
2763-2775.
79. Chen T., Wong Y.S. Selenocystine induces
reactive oxygen species-mediated apoptosis in human
cancer cells. Biomed. Pharmacother. 2009; 63(2):
105-113.
80. Galochkin V.A., Galochkina V.P. Organic I
and mineral forms of selenium, metabolism, biological
availability and role. Selskohhozyajstvennaya biologiya
(Agricultural Biology). 2011; 4: 3-15. (in Russ.)
81. Imai T., Mihara H., Kurihara T., Esaki N.
Selenocysteine is selectively taken up by red blood cells.
Biosci. Biotechnol. Biochem. 2009; 73(12): 2746-2748.
82. Sayato Y., Hasegawa T., Taniguchi S., Maeda H.,
Ozaki K., Narama I., Nakamuro K. Acute and subacute
oral toxicity of selenocystine in mice. Jap. J. Toxicol.
Environ. Health. 1993; 39(4): 289-296.
83. Klug H.L., Moxon A.L., Petersen D.F., Painter
E.P. Inhibition of rat liver succinic dehydrogenase by
selenium compounds. J. Pharmacol. Exp. Ther. 1953;
108(4): 437-441.
84. Ostadalova I., Babicky A. Toxic eect of various
selenium compounds on the rat in the early postnatal
period. Arch. Toxicol. 1980; 45(3): 207-211.
85. Belenky M.L. Elements of quantitative
evaluation of the pharmacological eect. Leningrad:
Medgiz Publ., 1963. 152 p. (in Russ.)
86. Ganther H.E., Lawrence J.R. Chemical
transformations of selenium in living organisms.
Improved forms of selenium for cancer prevention.
Tetrahedron. 1997; 53: 12299-12310.
87. George G.N., Pickering I.J., Pushie M.J.,
Nienaber K., Hackett M.J., Ascone I., Hedman B.,
Hodgson K.O., Aitken J.B., Levina A. X-ray-induced
photo-chemistry and X-ray absorption spectroscopy of
biological samples. J. Synchrotron Radiat. 2012; 19:
875-886.
88. Kim T., Jung U., Cho D., Chung A. Se-
Methylselenocysteine induces apoptosis through caspase
activation in HL-60 cells. Carcinogenesis. 2001; 22(4):
559-565.
89. Weekley C. M., Aitken J. B., Finney L., Vogt
S., Witting P.K., Harris H.H. Selenium metabolism in
cancer cells: The combined application of XAS and
XFM techniques to the problem of selenium speciation
in biological systems. Nutrients. 2013; 5(5): 1734-1756.
90. Yang H., Jia X. Safety evaluation of Se-
33Тонкие химические технологии / Fine Chemical Technologies 2019 том 14 № 1
П.А. Полубояринов, Д.Г. Елистратов, В.И. Швец
methylselenocysteine as nutritional selenium
supplement: Acute toxicity, genotoxicity and subchronic
toxicity // Regul. Toxicol. Pharmacol. 2014. V. 70. № 3.
P. 720–727.
91. Connell K.P., Portman O.W. Toxicity of dimethyl
selenide in the rat and mouse // Proc. Soc. Exp. Biol.
Med. 1952. V. 79. № 2. P. 230–231.
92. Cummins L.M., Kimura E.T. Safety evaluation
of selenium sulde antidan-dru shampoos // Toxicol.
Appl. Pharmacol. 1971. V. 20. № 1. P. 89–90.
93. Родионова Т.Н. Фармакодинамика селеноор-
ганических препаратов и их применение в животно-
водстве: автореф. дис. … д-ра биол. наук. Краснодар:
Кубан. гос. аграр. ун-т, 2004. 45 с.
94. https://www.alfa.com/ru/content/msds/USA/
J63190.pdf
methylselenocysteine as nutritional selenium
supplement: acute toxicity, genotoxicity and subchronic
toxicity. Regul. Toxicol. Pharmacol. 2014; 70(3): 720-
727.
91. Connell K.P., Portman O.W. Toxicity of dimethyl
selenide in the rat and mouse. Proc. Soc. Exp. Biol. Med.
1952; 79(2): 230-231.
92. Cummins L.M., Kimura E.T. Safety evaluation
of selenium sulde antidan-dru shampoos. Toxicol.
Appl. Pharmacol. 1971; 20(1): 89-90.
93. Rodionova T.N. Pharmacodynamics of seleno-
organic preparations and their use in animal husbandry:
abstract of dissertation ... D. Sc. (Biol.). Krasnodar:
Kuban. State Agrarian Univ., 2004. 45 p. (in Russ.)
94. https://www.alfa.com/ru/content/msds/USA/
J63190.pdf
Об авторах:
Полубояринов Павел Аркадьевич, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент, заведующий кафедрой
«Инженерная экология» ФГБОУ ВО «Пензенский государственный университет архитектуры и строительства» (Россия,
440028, г. Пенза, ул. Германа Титова, 28).
Елистратов Дмитрий Геннадьевич, директор ООО «Парафарм» (Россия, 440033, г. Пенза, ул. Калинина,
116-а).
Швец Виталий Иванович, доктор химических наук, академик РАН, профессор кафедры биотехнологии и
промышленной фармации Института тонких химических технологий им. М.В. Ломоносова ФГБОУ ВО «МИРЭА – Российский
технологический университет (Россия. 119571, Москва, пр. Вернадского, 86).
About the authors:
Pavel A. Poluboyarinov, Ph.D. (Agriculture), Associate Professor, Head of the Chair “Engineering Ecology”, Penza
State University of Architecture and Construction (28, Germana Titova st., Penza, 440028, Russia).
Dmitry G. Elistratov, Director of Parafarm Ltd (116a, Kalinina st., Penza, 440033, Russia).
Vitaly I. Shvets, D.Sc. (Chemistry), Academician of the RAS, Professor of the Chair of Biotechnology and Industrial
Pharmacy, M.V. Lomonosov Institute of Fine Chemical Technologies, MIREA – Russian Technological University (86, Vernadskogo
pr., Moscow, 119571, Russia).
Для цитирования: Полубояринов П.А., Елистратов Д.Г., Швец В.И. Метаболизм и механизм токсичности селенсо-
держащих препаратов, используемых для коррекции дефицита микроэлемента селена // Тонкие химические технологии /
Fine Chemical Technologies. 2019. Т. 14. № 1. С. ХХ–YY. DOI: 10.32362/2410-6593-2019-14-1-XX-YY
For citation: Poluboyarinov P.A., Elistratov D.G., Shvets V.I. Metabolism and mechanism of toxicity of selenium containing
supplements used for optimizing the human selenium status. Tonkie khimicheskie tekhnologii / Fine Chemical Technologies. 2019;
14(1): ХХ-YY. (in Russ.). DOI: 10.32362/2410-6593-2019-14-1-XX-YY