Available via license: CC BY
Content may be subject to copyright.
1
============== ОБЗОРНЫЕ СТАТЬИ ==============
=============== REVIEW A RT I C L E S ===============
ОХРАНА ПАРАЗИТИЧЕСКИХ ВИДОВ ЖИВОТНЫХ:
ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ
М. В. Орлова1,2, О. Л. Орлов1,3
1Тюменский государственный университет, Россия
2Национальный исследовательский Томский государственный университет, Россия
e-mail: masha_orlova@mail.ru
3Уральский государственный медицинский университет, Россия
e-mail: o_l_orlov@mail.ru
Поступила: 16.09.2018. Исправлена: 04.02.2019. Принята к опубликованию: 07.02.2019.
Паразитизм – широко распространенная в живой природе стратегия. Однако, несмотря на обилие пара-
зитических видов, многие аспекты их биологии (включая численность, уязвимость, возможность вы-
мирания и необходимость охраны) остаются неизученными. Паразиты достаточно негативно воспри-
нимаются, в том числе, и членами научного сообщества, что препятствует осознанию важности роли
паразитических видов в биосфере. В нашем обзоре представлен современный взгляд на экологическую,
научную и прикладную значимость паразитов, проблему сохранения их биоразнообразия и пути ее реше-
ния. Согласно проведенному обзору значительного объема литературы, паразитизм не рассматривается
как однозначно негативное явление, а паразиты признаются значимыми компонентами экосистемы на-
равне со свободноживущими видами. Обсуждаются перспективы и масштабы со-вымирания паразитов
вместе с хозяевами и возможные последствия данного явления. Также предложены рекомендации по
охране паразитов на территории Российской Федерации, в частности, присвоению нескольким видам
эктопаразитов статуса охраняемых видов.
Ключевые слова: паразиты, со-вымирание, сохранение биоразнообразия, уязвимые виды
Точные масштабы биоразнообразия пара-
зитов по-прежнему являются предметом дис-
куссий, однако наиболее вероятно, что при-
мерно половина всех известных видов живых
организмов (а по мнению некоторых исследо-
вателей (Windsor, 1998) – даже большинство) –
паразитические. Как бы то ни было, видов, сво-
бодных от паразитов, в природе не существует:
каждый из известных на сегодняшний день на-
уке видов организмов является хозяином одно-
го либо нескольких видов-паразитов.
Недавние исследования пищевых сетей по-
казывают, что 75% связей в них включают видов-
паразитов. Эти связи имеют жизненно важное
значение для регулирования численности хозя-
ев. Таким образом, паразиты – не только наи-
более распространенная форма жизни на Земле,
но и необходимый компонент устойчивой экоси-
стемы. Это означает, что исчезновение парази-
тов может иметь обширные и непредвиденные
последствия, которые повлияют на состояние и
численность значительного количества свобод-
ноживущих видов (Dobson et al., 2008).
Однако, несмотря на это, до недавнего вре-
мени специалистами не уделялось достаточно-
го внимания аспектам, связанным с вымирани-
ем данной группы организмов. На сегодняшний
день в литературе можно найти упоминания
крайне малого количества фактов сокращения
численности или вымирания паразитов, глав-
ным образом из-за трудностей, связанных с из-
учением этих процессов в природе.
Понятие «паразит»
В данной работе понятие «паразит» исполь-
зовано нами в том значении, которое вкладывал
в него Догель (1947): «Паразиты – это такие
организмы, которые используют другие живые
организмы в качестве источника пищи и среды
обитания, возлагая при этом частично или пол-
ностью на своих хозяев задачу регуляции сво-
их взаимоотношений с окружающей внешней
средой». Таким образом, в данную категорию
нами отнесены как макропаразиты (гельминты,
членистоногие, позвоночные), так и паразитиче-
ские микроорганизмы (простейшие, бактерии), а
также представители неклеточных форм жизни
– прежде всего, вирусы, которые, не имея соб-
ственного метаболизма, в процессе жизнедея-
тельности эксплуатируют живые организмы.
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
2
Роль паразитов в экосистеме
Несмотря на то, что роль паразитов в природ-
ных экосистемах изучается уже более полувека,
наиболее интенсивный этап исследования пара-
зито-хозяинных взаимодействий приходится на
последние 30 лет. Осознание значимости роли па-
разитов в экосистеме противоречит интуитивно-
му представлению большинства ученых о данной
группе животных. В научной литературе можно
встретить утверждение, что паразиты реализуют
в экосистемах функции, подобные тем, которые
выполняют хищники; например, контроль чис-
ленности популяций хозяев (Беклемишев, 1970;
Minchella & Scott, 1991; Combes, 1996; Rael et
al., 2008), а коэволюционные стратегии парази-
тов, направленные на максимальную адаптацию
к хозяину, сходны с процессами, наблюдаемыми
в парах «хищник – жертва» (Dawkins & Krebs,
1979). Между тем, помимо сходства, существу-
ют также фундаментальные различия между па-
разитами и хищниками, наиболее очевидным из
которых являются размерные: хищники обычно
крупнее своих жертв (Cohen et al., 1993), в то вре-
мя как паразиты, как правило, существенно мель-
че, чем их хозяева (Combes, 2005). Кроме того,
существует ряд принципиальных экологических
отличий. Так, в самом широком экологическом
смысле хищничество представляет собой основ-
ную силу, обеспечивающую передвижение энер-
гии и массы в экосистеме, поскольку хищник за
свою жизнь, как правило, уничтожает (поедает)
значительное количество жертв, в то время как
паразит использует одного, реже нескольких хо-
зяев. Хищники ловят и умерщвляют организмы
зачастую (хотя и не всегда) менее эволюционно
продвинутых групп, в то время как хозяевами па-
разитов в большинстве случаев выступают более
высокоразвитые организмы. В отличие от хищ-
ника, целью паразита является не уничтожение
хозяина, а адаптация к нему (снижение патоген-
ности и т.п.). Взаимное приспособление парази-
та и хозяина может привести к формированию
устойчивых симбиотических (в ряде случаев му-
туалистических) связей. Таким образом, парази-
то-хозяинные отношения вносят существенный
вклад в эволюционный процесс.
Большинство исследований паразитов ди-
ких животных традиционно были посвящены
изучению паразитических сообществ в популя-
циях хозяев, наблюдению за хозяйственно или
медицински значимыми паразитами, оценке
риска заболевания при построении долгосроч-
ных перспектив популяций хозяина и т.п. (Riley
et al., 2004; Cliord et al., 2006; Pedersen et al.,
2007; Hamer et al., 2012). Реже в статьях обсуж-
дались экологические и эволюционные послед-
ствиями формирования ассоциаций «паразит
– хозяин» (Gompper & Williams, 1998). Однако
недавние исследования (в частности, Hudson et
al., 2006) продемонстрировали, что именно эти
отношения являются принципиально важным
фактором устойчивости экосистемы.
В небольших пространственных масшта-
бах паразиты способны модулировать конку-
рентные взаимодействия между видами хозя-
ев. Например, именно участие парапоксвируса
белок (SPPV, Poxviridae), вероятно, объясняет
экологический успех интродукции каролин-
ских белок Sciurus carolinensis Gmelin, 1788 в
Великобритании (Tompkins et al., 2002). Нема-
тоды могут обусловливать совместное обита-
ние (либо его невозможность) некоторых видов
птиц (Tompkins et al., 2001) и млекопитающих.
В частности, в США менингеальный червь оле-
ней Parelaphostrongylus tenuis Dougherty, 1945
становится причиной высокой смертности ин-
тродуцированных благородных оленей Cervus
elaphus Linnaeus, 1758 в местах их симпатрии
с белохвостыми оленями Odocoileus virginianus
Zimmermann, 1780, выполняя таким образом
своего рода охранную функцию для последних
(Bender et al., 2005).
Эксплуатируя тела своих хозяев в качестве
источника пищи, паразиты заставляют их ме-
нять свой энергетический баланс (Thomas et al.,
2009), таким образом влияя на физиологические
параметры хозяина даже при отсутствии клини-
ческих признаков инфекции (Hudson et al., 2002).
Паразитарная инвазия также может опреде-
лять репродуктивное поведение (например, вызы-
вая выкидыши или бесплодие). Паразитические
кастраторы переключают метаболизм хозяина на
обслуживание собственной репродукции, меняя
этим плотность видов-хозяев (Laerty & Kuris,
2009). Паразиты могут также участвовать в фор-
мировании закономерностей распределения жи-
вотных в больших пространственных масштабах.
Об этом свидетельствует пример с появлением
и последующим исчезновением вируса чумы
крупного рогатого скота в Восточной Африке,
резко изменившего структуру экосистемы и плот-
ность популяции копытных (Thomas et al., 2005).
Последствия эпидемий чумы крупного рогатого
скота для крупномасштабных экосистемных про-
цессов (например, динамики лесных пожаров и
экологии древесной растительности в целом) по-
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
3
прежнему заметны, например, в экосистеме на-
ционального парка Серенгети (Holdo et al., 2009).
В конечном итоге воздействие паразитов на ре-
продуктивные возможности хозяина (Schwanz,
2008), его рост (Gorrell & Schulte-Hostedde, 2008)
и активность (Robar et al., 2010) фактически обо-
рачивается влиянием на всю организацию сооб-
ществ и биосферы.
Паразиты также выступают инструментом
естественного отбора, воздействуя на различ-
ные параметры хозяина: от фенотипического
полиморфизма и вторичных половых признаков
до наличия/отсутствия полового размножения
(Wegner et al., 2003; Lively et al., 2004; Blanchet
et al., 2009). Это влияние, направленное, в конеч-
ном итоге, на репродуктивную изоляцию и ви-
дообразование хозяина, приводит к увеличению
биоразнообразия (Summers et al., 2003).
Паразиты широко и разнообразно представ-
лены в экосистемах (Poulin & Morand, 2004), по
мнению Kuris et al. (2008) часто являясь в них
доминантами по биомассе. Они присутствуют
во всех пищевых сетях (Amundsen et al., 2009;
Dunne et al., 2013), а паразиты со сложными
жизненными циклами часто эксплуатируют
хозяев разных трофических уровней, при этом
повышая стабильность всей сети за счет увели-
чения и усложнения связей в ней (Laerty et al.,
2006). Исходя из вышесказанного, такие пара-
метры, как разнообразие и обилие паразитов,
могут выступать маркерами состояния экоси-
стемы (Hudson et al., 2006; Kuris et al., 2008).
Таким образом, на сегодняшний день уче-
ными получены многочисленные свидетель-
ства экологической и эволюционной значимо-
сти биоразнообразия паразитов, игнорировать
которые было бы недальновидно. Паразитиче-
ские виды представляют собой не только основ-
ную составляющую биоразнообразия Земли, но
и важную регулирующую силу в экосистемах.
Научная значимость паразитов
Паразитологические исследования орга-
низмов способны предоставить обширную и
разнообразную информацию, касающуюся ви-
дов-хозяев. Кроме того, изучение паразитов ча-
сто является малотравматичным для их хозяев.
Поэтому оно приобретает особенную актуаль-
ность в случаях, когда объектом изучения вы-
ступает охраняемая группа организмов. Ниже
приведены задачи, решение которых может
осуществляться с использованием данных по
паразитофауне изучаемых видов.
Определение векторов расселения инва-
зивных видов
Со-интродуцированные виды (co-introduced
species) паразитов представляют большой ин-
терес как источники информации о происхож-
дении и расселении инвазивных видов хозяев.
Прежде всего это касается рыб – Gaither et al.
(2013) и некоторых водорослей – Meusnier et al.
(2001). Так, Reshetnikov et al. (2011, 2017) ука-01). Так, Reshetnikov et al. (2011, 2017) ука-1). Так, Reshetnikov et al. (2011, 2017) ука-Reshetnikov et al. (2011, 2017) ука- et al. (2011, 2017) ука-et al. (2011, 2017) ука- al. (2011, 2017) ука-al. (2011, 2017) ука-. (2011, 2017) ука-
зывают, что паразитологические исследования
могут служить подтверждением данных об ис-
точниках инвазий ротана-головешки Perccottus
glenii Dybowski, 1877 (Odontobutidae) (вида-
вселенца для территории Западной Палеаркти-
ки) в Европейской части России. В частности,
данным коллективом авторов установлено, что
появление ротана в бассейне р. Ока стало след-
ствием, по крайней мере, двух различных эпи-
зодов вселения (Reshetnikov et al., 2017).
Выявление рас и криптических видов у хозяев
Канадские исследователи Jerome & Ford
(2002a,b) обнаружили, что важную роль в ди-a,b) обнаружили, что важную роль в ди-,b) обнаружили, что важную роль в ди-b) обнаружили, что важную роль в ди-) обнаружили, что важную роль в ди-
вергенции североамериканских омел рода Arceu-
thobium (Viscaceae) сыграло паразитирование на
разных хозяевах. Это можно наблюдать и у ряда
других паразитических растений (Viscum album
L., Phoradendron californicum Nutt.) (Musselman
& Parker, 1981; Glazner et al., 1988; Norton & Car-Parker, 1981; Glazner et al., 1988; Norton & Car-, 1981; Glazner et al., 1988; Norton & Car-Glazner et al., 1988; Norton & Car- et al., 1988; Norton & Car-et al., 1988; Norton & Car- al., 1988; Norton & Car-al., 1988; Norton & Car-., 1988; Norton & Car-Norton & Car- & Car-Car-
penter, 1998; Zuber & Widmer, 2000). Результаты
исследования показали, что большая часть попу-
ляций Arceuthobium americanum Nutt. ex A. Gray
принадлежит трем генетическим расам. Эти расы
имеют практически не перекрывающиеся ареалы
(за исключением зоны гибридизации в провин-
ции Альберта на юго-западе Канады), и каждая из
них паразитирует на отдельном таксоне хозяина.
Причем авторами было выявлено наличие двух
рас и у одного из видов хозяев – сосны скручен-
ной Pinus contorta Douglas ex Loudon (murrayana
и latifolia), на каждой из которых паразитирует
самостоятельная раса омелы. По мнению авто-
ров, вполне возможно, что А. americanum через
образование гостальных рас в будущем претер-
пит и видообразование, если поток генов между
тремя расами по-прежнему будет ограничен, и
разовьется репродуктивная изоляция.
Нами ранее было показано, что сборы пара-
зитических мух-никтерибиид (Diptera: Nycteribi-Diptera: Nycteribi-: Nycteribi-Nycteribi-
idae) позволяют разделять криптические виды
летучих мышей и определять видовую принад-
лежность летучих мышей-хозяев по имеющимся
сборам эктопаразитов многолетней давности (в
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
4
случае отсутствия коллекционных экземпляров
самих летучих мышей) (Orlova et al., 2013).
Изучение эволюционной истории хозяев
Исследователи уже довольно длительное
время предлагают использовать паразитологи-
ческие данные для реконструкции эволюцион-
ной истории хозяина (von Ihering, 1891, 1902;
Fahrenholz, 1913; Eichler, 1942; Hugot, 1999;
Wirth et al., 2005). Ключевым постулатом дан- et al., 2005). Ключевым постулатом дан-et al., 2005). Ключевым постулатом дан- al., 2005). Ключевым постулатом дан-al., 2005). Ключевым постулатом дан-., 2005). Ключевым постулатом дан-
ного метода стало предположение, что пара-
зиты передаются вертикально, от родителей к
потомкам (Clay, 1949; Page, 2003). Следующим
важным пунктом является наблюдение, что
морфологическая эволюция у паразитов про-
текает медленнее, чем у их хозяев (Klassen,
1992). Паразиты могут, таким образом, нести
некоторые консервативные признаки. Это дает
возможность использовать их в качестве био-
логических меток, как это было показано Ayala
& Hutchings (1974) при исследовании кровяных
паразитов галапагосских рептилий. За проме-
жуток времени, в течение которого пара ви-
дов-двойников хозяев, возможно, претерпела
значительные морфологические изменения по
мере отдаления от их общего предка, пара их
специфических паразитов, возможно, сохранит
архаичные признаки, которые будут полезны
при изучении их эволюционной истории (и, как
следствие, эволюционной истории их хозяев).
Генетическая информация широко использу-
ется для реконструкции филогении организмов.
Поскольку паразит имеет общую с хозяином эво-
люционную историю, данные молекулярно-гене-
тических исследований некоторых симбионтов
(паразитов либо мутуалистов) могут дополнять
данные молекулярно-генетических исследова-
ний их хозяев. Таким образом, постоянный па-
разит может являться ресурсом дополнительной
информации, и его данные позволят более кор-
ректно реконструировать историю хозяев. Ряд
исследований свидетельствует, что ДНК некото-
рых паразитов в целом эволюционирует более
быстрыми темпами, чем ДНК их хозяев (Page et
al., 1998). Это делает паразитические организмы
эффективным, но пока недостаточно широко ис-
пользуемым и востребованным инструментом
для исследований охраняемых видов, особенно в
тех случаях, когда изучение филогении и генети-
ческой структуры популяций хозяев затруднено.
Кроме того, поток генов в популяциях паразита
может происходить во время расселения вида-
хозяина независимо от потока генов в его попу-
ляциях, позволяя оценивать пространственные и
временные перемещения хозяина (Whiteman &
Parker, 2005). Так, исследования паразито-хозяин-, 2005). Так, исследования паразито-хозяин-
ных отношений летучих мышей (Mammalia: Chi-Mammalia: Chi-: Chi-Chi-
roptera) (весьма уязвимой группы, большинство
представителей которой является охраняемыми)
и их специфических эктопаразитов особенно
хорошо иллюстрируют возможности изучения
филогеографии видов-хозяев с использованием
паразитов. В частности, Bruyndonckx et al. (2010)
описан интересный случай, когда на остроухой
Myotis blythii (Tomes, 1857) и большой ночни-
цах Myotis myotis (Borkhausen, 1797) (Chiroptera:
Vespertilionidae) острова Корсика был обнаружен
гамазовый клещ Spinturnix myoti (Kolenati, 1856)
(Acari: Mesostigmata: Gamasina) с гаплотипом,
ранее описанным для S. myoti, собранных с ма-
грибской ночницы Myotis punicus Felten, 1977
(Chiroptera: Vespertilionidae) в Северной Африке.
По данным авторов, Корсика колонизировалась
магрибской ночницей через Сардинию (клещи S.
myoti, собранные на Сардинии и в Северной Аф-
рике имеют аналогичные гаплотипы, но на остро-
ве они представлены в существенно меньшем
разнообразии, что, вероятно, является следствием
островного эффекта и вполне ожидаемо). Myotis
punicus не имеет территорий совместного оби-
тания ни с остроухой, ни с большой ночницами.
Авторами сделан вывод, что магрибская ночница
проникла и обитала какое-то время на Корсике
и именно она принесла на данную территорию
своего специфического эктопаразита с континен-
тальным гаплотипом. В результате совместного
обитания (использования одних убежищ) с ноч-
ницами группы M. myotis / M. blythii, клещи пере-
селились на новых хозяев (спинтурнициды – кру-
гложизненные паразиты, не способные обитать
вне тела хозяина больше суток). В то же время,
магрибская ночница была постепенно вытесне-
на с острова остроухой и большой ночницами и
ныне на Корсике не обитает.
Понимание исторических и современных
отношений между отдельными популяциями
позвоночных животных по целому ряду при-
чин крайне важно для специалистов по охране
природы (Avise, 1994; Templeton et al., 2001).
К сожалению, низкий уровень внутрипопуля-
ционной и межпопуляционной генетической
изменчивости у многих таксонов позвоноч-
ных препятствует возможности изучения их
филогении и современных демографических
процессов. Подобное можно наблюдать, на-
пример, у гепарда Acinonyx jubatus Schreber,
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
5
1775 (Kieser, 1991), северного морского сло-
на Mirounga angustirostris Gill, 1866 (Hoelzel
et al., 1993), хайнаньского пятнистого оленя
Cervus nippon Temminck, 1838 (Pang et al.,
2003). Между тем, популяционная генетика
паразитов этих позвоночных может предло-
жить альтернативный путь изучения хозяев,
их эволюционной истории и текущих демо-
графических процессов. Это становится еще
одним аргументом в пользу сохранения подоб-
ных систем «паразит-хозяин».
Не меньший интерес представляют и по-
пуляционно-генетические исследования па-
разитов, которым свойственна горизонталь-
ная передача (прежде всего, болезнетворных
микроорганизмов), способные предоставить
информацию о расселении хозяина (Criscione
& Blouin, 2004; Whiteman et al., 2004). В этом
случае молекулярно-генетические исследова-
ния возбудителей дают возможность получить
эпидемиологические данные о паттерне пере-
дачи и распространения паразита в популяции
хозяев. В частности, было предложено исполь-
зовать данные по генетике некоторых вирусов в
контексте охраны дикой природы, т.е. как сред-
ство мониторинга динамики метапопуляций
хищных. Например, Biek et al. (2006) показали,
что быстро развивающийся вирус (вирус им-
мунодефицита кошачьих (FIV) (Retroviridae))
позволяет выявить детали современной попу-
ляционной структуры и микроэволюции его
обитающего в дикой природе хозяина – пумы
Puma concolor (Linnaeus, 1771). Эти данные не
были очевидны из результатов молекулярно-ге-
нетического исследования хищника, а получить
их другими (не паразитологическими) метода-
ми пока не представляется возможным. Под-
держание естественного уровня потока генов
между популяциями остается приоритетом в
деятельности по сохранению популяций диких
животных. Поэтому контроль распределения и
разнообразия FIV и других быстро эволюци-
онирующих патогенов у крупных хищников
может в будущем оказаться эффективным ин-
струментом исследований для специалистов
по охране природы. Кроме того, поскольку
данный метод позволяет выявлять временные
и пространственные характеристики контакта
«хозяин-хозяин», то, как утверждают авторы,
он может помочь определить местоположение
природных «коридоров» – районов, где дикие
популяции контактируют с домашними живот-
ными (Biek et al., 2006).
Положительные аспекты
значимости паразитов для человека
Не считая бактерий и вирусов, в настоящее
время медицине известно около сотни видов
паразитов (простейших, грибов, гельминтов,
членистоногих, позвоночных), хозяином ко-
торых может выступать человек. По данным
Всемирной организации здравоохранения, на
сегодняшний день в мире паразитарными бо-
лезнями заражено более 4.5 млрд. людей.
Несмотря на очевидный негативный эффект
большинства паразитов для здоровья челове-
ка, тем не менее, воздействие некоторых из них
может быть не столь пагубным, а в некоторых
случаях даже полезным. Так, исследователями
установлен факт, что присутствие некоторых ви-
дов паразитов может значительно увеличивать
или уменьшать восприимчивость хозяина к дру-
гим паразитам (Telfer et al., 2010). Данный аспект
имеет глубокие исторические корни. В частно-
сти, описан метод маляриятерапии (XIX – первая
половина XX вв.), позволявший лечить сифилис,
возбудитель которого погибает во время маля-
рийной лихорадки (Whitrow, 1990; Duell, 2001).
На протяжении нескольких тысячелетий
пиявки-гематофаги используются человеком
для лечения целого ряда заболеваний крове-
носной системы. Есть данные об эффективном
применении гирудотерапии в трансплантоло-
гии (Singh, 2010; Sig et al., 2017).
По данным Durden & Keirans (1996), парази-Durden & Keirans (1996), парази- & Keirans (1996), парази-Keirans (1996), парази- (1996), парази-
тические (в частности, иксодовые) клещи несут
в себе целый ряд полезных веществ. Слюна кле-
щей представляет большой интерес для фарма-
ции, поскольку содержит компоненты, обладаю-
щие апиразной активностью, антиагрегантными,
антигемостатическими, противовоспалительны-
ми, иммунодепрессивными и бактерицидными
свойствами (Ribeiro et al., 1985, 1991; Waxman et
al., 1990; Ramachandra & Wikel, 1992; Keller et al.,
1993; Karczewski et al., 1994; Kubes et al., 1994;
Alekseev et al. 1995; Singh et al., 2017). Одно из
таких веществ – кальретинулин, уменьшающий
тромбообразование в коронарных артериях и сти-
мулирующий биосинтез оксида азота (Jaworski
et al., 1995, Kuwabara et al., 1995). Все это делает
клещей перспективным сырьем для производства
лекарственных препаратов.
Согласно гигиенической гипотезе [Hygiene
hypothesis (Strachan, 1989)], возросшая частота
развития аутоиммунных заболеваний (включая
аллергические состояния), является следстви-
ем снижение микробной антигенной нагрузки
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
6
на организм человека в связи с уменьшени-
ем размера семьи и улучшением жизненных
условий. В промышленно развитых странах
уровень распространения большинства пара-
зитов крайне мал. Разработка вакцин, соблю-
дение гигиены, эффективная медицинская по-
мощь, широкое использование антисептиков,
антибактериальных средств и антибиотиков
снизили количество паразитов, вирусных и
бактериальных инфекций или ликвидировали
некоторые из них. Эффективно искореняются
многие заболевания, с которыми раньше стал-
кивался человек. Однако с победой над ними
росло воздействие и на малопатогенных, и,
возможно, даже полезных для человека пара-
зитов. Гипотеза предполагает, что правильное
развитие регуляторных Т-лимфоцитов инди-
видуума может зависеть от воздействия таких
организмов, как лактобактерии, различные
микобактерии и гельминты. Отсутствие их до-
статочного воздействия, особенно в детском
возрасте, в настоящее время признается при-
чиной увеличения количества аутоиммунных
заболеваний. Исходя из вышесказанного, не-
сколько лет назад был предложен эксперимен-
тальный метод лечения данных заболеваний
(в частности, рассеянного склероза) на осно-
ве введения гельминтов (гельминтотерапия)
(Weinstock, 2012; Fleming, 2013).
Некоторые виды нематод могут благопри-
ятно влиять на наступление и вынашивание
беременности у женщин. Отвлекая часть ак-
тивности иммунитета матери на себя, они за-
щищают плод и плаценту от действия антител.
Отмечено, что женщины, инфицированные
аскаридами, имеют в среднем на два ребенка
больше (Blackwell et al., 2015).
Перечисленные аспекты подчеркивают,
что сохранение биоразнообразия как хозяев,
так и паразитов это не только вопрос равных
прав, но ключ к будущему здоровья людей и
диких животных.
Уязвимость паразитических видов
В литературе по охране природы паразиты
чаще всего рассматриваются как потенциаль-
ная угроза их хозяевам (например, Gompper &
Williams, 1998; Cunningham et al., 2003), а па-, 1998; Cunningham et al., 2003), а па-Cunningham et al., 2003), а па- et al., 2003), а па-et al., 2003), а па- al., 2003), а па-al., 2003), а па-., 2003), а па-
разитарная инвазия – как признак нарушенной
экосистемы (Patz et al., 2004). Все это ведет к
формированию у специалистов неверного пред-
ставления об исключительной необходимости
контроля паразитов, а не их охраны.
Тем не менее, паразиты не защищены от
угроз, которые актуальны для свободноживу-
щих видов, и наблюдаемый в настоящее время
кризис биоразнообразия может в первую оче-
редь характеризоваться потерей именно пара-
зитических видов (Dunn et al., 2009). Несмотря
на то, что одним из последствий глобального
изменения климата специалисты считают по-
явление новых возбудителей заболеваний,
другим следствием действия этого же фактора
может стать исчезновение многих видов пара-
зитов. Изменение климата ведет к нарушению
экосистемных взаимодействий. Это выражает-
ся в резком падении численности и вымирании
ряда видов-хозяев, что, в свою очередь, при-
водит к вымиранию ассоциированных с ними
паразитов (Hudson et al., 2006; Altizer et al.,
2007; Laerty, 2012). Климатические измене-
ния трансформируют экологию переносчиков,
ограничивая их возможность распространять
паразитов. Это описано, например, для комаров
рода Anopheles spp. и переносимых ими маля-spp. и переносимых ими маля-. и переносимых ими маля-
рии, филяриаза и лихорадки О’Ньонг-Ньонг
(Afrane et al., 2012). Кроме того, изменение кли-
мата способно обусловливать фенологические
несоответствия между паразитами и их хозя-
евами (Rohr et al., 2011). Предполагается, что
возникшее в ходе изменения климата сокраще-
ние биоразнообразия паразитических микроор-
ганизмов (вымирание) коснется, прежде всего,
паразитов тропических, а не умеренных широт.
Это объясняется тем, что среди первых значи-
тельна доля видов, нуждающихся в переносчи-
ках (80% тропических против 13% умеренных)
и / или требующих наличия в дикой природе
резервуара инвазии (80% тропических про-
тив 20% обитающих в умеренном поясе) (Rohr
et al., 2011). Вероятно, аналогичным образом
(преимущественно в тропиках) произойдет вы-
мирание и у ряда макропаразитов. Поскольку
значительное количество гельминтов ассоци-
ировано с птицами, большой интерес пред-
ставляет прогнозирование динамики их био-
разнообразия (Poulin & Morand, 2000). Именно
вымирание птиц, по мнению специалистов, не-
сет основную угрозу их паразитам (Jetz et al.,
2007; Dobson et al., 2008). По мнению Dobson
et al. (2008), изменение климата в ближайшие
50–100 лет будет наиболее ярко выражено в по-
лярных широтах. И хотя оно также проявится
в умеренном и тропическом поясах, климати-
ческая трансформация на этих территориях в
значительной степени маскируется сельскохо-
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
7
зяйственной деятельностью человека, особен-
но в тропиках. Землепользование напрямую
обусловливает изменение площади и конфи-
гурации ареалов различных видов птиц. При-
чем виды с небольшими ареалами (к которым
относится значительная часть тропических
видов) имеют более высокий риск вымира-
ния, поскольку многие из них могут исчезнуть
вследствие преобразования их среды обитания
сельскохозяйственной деятельностью челове-
ка. Некоторые полярные виды птиц, согласно
прогнозам, также сократят свои ареалы из-за
потепления климата, но поскольку большин-
ство из них распространено достаточно широ-
ко, риск вымирания для них минимален. Таким
образом, предполагается, что антропогенные и
климатические трансформации делают наибо-
лее уязвимыми именно тропические виды па-
разитов (Dobson et al., 2008).
Кроме того, изменение климата крайне не-
благоприятно для рептилий с эпигамной (зави-
симой от температуры) детерминацией пола,
прежде всего, черепах (Testudines). Более по-
ловины представителей данного отряда в на-
стоящее время находятся под угрозой исчезно-
вения (Lovich et al., 2018). Это отражается на
множестве видов паразитов, ассоциированных
с ними. Так, Mihalca et al. (2011) указывают,
что исчезающие виды черепах являются хозя-
евами 12 видов иксодовых клещей, в частно-
сти, клеща Amblyomma supinoi Neumann, 1905,
вызывающего особое беспокойство, посколь-
ку все его находки сделаны исключительно на
редких видах.
Некоторые ученые (Cumming & van Vuuren,
2006; Carlson et al., 2017) высказывают точку
зрения о перераспределении биоразнообразия
паразитов (прежде всего, эктопаразитов), со-
гласно которой их вымирание в тропических
широтах будет сопровождаться перемещением
ряда видов в северные регионы и, как след-
ствие, значительным (в 2–3 раза) увеличением
их разнообразия на данных территориях. Одна-
ко исчезновение угрожает целому ряду именно
арктических видов хозяев (белый медведь Ursus
maritimus Phipps, 1774, многие китообразные
Cetacea, карибу Rangifer tarandus (Linnaeus,
1758)), а значит, и их паразитам тоже.
Еще одним процессом, существенно (и во
многих случаях противоречиво) влияющим на
биоразнообразие паразитов, выступает урба-
низация. Данное явление часто благоприят-
ствует распространению некоторых паразитов.
В первую очередь, это касается инфекционных
микроорганизмов, для которых урбанизация
часто означает возможность расширения круга
хозяев за счет включения в него новых видов.
Экстремальные изменения, сопровождающие
экспансию городского образа жизни, среди
прочего, способны вызывать снижение чис-
ленности (вплоть до вымирания) ряда видов
дикой природы (вследствие возникновения
эпидемий, согласно Bradley & Altizer, 2007).
Однако это может стать причиной сокращения
биоразнообразия ассоциированных с ними
специфичных паразитов. Наиболее драматич-
ным примером урбанизации может служить
резкое сокращение ареала африканского сло-
на Loxodonta africana Blumenbach, 1797 вслед-
ствие (помимо физического истребления) по-
явления и роста населенных пунктов в местах
его обитания, препятствующих нормальным
перемещениям данных животных. Этот вид
является основным хозяином иксодовых кле-
щей Dermacentor circumguttatus Neumann,
1897 и Amblyomma tholloni Neumann, 1899
(Mihalca et al., 2011). Имеются данные о со-Mihalca et al., 2011). Имеются данные о со- et al., 2011). Имеются данные о со-et al., 2011). Имеются данные о со- al., 2011). Имеются данные о со-al., 2011). Имеются данные о со-., 2011). Имеются данные о со-
кращении количества видов гельминтов в го-
родских популяциях у мышевидных грызунов
(Жигилева, 2013).
Для обозначения вымирания парази-
та вследствие исчезновения его хозяина
Stork & Lyal (1993) предложили термин «со-
вымирание» (co-extinction). Данные авторы
одними из первых в научном сообществе обо-
значили вымирание паразитов как «скрытую
потерю» биоразнообразия, как острую про-
блему, нуждающуюся в скорейшем разверну-
том изучении.
Cizauskas et al. (2017), обсуждая уязви-et al. (2017), обсуждая уязви- al. (2017), обсуждая уязви-al. (2017), обсуждая уязви-. (2017), обсуждая уязви-
мость видов-паразитов, выделили ряд фак-
торов, способствующих их вымиранию. Пре-
жде всего, это особенности метаболизма.
Так, паразиты пойкилотермных хозяев менее
защищены от колебаний температуры окру-
жающей среды. Следовательно, в случае не-
предвиденных изменений климата они ока-
зываются более уязвимыми, чем паразиты
гомойотермных животных. Важным аспектом
является размер тела хозяина. Так, парази-
ты более крупных организмов (как правило,
имеющих меньшую численность в природе)
характеризуются бóльшими шансами исчез-
нуть из-за повышенного риска со-вымирания.
Тела таких животных обычно формируют
значительное количество паразитарных ниш,
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
8
поэтому вымирание каждого подобного вида-
хозяина влечет за собой со-вымирание сразу
многих видов паразитов.
Влияние специфичности паразитов к хо-
зяевам на их уязвимость неоднозначно, как
показывают многочисленные исследования.
Теоретически виды-генералисты, способ-
ные эксплуатировать множество хозяев, при-
надлежащих разным таксонам, явно менее
склонны к вымиранию, чем специфичные
паразиты, зависимые от одного-двух филоге-
нетически близких видов хозяев. Примером
тому может служить инвазия японской грязе-
вой улитки Batillaria attramentaria (Sowerby,
1855) (Gastropoda: Batillariidae) на западном
побережье США и вытеснение ею моллюска
Cerithideopsis californica (Haldeman, 1840)
(Gastropoda: Potamididae). Следствием это-
го стало исчезновение на данной террито-
рии, по меньшей мере, 17 видов трематод,
промежуточным хозяином которых высту-
пала C. californica (Byers, 1999; Laerty &
Kuris, 2009). С другой стороны, среди гель-, 2009). С другой стороны, среди гель-
минтов виды-генералисты, как правило, не-
многочисленны и характеризуются невысо-
кой интенсивностью инвазии. В то же время
виды-специалисты, наоборот, представлены
в сообществе значительным количеством ви-
дов, и зараженность ими обычно достаточно
высока. Strona et al. (2013) обнаружили, что у
наиболее высоко специфичных паразитов рыб
риск со-вымирания существенно ниже, чем у
паразитов с широким кругом хозяев, вероятно,
потому что специализация, как правило, воз-
никает к наиболее устойчивым видам хозяев.
Кроме того, при массовых вымираниях хозяев
паразиты-генералисты не имеют преимуществ
перед специфичными видами, как это демон-
стрируют данные по островным экосистемам
после появления в них человека (Новая Зелан-
дия), где вымерли эктопаразиты с широким
(70–80 родственных видов птиц) кругом про-
кормителей (Duncan & Blackburn, 2004).
С какой скоростью вымирают паразиты?
В настоящее время биосфера вступает в
период очередного массового вымирания, со-
поставимого с аналогичными событиями, из-
вестными из палеонтологической летописи. По
мнению ряда авторов (Dunn et al., 2009; Carl-Carl-
son et al., 2017), в потерю биоразнообразия при
этом (уже шестом для планеты) вымирании
значительный вклад может внести исчезнове-
ние паразитов (табл.).
Таблица. Наиболее известные примеры вымирания паразитов
Table. The most famous examples of parasite extinction
Вид паразита Вид хозяина Примерное вре-
мя вымирания Территория Причины Источник
Пухоед Colpocephalum
californici Price, Beer,
1963 (Insecta: Phthirap-
tera: Menoponidae)
Калифорнийский кон- кон-кон-
дор Gymnogyps cali-
fornianus (Shaw, 1797)
(Aves: Accipitriformes:
Cathartidae)
Начало XXI в. США
Критическое сокра-
щение популяции
хозяина; санитарная
обработка последних
отловленных в дикой
природе особей птиц
Dunn, 2009
Перьевой клещ
Coraciacarus
muellermotzfeldi
Dabert, Alberti, 2008
(Acari: Astigmata:
Gabuciniidae)*
Разноклювая гуйя
Heteralocha acutirostris
(Aves: Passeriformes:
Callaeatidae)
Рубеж XIX и
XX вв.
Новая Зе-
ландия
Вымирание хозяина
вследствие уничтоже-
ния мест обитания и
интродукции других
видов животных
Dabert &
Alberti, 2008
Пухоед Rallicola extinctus
(Mey, 1990) (Insecta: Phthi-
raptera: Philopteridae)*
Mey, 1990
Иксодовый клещ
Ixodes nitens Neumann,
1904 (Acari: Ixodida:
Ixodidae)*
Тушканчиковая мышь
Маклеара Rattus ma-
cleari Thomas, 1887
(Mammalia: Rodentia:
Muridae)
Начало XXI в.
Остров
Рождества
(Австралия)
Вымирание хозяина
вследствие интро-
дукции других видов
животных
Mihalca et
al., 2011
Блоха Xenopsylla ne-
siotes Jordan, Rothschild,
1908 (Insecta: Siphonap-
tera: Pulicidae)*
Kwak, 2018
Примечание: * – со-вымирание.
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
9
Одним из первых вариантов оценки уязвимо-
сти паразитических видов стала методика, пред-
полагающая расчет доли уязвимых видов-хозяев
в каждом крупном таксоне позвоночных живот-
ных (Poulin & Morand, 2004). Усовершенствован-
ную методику данного анализа, учитывающую
специфичность паразитов, приводят Dobson et al.
(2008). Ранее Koh et al. (2004) с использованием
более сложных математических моделей выбо-
рочно провели аналогичный анализ для некото-
рых групп хозяев и паразитов. Все полученные
данные проиллюстрировали прямую взаимосвязь
между вымиранием видов-хозяев и исчезновени-
ем видов-паразитов, причем паразиты (равно как
и другие ассоциированные группы видов – на-
пример, мутуалисты) демонстрируют явно более
высокую скорость вымирания, чем их свободно-
живущие виды-хозяева. В данной статье отмече-
но, что с хозяевами, находящимися под угрозой
вымирания, ассоциировано около 6300 видов
паразитов. Dobson et al. (2008) предполагали,
что 3–5% гельминтов вымрут в ближайшие 50–
100 лет. Данные анализа, проведенного Carlson
et al. (2017), менее оптимистичны. Согласно ему,
к 2070 г. предполагается вымирание 5.6–15.4%
видов акантоцефал, 11.9–29.0% видов трематод,
12.8–29.1% цестод и 2.5–29.5% нематод.
Современные проблемы охраны паразитов
На данном этапе можно выделить несколь-
ко основных проблем выявления уязвимых па-
разитических видов:
1. Слабая изученность паразитических
представителей в целом. Для значительного ко-
личества видов хозяев паразиты до сих пор оста-
ются неизученными, либо классифицированы
только до уровня семейства или рода. Предпо-
чтения в отношении хозяев также часто остают-
ся неизвестными. Следствием является отсут-
ствие большинства паразитов в существующих
экологических базах данных. Систематический
мониторинг видов в дикой природе часто доста-
точно сложен и затратен. Поэтому на сегодняш-
ний день известно не так много примеров сбора
исчерпывающей информации по паразитофауне
хозяев, находящихся под угрозой исчезновения.
В частности, подобные исследования проводятся
для пиренейской рыси Lynx pardinus (Temminck,
1827) уже на протяжении 20 лет. На сегодняш-
ний день данные по ее эндо- и эктопаразитофа-
уне приведены в многочисленных публикациях
(Rodriguez & Carbonell, 1998; Millán & Casanova,
2007; Millán et al., 2007; Acosta et al., 2011).
2. В настоящее время крайне ограничен-
ное количество работ посвящено исследованию
истории паразитических инвазий и экспансий с
привлечением данных музейных коллекций. За-
мечательный пример подобного исследования
приведен Hartigan et al. (2010). Авторами описа-Hartigan et al. (2010). Авторами описа- et al. (2010). Авторами описа-et al. (2010). Авторами описа- al. (2010). Авторами описа-al. (2010). Авторами описа-. (2010). Авторами описа-
но появление в Австралии протозойного пара-
зита Myxidium immersum (Lutz, 1889) (Myxozoa:
Myxosporea), которое стало следствием интро-
дукции на данную территорию нового вида хо-
зяев – жабы-аги Bufo marinus Schneider, 1799.
Авторами обследованы музейные образцы, со-
бранные в период с 1935 г. по настоящее время.
3. Сложности с установлением паразити-
ческого статуса некоторых групп, имеющих
пограничное положение между паразитизмом,
мутуализмом и комменсализмом (ряд бактерий;
непатогенные кишечные простейшие; многие
клещи-схизофаги).
Таким образом, исследования экологии и
эволюции паразитов приобретают особую зна-
чимость для изучения популяций животных, на-
ходящихся под угрозой исчезновения. И широ-
кое распространение данных методов приведет
к обнаружению новых хозяев, новых (возможно,
криптических) видов паразитов. Они «приот-
кроют сегодняшнюю завесу невежества над био-
разнообразием паразитических организмов» (по:
Whiteman & Parker, 2005). Между тем, вопрос об
охране паразитов как источника ценной информа-
ции для исследований пока остается открытым.
Только один из пяти тысяч видов вшей включен в
Красный список Международного союза охраны
природы (IUCN, 2012). Там пока нет ни одного
вида блох, паразитических гельминтов, иксодо-
вых, аргасовых или гамазовых клещей, несмотря
на многочисленные требования организовать ох-
рану паразитов, звучащие с середины 1990-х гг.
Наиболее ранними в этом направлении считают-
ся работы Windsor (1990, 1995), впервые обозна-Windsor (1990, 1995), впервые обозна- (1990, 1995), впервые обозна-
чившего необходимость охраны паразитических
видов наравне со всеми остальными («Equal rights
for parasites»). На сегодняшний день отсутствуют
глобальные стратегии по сохранению/восстанов-
лению численности паразитов в дикой природе,
хотя уже существуют программы сохранения от-
дельных видов-паразитов.
Даже с утилитарной точки зрения (редкие
паразиты должны охраняться, прежде всего, как
биологические виды), данная группа организмов
пока не привлекает к себе внимания со стороны
ученых и природоохранных организаций. В этой
связи Whiteman & Parker (2005) предложили в
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
10
случаях исследования охраняемых видов по воз-
можности осуществлять сбор образцов их биома-
териала (мазков крови, кала, волосяного покрова
и т.п.) и затем отправлять их экспертам для по-
следующего изучения специфических паразитов.
Популяции некоторых паразитов и хозяев,
находящихся под угрозой исчезновения, могут
выращиваться в лабораторных условиях на тка-
нях альтернативных хозяев, в неволе или ex situ
(Clayton et al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про-Clayton et al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про- et al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про-et al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про- al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про-al., 2003; Vesk et al., 2010). Для про-., 2003; Vesk et al., 2010). Для про-
тозойных паразитов (в частности, трипаносом)
требуется несложная криоконсервация живых
образцов (Ndao et al., 2004). Такие паразиты мо-et al., 2004). Такие паразиты мо- al., 2004). Такие паразиты мо-al., 2004). Такие паразиты мо-., 2004). Такие паразиты мо-
гут выращиваться на микробиологических сре-
дах для последующего инфицирования живот-
ных в неволе перед выпуском в дикую природу.
Сбор образцов и формирование банков сфор-
мируют источник для будущих реинтродукций,
но требования, выполнение которых обеспечи-
вает успех данных мероприятий (например, сни-
женная специфичность к хозяину, способность
поддерживаться в культуре), а также стоимость
ограничивают возможность их применения у па-
разитических таксонов (Moir et al., 2012).
Однако, по мнению А. Гомеса и Е. Николс
(Nichols & Gómez, 2011; Gómez & Nichols,
2013) только изменение восприятия паразитов
научным сообществом может сыграть ключе-
вую роль в реализации перечисленных выше
стратегий. Паразиты, ошибочно воспринима-
емые сейчас как помеха в функционировании
экосистем, должны занять подобающее им ме-
сто в учебных пособиях для биологов, стать
объектом природоохранных программ. Появ-
ление научной литературы, подчеркивающей
позитивную роль паразитов в экосистемах, по-
зволит помочь привлечь внимание финансовых
органов и лиц, принимающих решения, к про-
блеме опасности потери биоразнообразия пара-
зитов (Zimmer, 2000; LaFee, 2006; Zuk, 2007).
Рекомендации по охране паразитов в России
В 2017 г. в сети Интернет создан первый в
мире ресурс, посвященный охране паразитов
и учету вымирающих видов (P.E.A.R.L. http://
pearl.berkeley.edu/). Однако в пределах России
данная проблема пока недостаточно привлека-
ет внимание специалистов. Публикации, посвя-
щенные вымиранию паразитов и необходимости
их охраны, практически отсутствуют, и перспек-
тивы возможности разработки природоохран-
ных мероприятий для паразитических видов
пока неясны. Хотя имеются примеры занесения
некоторых паразитов в Красную книгу Россий-
ской Федерации (2001), а также в Красные книги
ряда регионов России. Такими видами, напри-
мер, являются рогохвост оруссус паразитиче-
ский Orussus abietinus (Scopoli, 1763) (Insecta:
Hymenoptera: Orussidae). Его личинки выступа-: Orussidae). Его личинки выступа-Orussidae). Его личинки выступа-). Его личинки выступа-
ют эндопаразитами насекомых-ксилофагов, раз-
вивающихся в древесине. Другой вид – пиявка
акантобделла пеляжья Acanthobdella peledina
Grube, 1851 (Annelida: Hirudinea). Ее хозяевами
являются пресноводные рыбы бореальной зоны
Евразии от Скандинавии до Сибири и Дальне-
го Востока (Красная книга Республики Бурятия,
2013; Красная книга Иркутской области, 2010).
По нашему мнению, на территории Россий-
ской Федерации и ее отдельных субъектов можно
рекомендовать расширить списки Красных книг
включением нескольких видов эктопаразитов, ас-
социированных с охраняемыми видами хозяев:
1. Spinturnix emarginatus (Kolenati, 1856)
(Acari: Mesostigmata: Gamasina: Spinturnicidae).
На территории России известна единственная
находка в Крыму (Orlova & Orlov, 2018). Спец-Orlova & Orlov, 2018). Спец- & Orlov, 2018). Спец-Orlov, 2018). Спец-, 2018). Спец-
ифичный паразит трехцветной ночницы Myotis
emarginatus (E. Georoy, 1806) (Chiroptera: Ves-Chiroptera: Ves-: Ves-Ves-
pertilionidae) (Красная книга Российской Федера-) (Красная книга Российской Федера-
ции (2001), 2 категория; IUCN (2012): LC).
2. Ichoronyssus scutatus (Kolenati, 1857) (Aca-Aca-
ri: Mesostigmata: Gamasina: Macronyssidae). В
России встречается в Крыму и на Дальнем Вос-
токе (Медведев и др., 1991; Orlova & Orlov, 2018).
Вопрос о видовой специфичности данного вида
остается открытым (Orlova & Orlov, 2018), однако
предпочтительными хозяевами, по всей видимо-
сти, выступают виды семейства длиннокрыловые
(Chiroptera: Miniopteridae), из которого в России
обитают два вида: обыкновенный длиннокрыл
Miniopterus schreibersi (Kuhl, 1817) (Красная кни-
га Российской Федерации (2001), 1 категория;
IUCN (2012): NT) и дальневосточный длинно- (2012): NT) и дальневосточный длинно-NT) и дальневосточный длинно-) и дальневосточный длинно-
крыл Miniopterus fuliginosus (Hodgson, 1835) (ох-
раняемого статуса не имеет).
3. Macronyssus granulosus (Kolenati, 1856)
(Acari: Mesostigmata: Gamasina: Macronyssi-Acari: Mesostigmata: Gamasina: Macronyssi-: Mesostigmata: Gamasina: Macronyssi-Mesostigmata: Gamasina: Macronyssi-: Gamasina: Macronyssi-Gamasina: Macronyssi-: Macronyssi-Macronyssi-
dae). На территории России вид ассоциирован с
остроухой ночницей Myotis blythii (Tomes, 1857)
(Chiroptera: Vespertilionidae) (Красная книга Рос-Chiroptera: Vespertilionidae) (Красная книга Рос-: Vespertilionidae) (Красная книга Рос-Vespertilionidae) (Красная книга Рос-) (Красная книга Рос-
сийской Федерации (2001), 2 категория; IUCN
(2012): LC) и длиннопалой ночницей Myotis
macrodactylus (Temminck, 1840) (Chiroptera: Ves-Chiroptera: Ves-: Ves-Ves-
pertilionidae) (Красная книга Приморского края
(2005), 3 категория; IUCN (2012): LC). Паразит
встречается на протяжении их ареалов: Крым,
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
11
Краснодарский край, Кавказ, Алтай, Дальний
Восток (Медведев и др., 1991; Stanyukovich, 1997;
Orlova et al., 2015; Орлова и др., 2017; Orlova &
Orlov, 2018). Паразитирование на неродственных
видах ночниц, не имеющих симпатрии, может
указывать на то, что M. granulosus представляет
собой комплекс криптических видов. Для реше-
ния данного вопроса необходимо проведение мо-
лекулярно-генетических исследований.
4. Basilia mongolensis Theodor, 1966 (Insecta:
Diptera: Nycteribiidae). В России данная кровосо-: Nycteribiidae). В России данная кровосо-Nycteribiidae). В России данная кровосо-). В России данная кровосо-
сущая муха известна по единичным находкам на
территории Западного Саяна (Orlova & Zhigalin,
2014). Основным хозяином, вероятно, является
степная ночница Myotis davidii (Peters, 1869) (Chi-Chi-
roptera: Vespertilionidae) (IUCN (2012): LC).
5. Nycteribia vexata Westwood, 1835 (Insecta:
Diptera: Nycteribiidae). На территории Российской
Федерации встречается в Крыму и на Северном
Кавказе (Orlova & Orlov, 2018) в пределах ареала
основного хозяина – остроухой ночницы.
6. Penicillidia dufouri (Westwood, 1835) (In-In-
secta: Diptera: Nycteribiidae). Данный вид встре-: Diptera: Nycteribiidae). Данный вид встре-Diptera: Nycteribiidae). Данный вид встре-: Nycteribiidae). Данный вид встре-Nycteribiidae). Данный вид встре-). Данный вид встре-
чается в Крыму и, вероятно, на Северном Кав-
казе (Orlova & Orlov, 2018) в пределах ареала
основного хозяина – остроухой ночницы.
7. Phthiridium biarticulatum Hermann, 1804
(Insecta: Diptera: Nycteribiidae). Вид дважды об-Insecta: Diptera: Nycteribiidae). Вид дважды об-: Diptera: Nycteribiidae). Вид дважды об-Diptera: Nycteribiidae). Вид дважды об-: Nycteribiidae). Вид дважды об-Nycteribiidae). Вид дважды об-). Вид дважды об-
наруживали в Крыму (Ševčik et al., 2011; Orlova
& Orlov, 2018). Паразитирует на подковоносых
летучих мышах (Chiroptera: Rhinolophidae). Все
виды данного семейства, обитающие на терри-
тории России, занесены в Красную книгу Рос-
сийской Федерации (2001).
8. Rhinolophopsylla unipectinata (Taschen-Taschen-
berg, 1880) (Insecta: Siphonaptera: Ischnopsylli-, 1880) (Insecta: Siphonaptera: Ischnopsylli-Insecta: Siphonaptera: Ischnopsylli-: Siphonaptera: Ischnopsylli-Siphonaptera: Ischnopsylli-: Ischnopsylli-Ischnopsylli-
dae). В России данный вид блохи известен по
ограниченным сборам в Крыму и на Северном
Кавказе (Тифлов и др., 1977; Лабунец, Дегтяре-
ва, 1985; Чирний, 2004; Orlova & Orlov, 2018).
Основными хозяевами являются различные
виды подковоносов Rhinolophus sp.
Также, по нашему мнению, возможно при-
своение статуса охраняемого вида иксодовому
клещу Ixodes pomerantzevi Serdyukova, 1941.
Известен в Приморском крае, Прокормители
– мелкие млекопитающие. Находки редки, био-
логия изучена слабо (Окулова и др., 1986).
Благодарности
Результаты исследования получены при поддерж-
ке Программы повышения конкурентоспособности
Национального исследовательского Томского государ-
ственного университета.
Литература
Беклемишев В.Н. 1970. Биоценологические основы срав-
нительной паразитологии. М.: Наука. 501 с.
Догель В.А. 1947. Курс общей паразитологии. Л: Учпед-
гиз. 372 с.
Жигилева О.Н. 2013. Гельминтофауна мышей (Apodemus
agrarius, Mus musculus) селитебных и межселенных
территорий Западной Сибири // Поволжский эколо-
гический журнал. №2. С. 156–163.
Красная книга Иркутской области. Иркутск: Время
странствий, 2010. 478 с.
Красная книга Приморского края: Животные. Редкие и
находящиеся под угрозой исчезновения виды живот-
ных. Владивосток: АВК «Апельсин», 2005. 408 с.
Красная книга Республики Бурятия: Редкие и находя-
щиеся под угрозой исчезновения виды животных,
растений и грибов. Улан-Удэ: Изд-во БНЦ СО РАН,
2013. 688 с.
Красная книга Российской Федерации. Животные. М.:
Астрель, 2001. 862 с.
Лабунец Н.Ф., Дегтярева Л.В. 1985. О блохах летучих
мышей на Северном Кавказе // Паразитология. Вып.
19(3). С. 177–180.
Медведев С.Г., Станюкович М.К., Тиунов М.П., Фарафо-
нова Г.В. 1991. Эктопаразиты летучих мышей Даль-
него Востока // Паразитология. Вып. 25(1). С. 27–37.
Окулова Н.М., Юдаев О.Н., Константинов О.К. 1986. К
экологии клеща Ixodes pomerantzevi (Ixodidae) // Па-Ixodidae) // Па-) // Па-
разитология. Вып. 20(1). С. 11–14.
Орлова М.В., Жигалин А.В., Орлов О.Л., Голованова
А.П. 2017. Эктопаразиты остроухой ночницы Myo-
tis blythii (Chiroptera: Vespertilionidae) заповедника
«Тигирекский» // Труды Тигирекского заповедника.
Вып. 9. С. 95–99.
Тифлов В.Е., Скалон О.И., Ростигаев В.А. 1977. Опреде-
литель блох Кавказа. Ставрополь: Ставропольское
книжное издательство. 278 с.
Чирний В.И. 2004. Материалы к изучению фауны блох (Si-Si-
phonaptera) Крымского полуострова // Вопросы разви-) Крымского полуострова // Вопросы разви-
тия Крыма. Симферополь: Таврия-Плюс. С. 193–196.
Acosta L., León-Quinto T., Bornay-Llinares F.J., Simón
M.A., Esteban J.G. 2011. Helminth parasites in faecal
samples from the endangered Iberian lynx (Lynx pardi-
nus) // Veterinary Parasitology. Vol. 179(1–3). P. 175–
179. DOI: 10.1016/j.vetpar.2011.01.058
Afrane Y.A., Githeko A.K., Yan G. 2012. The ecology of Anoph-
eles mosquitoes under climate change: case studies from
the eects of deforestation in East African highlands // An-
nals of the New York Academy of Sciences. Vol. 1249. P.
204–210. DOI: 10.1111/j.1749-6632.2011.06432.x
Alekseev A.N., Burenkova L.A., Podboronov V.M.,
Chunikhin S.P. 1995. Bacteriocidal Qualities of Ixodid
Tick (Acarina: Ixodidae) Salivary Cement Plugs and
Their Changes Under the Inuence of a Viral Tick-
Borne Pathogen // Journal of Medical Entomology. Vol.
32(5). P. 578–582. DOI: 10.1093/jmedent/32.5.578
Altizer S., Nunn C.L., Lindenfors P. 2007. Do threatened
hosts have fewer parasites? A comparative study in pri-
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
12
mates // Journal of Animal Ecology. Vol. 76. P. 304–
314. DOI: 10.1111/j.1365-2656.2007.01214.x
Amundsen P.A., Laerty K.D., Knudsen R., Primicerio R.,
Klemetsen A., Kuris A.M. 2009. Food web topology
and parasites in the pelagic zone of a subarctic lake
// Journal of Animal Ecology. Vol. 78(3). P. 563–572.
DOI: 10.1111/j.1365-2656.2008.01518.x
Avise J.C. 1994. Molecular markers, natural history and evo-
lution. New York: Chapman and Hall. 511 p.
Ayala S.C., Hutchings R. 1974. Hemogregarines (Protozoa:
Sporozoa) as zoogeographical tracers of Galapagos Is-
land lava lizards and marine iguanas // Herpetologica.
Vol. 30(2). P. 128–132.
Bender L.C., Schmitt S.M., Carlson E., Hauer J.B., Beyer D.E.
2005. Mortality of Rocky Mountain elk in Michigan due
to meningeal worm // Journal of Wildlife Diseases. Vol.
41(1). P. 134–140. DOI: 10.7589/0090-3558-41.1.134
Biek R., Drummond A., Poss M. 2006. A virus reveals popu-
lation structure and recent demographic history of its
carnivore host // Science. Vol. 311(5760). P. 538–541.
DOI: 10.1126/science.1121360
Blackwell A.D., Tamayo M.A., Beheim B., Trumble B.C.,
Stieglitz J., Hooper P.L., Martin M., Kaplan H., Gur-
ven M. 2015. Helminth infection, fecundity, and age of
rst pregnancy in women // Science. Vol. 350(6263). P.
970–972. DOI: 10.1126/science.aac7902
Blanchet S., Rey O., Berthier P., Lek S., Loot G. 2009. Evi-Evi-
dence of parasitemediated disruptive selection on ge-
netic diversity in a wild sh population // Molecular
Ecology. Vol. 18(6). P. 1112–1123. DOI: 10.1111/j.1365-
294X.2009.04099.x
Bradley C.A., Altizer S. 2007. Urbanization and the ecology
of wildlife diseases // Trends in Ecology and Evolution.
Vol. 22(2). P. 95–102. DOI: 10.1016/j.tree.2006.11.001
Bruyndonckx N., Biollaz F., Dubey S., Goudet J., Christe
P. 2010. Mites as biological tags of their hosts // Mo-
lecular Ecology. Vol. 19(13). P. 2770–2778. DOI:
10.1111/j.1365-294X.2010.04699.x
Byers J. 1999. The Distribution of an Introduced Mollusc
and its Role in the Long-term Demise of a Native Con-
familial Species // Biological Invasions. Vol. 1(4). P.
339–352. DOI: 10.1023/A:1010038001768
Carlson C.J., Burgio K.R., Dougherty E.R., Phillips A.J., Bue-
no V.M., Clements C.F., Castaldo G., Dallas T.A., Ciza-
uskas C.A., Cumming G.S., Doсa J., Harris N.C., Jovani
R., Mironov S., Muellerklein O.C., Proctor H.C., Getz
W.M. 2017. Parasite biodiversity faces extinction and re-
distribution in a changing climate // Science Advances.
Vol. 3(9). Art. e1602422. DOI: 10.1126/sciadv.1602422
Cizauskas C.A., Carlson C.J., Burgio K.R., Clements C.F.,
Dougherty E.R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-
site vulnerability to climate change: an evidence-based
functional trait approach // Royal Society Open Sci-
ence. Vol. 4(1). Art. 160535. DOI:10.1098/rsos.160535
Clay T. 1949. Some problems in the evolution of a group of
ectoparasites // Evolution. Vol. 3(4). P. 279–299. DOI:
10.1111/j.1558-5646.1949.tb00030.x
Clayton D.H., Johnson K.P., Al-Tamini S. 2003. The ecological
basis of coevolutionary history // Tangled Trees: Phylog-
eny, Cospeciation and Coevolution / R.D.M. Page (Ed.).
Chicago: The University of Chicago Press. P. 310–341.
Cliord D.L., Mazet J.A.K., Dubovi E.J., Garcelon D.K.,
Coonan T.J., Conrad P.A., Munson L. 2006. Pathogen
exposure in endangered island fox (Urocyon littoralis)
populations: implications for conservation management
// Biological Conservation. Vol. 131(2). P. 230–243.
DOI: 10.1016/j.biocon.2006.04.029
Cohen J.E., Pimm S.L., Yodzis P., Saldãna J. 1993. Body
sizes of animal predators and animal prey in food
webs // Journal of Animal Ecology. Vol. 62(1). P. 67–
78. DOI: 10.2307/5483
Combes C. 1996. Parasites, biodiversity and ecosystem sta-
bility // Biodiversity and Conservation. Vol. 5(8). P.
953–962. DOI: 10.1007/BF00054413
Combes C. 2005. The Art of Being a Parasite. Chicago, Lon-
don: University of Chicago Press. 291 p.
Criscione C.D., Blouin M.S. 2004. Life cycles shape parasite
evolution: comparative population genetics of salmon
trematodes // Evolution. Vol. 58(1). P. 198–202. DOI:
10.1554/03-359
Cumming G.S., van Vuuren D.P. 2006. Will climate change
aect ectoparasite species ranges? // Global Ecol-
ogy and Biogeography. Vol. 15(5). P. 486–497. DOI:
10.1111/j.1466-822X.2006.00241.x
Cunningham A.A., Daszak P., Rodriguez J.P. 2003. Pathogen
pollution: dening a parasitological threat to biodiversity
conservation // Journal of Parasitology. Vol. 89. P. 78–83.
Dabert J., Alberti G. 2008: A new species of the genus Cora-
ciacarus (Gabuciniidae, Pterolichoidea) from the huia
Heteralocha acutirostris (Callaeatidae, Passeriformes),
an extinct bird species from New Zealand // Journal of
Natural History. Vol. 42(43–44). P. 2763–2776. DOI:
10.1080/00222930802354142
Dawkins R., Krebs J.R. 1979. Arms races between and
within species // Proceedings of the Royal Society B:
Biological Sciences. Vol. 205(1161). P. 489–511. DOI:
10.1098/rspb.1979.0081
Dobson A., Laerty K.D., Kuris A.M., Hechinger R.F., Jetz W.
2008. Homage to Linnaeus: how many parasites? How
many hosts? // Proceedings of the National Academy of
Sciences of the United States of America. Vol. 105(Sup-
pl. 1). P. 11482–11489. DOI: 10.1073/pnas.0803232105
Duell E. 2001. Curative power of fever // Lancet.
Vol. 358(9289). Art. 1276. DOI: 10.1016/S0140-
6736(01)06374-7
Duncan R.P., Blackburn T.M. 2004. Extinction and ende-
mism in the New Zealand avifauna // Global Ecol-
ogy and Biogeography. Vol. 13(6). P. 509–517. DOI:
10.1111/j.1466-822X.2004.00132.x
Dunn R.R. 2009. Coextinction: anecdotes, models, and spec-
ulation // Holocene extinctions / S.T. Turvey (Ed.). Ox-
ford: University Press. P. 167–180. DOI: 10.1093/acpro
f:oso/9780199535095.003.0008
Dunn R.R. Harris N.C. Colwell R.K., Koh L.P., Sodhi N.S.
2009. The sixth mass coextinction: are most endangered
species parasites and mutualists? // Proceedings of the
Royal Society B: Biological Sciences. Vol. 276(1670).
P. 3037–3045. DOI: 10.1098/rspb.2009.0413
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
13
Dunne J.A., Laerty K.D., Dobson A.P., Hechinger R.F.,
Kuris A.M., Martinez N.D., McLaughlin J.P., Mourit-
sen K.N., Poulin R., Reise K., Stouer D.B., Thieltges
D.W., Williams R.J., Zander K.D. 2013. Parasites af-
fect food web structure primarily through increased
diversity and complexity // PLoS Biol. Vol. 11(6). Art.
e1001579. DOI: 10.1371/journal.pbio.1001579
Durden L.A., Keirans J.E. 1996. Host-parasite coextinc-Host-parasite coextinc-
tion and the plight of tick conservation // American
Journal of Entomology. Vol. 42(2). P. 87–91. DOI:
10.1093/ae/42.2.87
Eichler W. 1942. Die Entfaltungsregel und andere Gestzm�-ler W. 1942. Die Entfaltungsregel und andere Gestzm�-er W. 1942. Die Entfaltungsregel und andere Gestzm�-
zigkeiten in den parasitogenetischen Beziehungen der
Mallophagen und anderer stándiger Parasiten zu ihren-
Wirten // Zoologische Anzeiger. Vol. 137. P. 77–83.
Fahrenholz H. 1913. Ectoparasiten und Abstammungslehre //
Zoologische Anzeiger. Vol. 41. P. 371–374.
Fleming J.O. 2013. Helminth therapy and multiple sclerosis
// International Journal for Parasitology. Vol. 43(3–4). P.
259–274. DOI: 10.1016/j.ijpara.2012.10.025
Gaither M.R., Aeby G., Vignon M., Meguro Y., Rigby M.,
Runyon C., Toonen R.J., Wood C.L., Bowen B.W. 2013.
An invasive sh and the time-lagged spread of its para-
site across the Hawaiian Archipelago // PLoS One. Vol.
8(2). Art. e56940. DOI: 10.1371/journal.pone.0056940
Glazner J.T., Devlin B., Ellstrand N.C. 1988. Biochemical
and morphological evidence for host race evolution in
desert mistletoe, Phoradendron californicum (Viscace-
ae) // Plant Systematics and Evolution. Vol. 161(1–2). P.
13–21. DOI: 10.1007/BF00936008
Gompper M.E., Williams E.S. 1998. Parasite conserva-
tion and the black-footed ferret recovery program //
Conservation Biology. Vol. 12(3). P. 730–732. DOI:
10.1111/j.1523-1739.1998.97196.x
Gómez A., Nichols E. 2013. Neglected wild life: Parasitic
biodiversity as a conservation target // International
Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. Vol.
2(1). P. 222–227. DOI: 10.1016/j.ijppaw.2013.07.002
Gorrell J., Schulte-Hostedde A. 2008. Patterns of parasit-
ism and body size in red squirrels (Tamiasciurus hud-
sonicus) // Canadian Journal of Zoology. Vol. 86(2). P.
99–107. DOI: 10.1139/Z07-123
Hamer S.A., Lehrer E., Magle S.B. 2012. Wild birds as
sentinels for multiple zoonotic pathogens along an
urban to rural gradient in Greater Chicago, Illinois //
Zoonoses Public Health. Vol. 59(5). P. 355–364. DOI:
10.1111/j.1863-2378.2012.01462.x
Hartigan A., Phalen D.N., Šlapeta J. 2010. Museum material
reveals a frog parasite emergence after the invasion of
the cane toad in Australia // Parasites and Vectors. Vol.
3(1). Art. 50. DOI: 10.1186/1756-3305-3-50
Hoelzel A.R., Halley J., O’Brien S.J., Campagna C., Arnbom
T., LeBoeuf B., Ralls K., Dover G.A. 1993. Elephant
seal genetic variation and the use of simulation models
to investigate historical population bottlenecks // Jour-
nal of Heredity. Vol. 84(6). P. 443–449.
Holdo R.M., Sinclair A.R.E., Dobson A.P., Metzger K.L.,
Bolker B.M., Ritchie M.E., Holt R.D. 2009. A disease-
mediated trophic cascade in the Serengeti and its im-
plications for ecosystem C // PLoS Biol. Vol. 7(9). Art.
e1000210. DOI: 10.1371/journal.pbio.1000210
Hudson P.J., Rizzoli A.P., Grenfell B.T., Heesterbeek H.,
Dobson A.P. 2002. The Ecology of Wildlife Diseases.
Oxford: Oxford University Press. 197 p.
Hudson P.J., Dobson A.P., Laerty K.D. 2006. Is a healthy
ecosystem one that is rich in parasites? // Trends in
Ecology and Evolution. Vol. 21(7). P. 381–385. DOI:
10.1016/j.tree.2006.04.007
Hugot J.-P. 1999. Primates and their pinworm parasites: the
Cameron hypothesis revisited // Systematic Biology. Vol.
48(3). P. 523–546. DOI: 10.1080/106351599260120
IUCN. 2012. IUCN Red List Categories and Criteria: Ver-
sion 3.1, second ed. Gland, Switzerland and Cambridge,
UK: IUCN. 32 p.
Jaworski D.C., Simmen F.A., Lamoreaux W., Coons L.B.,
Muller M.T., Needham G.R. 1995. A secreted calretin-
ulin protein in ixodid tick (Amblyomma americanum)
saliva // Journal of Insect Physiology. Vol. 41(4). P.
369–375. DOI: 10.1016/0022-1910(94)00107-R
Jerome C.A., Ford B.A. 2002a. Comparative population
structure and genetic diversity of Arceuthobium ameri-
canum (Viscaceae) and its Pinus host species: insight
into host–parasite evolution in parasitic angiosperms
// Molecular Ecology. Vol. 11(3). P. 407–420. DOI:
10.1046/j.0962-1083.2002.01462.x
Jerome C.A., Ford B.A. 2002b. The discovery of three genet-
ic races of the dwarf mistletoe Arceuthobium america-
num (Viscaceae) provides insight into the evolution of
parasitic angiosperms // Molecular Ecology. Vol. 11(3).
P. 387–405. DOI: 10.1046/j.0962-1083.2002.01463.x
Jetz W., Wilcove D., Dobson A.P. 2007. Projected impacts of
climate and land-use change on the global diversity of
birds // PLoS Biol. Vol. 5(6). Art. e157. DOI: 10.1371/
journal.pbio.0050157
Karczewski J., Endris R., Connolly T.M. 1994. Disagregin is
a brinogen receptor antagonist lacking the Arg-Gly-Asp
sequence from the tick, Ornithodoros moubata. // Journal
of Chemical Biology. Vol. 269(9). P. 6702–6708.
Keller P.M., Waxman L., Amold B.A., Schultz L.D., Condra C.,
Connolly T.M. 1993. Cloning of the cDNA and expression
of moubatin, an inhibitor of platelet aggregation // Journal
of Chemical Biology. Vol. 268(8). P. 5450–5456.
Kieser J.A. 1991. Fluctuating odontometric asymmetry, mor-
phological variability, and genetic monomorphism in
the cheetah Acinonyx jubatus // Evolution. Vol. 45(5). P.
1175–1183. DOI: 10.1111/j.1558-5646.1991.tb04384.x
Klassen G.J. 1992. Coevolution: a history of the macroevolu-
tionary approach to studying host–parasite associations
// Journal of Parasitology. Vol. 78(4). P. 573–587. DOI:
10.2307/3283532
Koh L.P., Dunn R.D., Sodhi N.S., Colwell R.K., Proctor
H.C., Smith V.S. 2004. Species co-extinctions and the
biodiversity crisis // Science. Vol. 305(5690). P. 1632–
1634. DOI: 10.1126/science.1101101
Kubes M., Fuchsberger N., Labuda M., Zuová E., Nuttall
P.A. 1994. Salivary gland extracts of partially fed Der-
macentor reticulatus ticks decrease natural killer cell
activity in vitro // Immunology. Vol. 82(1). P. 113–116.
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
14
Kuris A.M., Hechinger R.F., Shaw J.C., Whitney K.L., Aguirre-
Macedo L., Boch C.A., Dobson A.P., Dunham E.J., Fre-
densborg B.L., Huspeni T.C., Lorda J., Mababa L., Mancini
F.T., Mora A.B., Pickering M., Talhouk N.L., Torchin M.E.,
Laerty K.D. 2008. Ecosystem energetic implications of
parasite and free-living biomass in three estuaries // Nature.
Vol. 454(7203). P. 515–518. DOI: 10.1038/nature06970
Kuwabara K., Pinsky D.J., Schmidt A.M., Benedict C., Brett
J., Ogawa S., Broekman M.J., Marcus A.J., Sciacca
R.R., Michalak M., Wang F., Pan Y.-C., Grunfeld S.,
Patton S., Malinski T., Stern D.M., Ryan J. 1995. Calre-
ticulin, an antithrombotic agent which binds to vitamin
K-dependent coagulation factors, stimulates endothelial
nitric oxide production, and limits thrombosis in canine
coronary arteries // Journal of Biological Chemistry. Vol.
270(14). P. 8179–8187. DOI: 10.1074/jbc.270.14.8179
Kwak M.L. 2018. Australia’s vanishing eas (Insecta: Si-
phonaptera): a case study in methods for the assessment
and conservation of threatened ea species // Journal
of Insect Conservation. Vol. 22(3–4). P. 545–550. DOI:
10.1007/s10841-018-0083-7
von Ihering H. 1891. On the ancient relations between New Zea-
land and South America // Transactions and Proceedings
of the Royal Society of New Zealand. Vol. 24. P. 431–445.
von Ihering H. 1902. Die Helminthen als Hilfsmittel der
Zoogeographischen Forschung // Zoologischer Anzei-
ger. Vol. 26. P. 24–51.
LaFee S. 2006. Parasites lost. Of lice and men and the val-
ue of small, disgusting things. San Diego: The San
Diego Union-Tribune. Available from: http://legacy.
sandiegouniontribune.com/news/science/20061102-
9999-lz1c02parasit.html
Laerty K.D. 2012. Biodiversity loss decreases parasite di-
versity: theory and patterns // Philosophical Transac-
tions of the Royal Society of London. Series B, Bio-
logical Sciences. Vol. 367(1604). P. 2814–2827. DOI:
10.1098/rstb.2012.0110
Laerty K.D., Kuris A.M. 2009. Parasitic castration: the evolu-
tion and ecology of body snatchers // Trends in Parasitolo-
gy. Vol. 25(12). P. 564–572. DOI: 10.1016/j.pt.2009.09.003
Laerty K.D., Dobson A.P., Kuris A.M. 2006. Parasites
dominate food web links // Proceedings of the Na-
tional Academy of Sciences of the United States of
America. Vol. 103(30). P. 11211–11216. DOI: 10.1073/
pnas.0604755103
Lively C.M., Dybdahl M.F., Jokela J., Osnas E.E., Delph L.F.
2004. Host sex and local adaptation by parasites in a
snail-trematode interaction // American Naturalist. Vol.
164(Suppl. 5). P. 6–18. DOI: 10.1086/424605
Lovich J.E., Ennen J.R., Agha M., Gibbons W.J. 2018.
Where have all the turtles gone, and why does it mat-
ter? // BioScience. Vol. 68(10). P. 771–781. DOI:
10.1093/biosci/biy095
Meusnier I., Olsen J.L., Stam W.T., Destombe C., Valero
M. 2001. Phylogenetic analyses of Caulerpa taxifolia
(Chlorophyta) and of its associated bacterial microora
provide clues to the origin of the Mediterranean intro-
duction // Molecular Ecology. Vol. 10(4). P. 931–946.
DOI: 10.1046/j.1365-294X.2001.01245.x
Mey E. 1990. Eine neue ausgestorbene Vogel-Ischnozere von
Neuseeland, Huiacola extinctus (Insecta, Phthiraptera)
// Zoologischer Anzeiger. Vol. 224(1/2). P. 49–73.
Mihalca A.D., Gherman C.M., Cozma V. 2011. Coendangered
hard-ticks: threatened or threatening? // Parasites and Vec-
tors. Vol. 4(1). Art. 71. DOI: 10.1186/1756-3305-4-71
Millán J., Casanova J.C. 2007. Helminth parasites of the en-
dangered Iberian lynx (Lynx pardinus) and sympatric
carnivores // Journal of Helminthology. Vol. 81(4). P.
377–380. DOI: 10.1017/S0022149X07869203
Millán J., Ruiz-Fons F., Márquez F.J., Viota M., López-Bao
J.V., Martín Mateo M.P. 2007. Ectoparasites of the en-
dangered Iberian lynx Lynx pardinus and sympatric
wild and domestic carnivores in Spain // Medical and
Veterinary Entomology. Vol. 21(3). P. 248–254. DOI:
10.1111/j.1365-2915.2007.00696.x
Minchella D.J., Scott M.E. 1991. Parasitism: cryptic determi-
nant of animal community structure // Tree. Vol. 6(8). P.
250–254. DOI: 10.1016/0169-5347(91)90071-5
Moir M.L., Vesk P.A., Brennan K.E.C., Poulin R., Hughes
L., Keith D.A., McCarthy M.A., Coates D.J. 2012.
Considering extinction of dependent species dur-
ing translocation, ex situ conservation, and assisted
migration of threatened hosts // Conservation Biol-
ogy. Vol. 26(2). P. 199–207. DOI: 10.1111/j.1523-
1739.2012.01826.x
Musselman L.J., Parker C. 1981. Studies on Indigo Witch-
weed, the American strain of Striga gesnerioides
(Scrophulariaceae) // Weed Science. Vol. 29(5). P. 594–
596. DOI: 10.1017/S0043174500063797
Ndao M., Magnus E., Buscher P., Geerts S. 2004. Trypano-
soma vivax: a simplied protocol for in vivo growth,
isolation and cryopreservation // Parasite. Vol. 11(1). P.
103–106. DOI: 10.1051/parasite/2004111103
Nichols E., Gómez A. 2011. Conservation education needs
more parasites // Biological Conservation. Vol. 144(2).
P. 937–941. DOI: 10.1016/j.biocon.2010.10.025
Norton D.A., Carpenter M.A. 1998. Mistletoes as parasites:
host specicity and speciation // Trends in Ecology
and Evolution. Vol. 13(3). P. 101–105. DOI: 10.1016/
S0169-5347(97)01243-3
Orlova M.V., Zhigalin A.V. 2014. New records of the bat y
Basilia mongolensis in the mountains of Asia (Diptera)
// Vespertilio. Vol. 17. P. 127–128.
Orlova M.V., Orlov O.L. 2018. Contribution to the Ectopara-
site Fauna of Bats (Chiroptera: Vespertilionidae, Rhi-
nolophidae) of Crimea // Entomological Review. Vol.
98(3). P. 319–323. DOI: 10.1134/S0013873818030089
Orlova M.V., Orlov O.L., Kruskop S.V., Bernikov K.A.
2013. Possibilities for identication of cryptic species
of Chiroptera using host-specic ectoparasites // Biol-
ogy Bulletin. Vol. 40(1). P. 111–113. DOI: 10.1134/
S1062359013010111
Orlova M.V., Zhigalin A.V., Zhigalina D.I. 2015. Parasitic
gamasid mites (Acari: Mesostigmata) associated with
bats (Chiroptera: Vespertilionidae) on Kunashiri Is-
land, with a description of a new species Spinturnix
uchikawai sp. nov. // Acta Arachnologica. Vol. 64(1). P.
27–31. DOI: 10.2476/asjaa.64.27
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
15
Page R.D.M. 2003. Introduction // Tangled Trees: Phyloge-
ny, Cospeciation and Coevolution / R.D.M. Page (Ed.).
Chicago: University of Chicago Press. P. 1–21.
Page R.D., Lee P.L., Becher S.A., Griths R., Clayton D.H.
1998. A dierent tempo of mitochondrial DNA evolu-
tion in birds and their parasitic lice // Molecular Phy-
logenetics and Evolution. Vol. 9(2). P. 276–293. DOI:
10.1006/mpev.1997.0458
Pang J., Hoelzel A.R., Song Y., Zeng Z., Zhang Y. 2003. Lack
of mtDNA control region variation in Hainan Eld’s
deer: consequences of a recent population bottleneck
// Conservation Genetics. Vol. 4(1). P. 109–112. DOI:
10.1023/A:1021817925740
Patz J.A., Daszak P., Tabor G.M., Aguirre A.A., Pearl M., Ep-
stein J., Wolfe N.D., Kilpatrick A.M., Foufopoulos J., Mo-
lyneux D., Bradley D.J. 2004. Unhealthy landscapes: pol-
icy recommendations on land use change and infectious
disease emergence // Environmental Health Perspectives.
Vol. 112(10). P. 1092–1098. DOI: 10.1289/ehp.6877
Pedersen A.B., Jones K.E., Nunn C.L., Altizer S. 2007. Infec-
tious diseases and extinction risk in wild mammals //
Conservation Biology. Vol. 21(5). P. 1269–1279. DOI:
10.1111/j.1523-1739.2007.00776.x
Poulin R., Morand S. 2000. The diversity of parasites //
Quarterly Review of Biology. Vol. 75(3). P. 277–293.
DOI: 10.1086/393500
Poulin R., Morand S. 2004. Parasite Biodiversity. Washing-
ton DC: Smithsonian Institute Scholarly Press. 216 p.
Rael T.R., Martin L.B., Rohr J.R. 2008. Parasites as preda-
tors: unifying natural enemy ecology // Trends in Ecol-
ogy and Evolution. Vol. 23(11). P. 610–618. DOI:
10.1016/j.tree.2008.06.015
Ramachandra R.N., Wikel S.K. 1992. Modulation of host im-
mune responses by ticks (Acari: Ixodidae): eect of sali-
vary gland extracts on host macrophages and lymphocyte
cytokine production // Journal of Medical Entomology.
Vol. 29(5). P. 818–826. DOI: 10.1093/jmedent/29.5.818
Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. 2011. The
host-specic parasite Nippotaenia mogurndae conrms
introduction vectors of the sh Perccottus glenii in the Vol-
ga river basin // Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27(5).
P. 1226–1231. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2011.01792.x
Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. 2017. Detection
of a neglected introduction event of the invasive sh Perc-
cottus glenii using parasitological analysis // Hydrobiologia.
Vol. 788(1). P. 65–73. DOI: 10.1007/s10750-016-2987-0
Ribeiro J.M.C., Makoul G.T., Levine J., Robinson D.R.,
Spielman A. 1985. Antihemostatic, antiinammatory,
and immunosuppressive properties of the saliva of a
tick, Ixodes dammini // Journal of Experimental Medi-
cine. Vol. 161(2). P. 332–344.
Ribeiro J.M.C., Endris T.M., Endris R. 1991. Saliva of the
soft tick, Ornithodoros moubata, contains anti-plate-
let and apyrase activities // Comparative Biochem-
istry and Physiology. Vol. 100(1). P. 109–112. DOI:
10.1016/0300-9629(91)90190-N
Riley S.P.D., Foley J., Chomel B. 2004. Exposure to feline
and canine pathogens in bobcats and gray foxes in ur-
ban and rural zones of a National Park in California //
Journal of Wildlife Diseases. Vol. 40(1). P. 11–22. DOI:
10.7589/0090-3558-40.1.11
Robar N., Burness G., Murray D.L. 2010. Tropics, trophics
and taxonomy: the determinants of parasite-associated
host mortality // Oikos. Vol. 119(8). P. 1273–1280. DOI:
10.1111/j.1600-0706.2009.18292.x
Rodriguez A., Carbonell E. 1998. Gastrointestinal parasites
of the Iberian lynx and other wild carnivores from cen-
tral Spain // Acta Parasitologica. Vol. 43(3). P. 128–136.
Rohr J.R., Dobson A.P., Johnson P.T.J., Kilpatrick A.M.,
Paull S.H., Rael T.R., Ruiz-Moreno D., Thomas M.B.
2011. Frontiers in climate change-disease research //
Trends in Ecology and Evolution. Vol. 26(6). P. 270–
277. DOI: 10.1016/j.tree.2011.03.002
Schwanz L. 2008. Chronic parasitic infection alters repro-
ductive output in deer mice // Behavioral Ecology and
Sociobiology. Vol. 62(8). P. 1351–1358. DOI: 10.1007/
s00265-008-0563-y
Ševčik M., Benda P., Uhrin M. 2011. First records of the bat
y Phthiridium biarticulatum (Diptera: Nycteribiidae)
in Crimea // Vespertilio. Vol. 15. P. 159–160.
Sig A.K., Guney M., Guclu A.U., Ozmen E. 2017. Medici-
nal leech therapy – an overall perspective // Integra-
tive Medicine Research. Vol. 6(4). P. 337–343. DOI:
10.1016/j.imr.2017.08.001
Singh A.P. 2010. Medicinal leech therapy (hirudotherapy): a brief
overview // Complementary Therapies in Clinical Practice.
Vol. 16(4). P. 213–215. DOI: 10.1016/j.ctcp.2009.11.005
Singh K., Davies G., Alenazi Y., Eaton J.R.O., Kawamura A.,
Bhattacharya S. 2017. Yeast surface display identies a
family of evasins from ticks with novel polyvalent CC
chemokine-binding activities // Scientic Reports. Vol.
7(1). Art. 4267. DOI: 10.1038/s41598-017-04378-1
Stanyukovich M.K. 1997. Keys to the gamasid mites (Ac-
ari: Parasitiformes, Mesostigmata, Macronyssoidea et
Laelaptoidea) parasiting bats (Mammalia, Chiroptera)
from Russia and adjacent countries // Rudolst�dter
naturhistorische Schriften. Vol. 7. P. 13–46.
Stork N.E., Lyal C.H. 1993. Extinction or ‘co-extinc-
tion’ rates? // Nature. Vol. 366(6453). P. 307. DOI:
10.1038/366307a0
Strachan D.P. 1989. Hay fever, hygiene, and household size
// British Medical Journal. Vol. 299(6710): 1259–1260.
DOI: 10.1136/bmj.299.6710.1259
Strona G., Galli P., Fattorini S. 2013. Fish parasites resolve
the paradox of missing coextinctions // Nature Commu-
nications. Vol. 4. Art. 1718. DOI: 10.1038/ncomms2723
Summers K., McKeon S., Sellars J., Keusenkothen M., Mor-
ris J., Gloeckner D., Pressley C., Price B., Snow H.
2003. Parasitic exploitation as an engine of diversity
// Biological Reviews. Vol. 78(4). P. 639–675. DOI:
10.1017/S146479310300616X
Telfer S., Lambin X., Birtles R., Beldomenico P., Burthe S.,
Paterson S., Begon M. 2010. Species interactions in a
parasite community drive infection risk in a wildlife
population // Science. Vol. 330(6001). P. 243–246. DOI:
10.1126/science.1190333
Templeton A.R., Robertson R.J., Brisson J., Strasburg J.
2001. Disrupting evolutionary processes: the eect of
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
16
habitat fragmentation on collared lizards in the Mis-
souri Ozarks // Proceedings of the National Academy of
Sciences of the United States of America. Vol. 98(10).
P. 5426–5432. DOI: 10.1073/pnas.091093098
Thomas F., Renaud F., Guegan J.F. 2005. Parasitism and Eco-
systems. New York: Oxford University Press. 221 p.
Thomas F., Guégan J.-F., Renaud F. 2009. Ecology and Evo-
lution of Parasitism. New York: Oxford University
Press. 240 p.
Tompkins D.M., Greenman J.V., Hudson P.J. 2001. Dif-
ferential impact of a shared nematode parasite on two
gamebird hosts: implications for apparent competition
// Parasitology. Vol. 122. P. 187–193. DOI: 10.1017/
S0031182001007247
Tompkins D.M., Sainsbury A.W., Nettleton P., Buxton D.,
Gurnell J. 2002. Parapoxvirus causes a deleterious dis-
ease in red squirrels associated with UK population
declines // Proceedings of the Royal Society of Lon-
don. Series B, Biological Sciences. Vol. 269(1490). P.
529–533. DOI: 10.1098/rspb.2001.1897
Vesk P.A., McCarthy M.A., Moir M.L. 2010. How many
hosts? Modelling host breadth from eld samples //
Methods in Ecology and Evolution. Vol. 1(3). P. 292–
299. DOI: 10.1111/j.2041-210X.2010.00026.x
Waxman L., Smith D.E., Arcuri K.E., Vlasuk G.P. 1990.
Tick anticoagulant peptide (TAP) is a novel inhibitor of
blood coagulation factor Xa // Science. Vol. 248(4955).
P. 593–596. DOI: 10.1126/science.2333510
Wegner K.M., Reusch T.B.H., Kalbe M. 2003. Multiple parasites
are driving major histocompatibility complex polymor-
phism in the wild // Journal of Evolutionary Biology. Vol.
16(2). P. 224–232. DOI: 10.1046/j.1420-9101.2003.00519.x
Weinstock J.V. 2012. The worm returns // Nature. Vol.
491(7423). P. 183–185. DOI: 10.1038/491183a
Whiteman N.K., Parker P.G. 2005. Using parasites to infer
host population history: a new rationale for parasite
conservation // Animal Conservation. Vol. 8(2). P. 175–
181. DOI: 10.1017/S1367943005001915
Whiteman N.K., Santiago-Alarcon D., Johnson K.P., Parker
P.G. 2004. Dierences in straggling rates between two
genera of dove lice (Insecta: Phthiraptera) reinforce
population genetic and cophylogenetic patterns // Inter-
national Journal for Parasitology. Vol. 34(10). P. 1113–
1119. DOI: 10.1016/j.ijpara.2004.06.003
Whitrow M. 1990. Wagner-Jauregg and fever therapy //
Medical History. Vol. 34(3). P. 294–310. DOI: 10.1017/
S0025727300052431
Windsor D.A. 1990. Heavenly hosts // Nature. Vol. 348(6297).
P. 104. DOI: 10.1038/348104c0
Windsor D.A. 1995. Equal rights for parasites // Conserva-
tion Biology. Vol. 9(1). P. 1–2. DOI: 10.1046/j.1523-
1739.1995.09010001.x
Windsor D.A. 1998. Most of the species on Earth are par-
asites // International Journal for Parasitology. Vol.
28(12). P. 1939–1941.
Wirth T., Meyer A., Achtman M. 2005. Deciphering host
migrations and origins by means of their microbes //
Molecular Ecology. Vol. 14(11). P. 3289–3306. DOI:
10.1111/j.1365-294X.2005.02687.x
Zimmer C. 2000. Parasite Rex: Inside the World of Nature’s
Most Dangerous Creatures. New York: Touchstone-Si-
mon and Schuster. 320 p.
Zuber D., Widmer A. 2000. Genetic evidence for host speci-
city in the hemiparasitic Viscum album L. (Viscaceae)
// Molecular Ecology. Vol. 9(8). P. 1069–1073. DOI:
10.1046/j.1365-294x.2000.00963.x
Zuk M. 2007. Riddled with Life: Friendly Worms, Ladybug
Sex, and the Parasites that Make us Who we are. Or-
lando: Harcourt Books. 240 p.
References
Acosta L., León-Quinto T., Bornay-Llinares F.J., Simón
M.A., Esteban J.G. 2011. Helminth parasites in faecal
samples from the endangered Iberian lynx (Lynx pardi-
nus). Veterinary Parasitology 179(1–3): 175–179. DOI:
10.1016/j.vetpar.2011.01.058
Afrane Y.A., Githeko A.K., Yan G. 2012. The ecology of
Anopheles mosquitoes under climate change: case stud-
ies from the eects of deforestation in East African high-
lands. Annals of the New York Academy of Sciences 1249:
204–210. DOI: 10.1111/j.1749-6632.2011.06432.x
Alekseev A.N., Burenkova L.A., Podboronov V.M.,
Chunikhin S.P. 1995. Bacteriocidal Qualities of Ixodid
Tick (Acarina: Ixodidae) Salivary Cement Plugs and
Their Changes Under the Inuence of a Viral Tick-
Borne Pathogen. Journal of Medical Entomology 32(5):
578–582. DOI: 10.1093/jmedent/32.5.578
Altizer S., Nunn C.L., Lindenfors P. 2007. Do threatened
hosts have fewer parasites? A comparative study in pri-
mates. Journal of Animal Ecology 76: 304–314. DOI:
10.1111/j.1365-2656.2007.01214.x
Amundsen P.A., Laerty K.D., Knudsen R., Primicerio R.,
Klemetsen A., Kuris A.M. 2009. Food web topology
and parasites in the pelagic zone of a subarctic lake.
Journal of Animal Ecology 78(3): 563–572. DOI:
10.1111/j.1365-2656.2008.01518.x
Avise J.C. 1994. Molecular markers, natural history and
evolution. New York: Chapman and Hall. 511 p.
Ayala S.C., Hutchings R. 1974. Hemogregarines (Protozoa:
Sporozoa) as zoogeographical tracers of Galapagos
Island lava lizards and marine iguanas. Herpetologica
30(2): 128–132.
Beklemishev V.N. 1970. Biocenological foundations of compara-
tive parasitology. Moscow: Nauka. 501 p. [In Russian]
Bender L.C., Schmitt S.M., Carlson E., Hauer J.B., Beyer
D.E. 2005. Mortality of Rocky Mountain elk in Michi-.E. 2005. Mortality of Rocky Mountain elk in Michi-E. 2005. Mortality of Rocky Mountain elk in Michi-. 2005. Mortality of Rocky Mountain elk in Michi-Mortality of Rocky Mountain elk in Michi-
gan due to meningeal worm. Journal of Wildlife Diseas-
es 41(1): 134–140. DOI: 10.7589/0090-3558-41.1.134
Biek R., Drummond A., Poss M. 2006. A virus reveals popu-
lation structure and recent demographic history of its
carnivore host. Science 311(5760): 538–541. DOI:
10.1126/science.1121360
Blackwell A.D., Tamayo M.A., Beheim B., Trumble B.C.,
Stieglitz J., Hooper P.L., Martin M., Kaplan H., Gurven
M. 2015. Helminth infection, fecundity, and age of rst
pregnancy in women. Science 350(6263): 970–972.
DOI: 10.1126/science.aac7902
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
17
Blanchet S., Rey O., Berthier P., Lek S., Loot G. 2009. Evidence
of parasitemediated disruptive selection on genetic diver-
sity in a wild sh population. Molecular Ecology 18(6):
1112–1123. DOI: 10.1111/j.1365-294X.2009.04099.x
Bradley C.A., Altizer S. 2007. Urbanization and the ecology
of wildlife diseases. Trends in Ecology and Evolution
22(2): 95–102. DOI: 10.1016/j.tree.2006.11.001
Bruyndonckx N., Biollaz F., Dubey S., Goudet J., Christe P.
2010. Mites as biological tags of their hosts. Molecu-
lar Ecology 19(13): 2770–2778. DOI: 10.1111/j.1365-
294X.2010.04699.x
Byers J. 1999. The Distribution of an Introduced Mollusc and
its Role in the Long-term Demise of a Native Confamil-
ial Species. Biological Invasions 1(4): 339–352. DOI:
10.1023/A:1010038001768
Carlson C.J., Burgio K.R., Dougherty E.R., Phillips A.J.,
Bueno V.M., Clements C.F., Castaldo G., Dallas T.A.,
Cizauskas C.A., Cumming G.S., Doсa J., Harris N.C.,
Jovani R., Mironov S., Muellerklein O.C., Proctor H.C.,
Getz W.M. 2017. Parasite biodiversity faces extinction
and redistribution in a changing climate. Science Ad-
vances 3(9): e1602422. DOI: 10.1126/sciadv.1602422
Chirniy V.I. 2004. Materials on the ea fauna (Siphonaptera) of
the Crimean Peninsula. In: Problems of Development of
Crimea. Simferopol: Tavriya-Plus. P. 193–196. [In Russian]
Cizauskas C.A., Carlson C.J., Burgio K.R., Clements C.F.,
Dougherty E.R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para- E.R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-E.R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-.R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-R., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-., Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para-Harris N.C., Phillips A.J. 2017. Para- N.C., Phillips A.J. 2017. Para-N.C., Phillips A.J. 2017. Para-.C., Phillips A.J. 2017. Para-C., Phillips A.J. 2017. Para-., Phillips A.J. 2017. Para-Phillips A.J. 2017. Para- A.J. 2017. Para-A.J. 2017. Para-.J. 2017. Para-J. 2017. Para-. 2017. Para-Para-
site vulnerability to climate change: an evidence-based
functional trait approach. Royal Society Open Science
4(1): 160535. DOI:10.1098/rsos.160535
Clay T. 1949. Some problems in the evolution of a group of
ectoparasites. Evolution 3(4): 279–299. DOI: 10.1111/
j.1558-5646.1949.tb00030.x
Clayton D.H., Johnson K.P., Al-Tamini S. 2003. The ecologi-
cal basis of coevolutionary history. In: R.D.M. Page (Ed.):
Tangled Trees: Phylogeny, Cospeciation and Coevolution.
Chicago: The University of Chicago Press. P. 310–341.
Cliord D.L., Mazet J.A.K., Dubovi E.J., Garcelon D.K.,
Coonan T.J., Conrad P.A., Munson L. 2006. Pathogen
exposure in endangered island fox (Urocyon littoralis)
populations: implications for conservation manage-
ment. Biological Conservation 131(2): 230–243. DOI:
10.1016/j.biocon.2006.04.029
Cohen J.E., Pimm S.L., Yodzis P., Saldãna J. 1993. Body sizes
of animal predators and animal prey in food webs. Jour-
nal of Animal Ecology 62(1): 67–78. DOI: 10.2307/5483
Combes C. 1996. Parasites, biodiversity and ecosystem sta-
bility. Biodiversity and Conservation 5(8): 953–962.
DOI: 10.1007/BF00054413
Combes C. 2005. The Art of Being a Parasite. Chicago, Lon-
don: University of Chicago Press. 291 p.
Criscione C.D., Blouin M.S. 2004. Life cycles shape para-
site evolution: comparative population genetics of
salmon trematodes. Evolution 58(1): 198–202. DOI:
10.1554/03-359
Cumming G.S., van Vuuren D.P. 2006. Will climate change
aect ectoparasite species ranges? Global Ecology and
Biogeography 15(5): 486–497. DOI: 10.1111/j.1466-
822X.2006.00241.x
Cunningham A.A., Daszak P., Rodriguez J.P. 2003. Pathogen
pollution: dening a parasitological threat to biodiver-
sity conservation. Journal of Parasitology 89: 78–83.
Dabert J., Alberti G. 2008: A new species of the genus Coracia-
carus (Gabuciniidae, Pterolichoidea) from the huia Heter-
alocha acutirostris (Callaeatidae, Passeriformes), an extinct
bird species from New Zealand. Journal of Natural History
42(43–44): 2763–2776. DOI: 10.1080/00222930802354142
Dawkins R., Krebs J.R. 1979. Arms races between and within
species. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sci-
ences 205(1161): 489–511. DOI: 10.1098/rspb.1979.0081
Dobson A., Laerty K.D., Kuris A.M., Hechinger R.F., Jetz
W. 2008. Homage to Linnaeus: how many parasites?
How many hosts? Proceedings of the National Academy
of Sciences of the United States of America 105(Suppl.
1): 11482–11489. DOI: 10.1073/pnas.0803232105
Dogel V.A. 1947. Course of general parasitology. Lenin-
grad: Uchpedgiz. 372 p. [In Russian]
Duell E. 2001. Curative power of fever. Lancet 358(9289):
1276. DOI: 10.1016/S0140-6736(01)06374-7
Duncan R.P., Blackburn T.M. 2004. Extinction and ende-
mism in the New Zealand avifauna. Global Ecology and
Biogeography 13(6): 509–517. DOI: 10.1111/j.1466-
822X.2004.00132.x
Dunn R.R. 2009. Coextinction: anecdotes, models, and spec-
ulation. In: S.T. Turvey (Ed.): Holocene extinctions.
Oxford: University Press. P. 167–180. DOI: 10.1093/ac
prof:oso/9780199535095.003.0008
Dunn R.R. Harris N.C. Colwell R.K., Koh L.P., Sodhi N.S.
2009. The sixth mass coextinction: are most endan-
gered species parasites and mutualists? Proceedings of
the Royal Society B: Biological Sciences 276(1670):
3037–3045. DOI: 10.1098/rspb.2009.0413
Dunne J.A., Laerty K.D., Dobson A.P., Hechinger R.F.,
Kuris A.M., Martinez N.D., McLaughlin J.P., Mourit-
sen K.N., Poulin R., Reise K., Stouer D.B., Thieltges
D.W., Williams R.J., Zander K.D. 2013. Parasites aect
food web structure primarily through increased diver-
sity and complexity. PLoS Biol 11(6): e1001579. DOI:
10.1371/journal.pbio.1001579
Durden L.A., Keirans J.E. 1996. Host-parasite coextinction
and the plight of tick conservation. American Journal
of Entomology 42(2): 87–91. DOI: 10.1093/ae/42.2.87
Eichler W. 1942. Die Entfaltungsregel und andere Gestzm�-
zigkeiten in den parasitogenetischen Beziehungen der
Mallophagen und anderer stándiger Parasiten zu ihren-
Wirten. Zoologische Anzeiger 137: 77–83.
Gaither M.R., Aeby G., Vignon M., Meguro Y., Rigby M.,
Runyon C., Toonen R.J., Wood C.L., Bowen B.W.
2013. An invasive sh and the time-lagged spread of
its parasite across the Hawaiian Archipelago. PLoS One
8(2): e56940. DOI: 10.1371/journal.pone.0056940
Glazner J.T., Devlin B., Ellstrand N.C. 1988. Biochemical
and morphological evidence for host race evolution in
desert mistletoe, Phoradendron californicum (Viscace-
ae). Plant Systematics and Evolution 161(1–2): 13–21.
DOI: 10.1007/BF00936008
Gómez A., Nichols E. 2013. Neglected wild life: Parasitic
biodiversity as a conservation target. International
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
18
Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife 2(1):
222–227. DOI: 10.1016/j.ijppaw.2013.07.002
Gompper M.E., Williams E.S. 1998. Parasite conservation and the
black-footed ferret recovery program. Conservation Biology
12(3): 730–732. DOI: 10.1111/j.1523-1739.1998.97196.x
Gorrell J., Schulte-Hostedde A. 2008. Patterns of parasit-
ism and body size in red squirrels (Tamiasciurus hud-
sonicus). Canadian Journal of Zoology 86(2): 99–107.
DOI: 10.1139/Z07-123
Fahrenholz H. 1913. Ectoparasiten und Abstammungslehre.
Zoologische Anzeiger 41: 371–374.
Fleming J.O. 2013. Helminth therapy and multiple sclerosis.
International Journal for Parasitology 43(3–4): 259–
274. DOI: 10.1016/j.ijpara.2012.10.025
Hamer S.A., Lehrer E., Magle S.B. 2012. Wild birds as sentinels
for multiple zoonotic pathogens along an urban to rural gra-
dient in Greater Chicago, Illinois. Zoonoses Public Health
59(5): 355–364. DOI: 10.1111/j.1863-2378.2012.01462.x
Hartigan A., Phalen D.N., Šlapeta J. 2010. Museum material
reveals a frog parasite emergence after the invasion of
the cane toad in Australia. Parasites and Vectors 3(1):
50. DOI: 10.1186/1756-3305-3-50
Hoelzel A.R., Halley J., O’Brien S.J., Campagna C., Arnbom
T., LeBoeuf B., Ralls K., Dover G.A. 1993. Elephant
seal genetic variation and the use of simulation models
to investigate historical population bottlenecks. Journal
of Heredity 84(6): 443–449.
Holdo R.M., Sinclair A.R.E., Dobson A.P., Metzger K.L.,
Bolker B.M., Ritchie M.E., Holt R.D. 2009. A disease-
mediated trophic cascade in the Serengeti and its im-
plications for ecosystem C. PLoS Biol 7(9): e1000210.
DOI: 10.1371/journal.pbio.1000210
Hudson P.J., Rizzoli A.P., Grenfell B.T., Heesterbeek H.,
Dobson A.P. 2002. The Ecology of Wildlife Diseases.
Oxford: Oxford University Press. 197 p.
Hudson P.J., Dobson A.P., Laerty K.D. 2006. Is a healthy
ecosystem one that is rich in parasites? Trends in Ecol-
ogy and Evolution 21(7): 381–385. DOI: 10.1016/j.
tree.2006.04.007
Hugot J.-P. 1999. Primates and their pinworm parasites:
the Cameron hypothesis revisited. Systematic Biology
48(3): 523–546. DOI: 10.1080/106351599260120
von Ihering H. 1891. On the ancient relations between New
Zealand and South America. Transactions and Proceed-
ings of the Royal Society of New Zealand 24: 431–445.
von Ihering H. 1902. Die Helminthen als Hilfsmittel der Zoogeo-
graphischen Forschung. Zoologischer Anzeiger 26: 24–51.
IUCN. 2012. IUCN Red List Categories and Criteria: Ver-
sion 3.1, second ed. Gland, Switzerland and Cambridge,
UK: IUCN. 32 p.
Jaworski D.C., Simmen F.A., Lamoreaux W., Coons L.B.,
Muller M.T., Needham G.R. 1995. A secreted calretinu-
lin protein in ixodid tick (Amblyomma americanum) sa-
liva. Journal of Insect Physiology 41(4): 369–375. DOI:
10.1016/0022-1910(94)00107-R
Jerome C.A., Ford B.A. 2002a. Comparative popula-
tion structure and genetic diversity of Arceuthobium
americanum (Viscaceae) and its Pinus host species:
insight into host–parasite evolution in parasitic an-
giosperms. Molecular Ecology 11(3): 407–420. DOI:
10.1046/j.0962-1083.2002.01462.x
Jerome C.A., Ford B.A. 2002b. The discovery of three ge-
netic races of the dwarf mistletoe Arceuthobium ameri-
canum (Viscaceae) provides insight into the evolution
of parasitic angiosperms. Molecular Ecology 11(3):
387–405. DOI: 10.1046/j.0962-1083.2002.01463.x
Jetz W., Wilcove D., Dobson A.P. 2007. Projected impacts of cli-
mate and land-use change on the global diversity of birds.
PLoS Biol 5(6): e157. DOI: 10.1371/journal.pbio.0050157
Karczewski J., Endris R., Connolly T.M. 1994. Disagregin
is a brinogen receptor antagonist lacking the Arg-Gly-
Asp sequence from the tick, Ornithodoros moubata.
Journal of Chemical Biology 269(9): 6702–6708.
Keller P.M., Waxman L., Amold B.A., Schultz L.D., Condra
C., Connolly T.M. 1993. Cloning of the cDNA and ex-
pression of moubatin, an inhibitor of platelet aggrega-
tion. Journal of Chemical Biology 268(8): 5450–5456.
Kieser J.A. 1991. Fluctuating odontometric asymmetry, mor-
phological variability, and genetic monomorphism in
the cheetah Acinonyx jubatus. Evolution 45(5): 1175–
1183. DOI: 10.1111/j.1558-5646.1991.tb04384.x
Klassen G.J. 1992. Coevolution: a history of the macroevolution-
ary approach to studying host–parasite associations. Journal
of Parasitology 78(4): 573–587. DOI: 10.2307/3283532
Koh L.P., Dunn R.D., Sodhi N.S., Colwell R.K., Proctor
H.C., Smith V.S. 2004. Species co-extinctions and the
biodiversity crisis. Science 305(5690): 1632–1634.
DOI: 10.1126/science.1101101
Kubes M., Fuchsberger N., Labuda M., Zuová E., Nuttall
P.A. 1994. Salivary gland extracts of partially fed Der-
macentor reticulatus ticks decrease natural killer cell
activity in vitro. Immunology 82(1): 113–116.
Kuris A.M., Hechinger R.F., Shaw J.C., Whitney K.L., Aguirre-
Macedo L., Boch C.A., Dobson A.P., Dunham E.J., Fre-
densborg B.L., Huspeni T.C., Lorda J., Mababa L., Man-
cini F.T., Mora A.B., Pickering M., Talhouk N.L., Torchin
M.E., Laerty K.D. 2008. Ecosystem energetic implica-
tions of parasite and free-living biomass in three estuaries.
Nature 454(7203): 515–518. DOI: 10.1038/nature06970
Kuwabara K., Pinsky D.J., Schmidt A.M., Benedict C., Brett
J., Ogawa S., Broekman M.J., Marcus A.J., Sciacca
R.R., Michalak M., Wang F., Pan Y.-C., Grunfeld S.,
Patton S., Malinski T., Stern D.M., Ryan J. 1995. Calre-
ticulin, an antithrombotic agent which binds to vitamin
K-dependent coagulation factors, stimulates endothelial
nitric oxide production, and limits thrombosis in canine
coronary arteries. Journal of Biological Chemistry
270(14): 8179–8187. DOI: 10.1074/jbc.270.14.8179
Kwak M.L. 2018. Australia’s vanishing eas (Insecta: Si-
phonaptera): a case study in methods for the assessment
and conservation of threatened ea species. Journal of
Insect Conservation 22(3–4): 545–550. DOI: 10.1007/
s10841-018-0083-7
Labunets N.F., Degtyareva L.V. 1985. On eas of bats from
the North Caucasus. Parasitologiya 19(3): 177–180.
[In Russian]
LaFee S. 2006. Parasites lost. Of lice and men and the
value of small, disgusting things. San Diego: The San
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
19
Diego Union-Tribune. Available from: http://legacy.
sandiegouniontribune.com/news/science/20061102-
9999-lz1c02parasit.html
Laerty K.D. 2012. Biodiversity loss decreases parasite diver-
sity: theory and patterns. Philosophical Transactions of
the Royal Society of London. Series B, Biological Scienc-
es 367(1604): 2814–2827. DOI: 10.1098/rstb.2012.0110
Laerty K.D., Kuris A.M. 2009. Parasitic castration: the evo-
lution and ecology of body snatchers. Trends in Parasi-
tology 25(12): 564–572. DOI: 10.1016/j.pt.2009.09.003
Laerty K.D., Dobson A.P., Kuris A.M. 2006. Parasites dom-
inate food web links. Proceedings of the National Acad-
emy of Sciences of the United States of America 103(30):
11211–11216. DOI: 10.1073/pnas.0604755103
Lively C.M., Dybdahl M.F., Jokela J., Osnas E.E., Delph
L.F. 2004. Host sex and local adaptation by parasites
in a snail-trematode interaction. American Naturalist
164(Suppl. 5): 6–18. DOI: 10.1086/424605
Lovich J.E., Ennen J.R., Agha M., Gibbons W.J. 2018. Where
have all the turtles gone, and why does it matter? Bio-
Science 68(10): 771–781. DOI: 10.1093/biosci/biy095
Medvedev S.G., Stanjukovich M.K., Tiunov M.P., Farafon-
ova G.V. 1991. Ectoparasites of bats from the Far East
of the USSR. Parasitologiya 25(1): 27–37. [In Russian]
Meusnier I., Olsen J.L., Stam W.T., Destombe C., Valero
M. 2001. Phylogenetic analyses of Caulerpa taxifolia
(Chlorophyta) and of its associated bacterial micro-
ora provide clues to the origin of the Mediterranean
introduction. Molecular Ecology 10(4): 931–946. DOI:
10.1046/j.1365-294X.2001.01245.x
Mey E. 1990. Eine neue ausgestorbene Vogel-Ischnozere
von Neuseeland, Huiacola extinctus (Insecta, Phthirap-
tera). Zoologischer Anzeiger 224(1/2): 49–73.
Mihalca A.D., Gherman C.M., Cozma V. 2011. Coendan-
gered hard-ticks: threatened or threatening? Parasites
and Vectors 4(1): 71. DOI: 10.1186/1756-3305-4-71
Millán J., Casanova J.C. 2007. Helminth parasites of the en-
dangered Iberian lynx (Lynx pardinus) and sympatric
carnivores. Journal of Helminthology 81(4): 377–380.
DOI: 10.1017/S0022149X07869203
Millán J., Ruiz-Fons F., Márquez F.J., Viota M., López-
Bao J.V., Martín Mateo M.P. 2007. Ectoparasites of
the endangered Iberian lynx Lynx pardinus and sym-
patric wild and domestic carnivores in Spain. Medi-
cal and Veterinary Entomology 21(3): 248–254. DOI:
10.1111/j.1365-2915.2007.00696.x
Minchella D.J., Scott M.E. 1991. Parasitism: cryptic deter-
minant of animal community structure. Tre e 6(8): 250–
254. DOI: 10.1016/0169-5347(91)90071-5
Moir M.L., Vesk P.A., Brennan K.E.C., Poulin R., Hughes
L., Keith D.A., McCarthy M.A., Coates D.J. 2012.
Considering extinction of dependent species during
translocation, ex situ conservation, and assisted migra-
tion of threatened hosts. Conservation Biology 26(2):
199–207. DOI: 10.1111/j.1523-1739.2012.01826.x
Musselman L.J., Parker C. 1981. Studies on Indigo Witch-
weed, the American strain of Striga gesnerioides
(Scrophulariaceae). Weed Science 29(5): 594–596.
DOI: 10.1017/S0043174500063797
Ndao M., Magnus E., Buscher P., Geerts S. 2004. Trypanoso-
ma vivax: a simplied protocol for in vivo growth, iso-
lation and cryopreservation. Parasite 11(1): 103–106.
DOI: 10.1051/parasite/2004111103
Nichols E., Gómez A. 2011. Conservation education needs
more parasites. Biological Conservation 144(2): 937–
941. DOI: 10.1016/j.biocon.2010.10.025
Norton D.A., Carpenter M.A. 1998. Mistletoes as parasites: host
specicity and speciation. Trends in Ecology and Evolution
13(3): 101–105. DOI: 10.1016/S0169-5347(97)01243-3
Okulova N.M., Yudaev O.N., Konstantinov O.K. 1986. On
the ecology of the tick Ixodes pomerantzevi (Ixodidae).
Parasitologiya 20(1): 11–14. [In Russian]
Orlova M.V., Zhigalin A.V., Orlov O.L., Golovanova A.P. 2017.
Ectoparasites of Myotis blythii (Chiroptera: Vespertilioni-
dae) in the Tigirek State Nature Reserve. Proceedings of
the Tigirek State National Reserve 9: 95–99. [In Russian]
Orlova M.V., Orlov O.L., Kruskop S.V., Bernikov K.A. 2013.
Possibilities for identication of cryptic species of Chi-
roptera using host-specic ectoparasites. Biology Bulle-
tin 40(1): 111–113. DOI: 10.1134/S1062359013010111
Orlova M.V., Zhigalin A.V. 2014. New records of the bat y
Basilia mongolensis in the mountains of Asia (Diptera).
Vespertilio 17: 127–128.
Orlova M.V., Zhigalin A.V., Zhigalina D.I. 2015. Parasitic
gamasid mites (Acari: Mesostigmata) associated with
bats (Chiroptera: Vespertilionidae) on Kunashiri Island,
with a description of a new species Spinturnix uchika-
wai sp. nov. Acta Arachnologica 64(1): 27–31. DOI:
10.2476/asjaa.64.27
Orlova M.V., Orlov O.L. 2018. Contribution to the Ectopa-
rasite Fauna of Bats (Chiroptera: Vespertilionidae, Rhi-
nolophidae) of Crimea. Entomological Review 98(3):
319–323. DOI: 10.1134/S0013873818030089
Page R.D.M. 2003. Introduction. In: R.D.M. Page (Ed.): Tan -
gled Trees: Phylogeny, Cospeciation and Coevolution.
Chicago: University of Chicago Press. P. 1–21.
Page R.D., Lee P.L., Becher S.A., Griths R., Clayton D.H.
1998. A dierent tempo of mitochondrial DNA evolution in
birds and their parasitic lice. Molecular Phylogenetics and
Evolution 9(2): 276–293. DOI: 10.1006/mpev.1997.0458
Pang J., Hoelzel A.R., Song Y., Zeng Z., Zhang Y. 2003.
Lack of mtDNA control region variation in Hainan
Eld’s deer: consequences of a recent population bot-
tleneck. Conservation Genetics 4(1): 109–112. DOI:
10.1023/A:1021817925740
Patz J.A., Daszak P., Tabor G.M., Aguirre A.A., Pearl M., Ep-
stein J., Wolfe N.D., Kilpatrick A.M., Foufopoulos J.,
Molyneux D., Bradley D.J. 2004. Unhealthy landscapes:
policy recommendations on land use change and infec-
tious disease emergence. Environmental Health Perspec-
tives 112(10): 1092–1098. DOI: 10.1289/ehp.6877
Pedersen A.B., Jones K.E., Nunn C.L., Altizer S. 2007.
Infectious diseases and extinction risk in wild mam-
mals. Conservation Biology 21(5): 1269–1279. DOI:
10.1111/j.1523-1739.2007.00776.x
Poulin R., Morand S. 2000. The diversity of parasites.
Quarterly Review of Biology 75(3): 277–293. DOI:
10.1086/393500
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
20
Poulin R., Morand S. 2004. Parasite Biodiversity. Wash-
ington DC: Smithsonian Institute Scholarly Press.
216 p.
Rael T.R., Martin L.B., Rohr J.R. 2008. Parasites as preda-
tors: unifying natural enemy ecology. Trends in Ecol-
ogy and Evolution 23(11): 610–618. DOI: 10.1016/j.
tree.2008.06.015
Ramachandra R.N., Wikel S.K. 1992. Modulation of host
immune responses by ticks (Acari: Ixodidae): eect
of salivary gland extracts on host macrophages and
lymphocyte cytokine production. Journal of Medi-
cal Entomology 29(5): 818–826. DOI: 10.1093/jme-
dent/29.5.818
Red Data Book of the Irkutsk Region. Irkutsk: Vremya
stranstviy, 2010. 478 p. [In Russian]
Red Data Book of Republic of Buryatia: Rare and Endan-
gered Species of Animals, Plants and Fungi. Third edi-
tion. Ulan-Ude: Publisher of the Buryat Scientic Cen-
tre, SB RAS, 2013. 688 p. [In Russian]
Red Data Book of Primorsky Krai. Animals: Rare and en-
dangered species of plants and animals. Vladivostok:
Apelsin, 2005. 448 p. [In Russian]
Red Data Book of Russian Federation. Animals. Moscow:
Astrel, 2001. 862 p. [In Russian]
Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. 2011.
The host-specic parasite Nippotaenia mogurndae
conrms introduction vectors of the sh Perccottus
glenii in the Volga river basin. Journal of Applied
Ichthyology 27(5): 1226–1231. DOI: 10.1111/j.1439-
0426.2011.01792.x
Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. 2017.
Detection of a neglected introduction event of the
invasive sh Perccottus glenii using parasitological
analysis. Hydrobiologia 788(1): 65–73. DOI: 10.1007/
s10750-016-2987-0
Ribeiro J.M.C., Makoul G.T., Levine J., Robinson D.R.,
Spielman A. 1985. Antihemostatic, antiinammatory,
and immunosuppressive properties of the saliva of a
tick, Ixodes dammini. Journal of Experimental Medi-
cine 161(2): 332–344.
Ribeiro J.M.C., Endris T.M., Endris R. 1991. Saliva of
the soft tick, Ornithodoros moubata, contains anti-
platelet and apyrase activities. Comparative Bio-
chemistry and Physiology 100(1): 109–112. DOI:
10.1016/0300-9629(91)90190-N
Riley S.P.D., Foley J., Chomel B. 2004. Exposure to feline
and canine pathogens in bobcats and gray foxes in
urban and rural zones of a National Park in Califor-
nia. Journal of Wildlife Diseases 40(1): 11–22. DOI:
10.7589/0090-3558-40.1.11
Robar N., Burness G., Murray D.L. 2010. Tropics, trophics
and taxonomy: the determinants of parasite-associ-
ated host mortality. Oikos 119(8): 1273–1280. DOI:
10.1111/j.1600-0706.2009.18292.x
Rodriguez A., Carbonell E. 1998. Gastrointestinal parasites
of the Iberian lynx and other wild carnivores from cen-
tral Spain. Acta Parasitologica 43(3): 128–136.
Rohr J.R., Dobson A.P., Johnson P.T.J., Kilpatrick A.M.,
Paull S.H., Rael T.R., Ruiz-Moreno D., Thomas M.B.
2011. Frontiers in climate change-disease research.
Trends in Ecology and Evolution 26(6): 270–277. DOI:
10.1016/j.tree.2011.03.002
Ševčik M., Benda P., Uhrin M. 2011. First records of the bat
y Phthiridium biarticulatum (Diptera: Nycteribiidae)
in Crimea. Vespertilio 15: 159–160.
Sig A.K., Guney M., Guclu A.U., Ozmen E. 2017. Me-
dicinal leech therapy – an overall perspective. In-
tegrative Medicine Research 6(4): 337–343. DOI:
10.1016/j.imr.2017.08.001
Singh A.P. 2010. Medicinal leech therapy (hirudothera-
py): a brief overview. Complementary Therapies in
Clinical Practice 16(4): 213–215. DOI: 10.1016/j.
ctcp.2009.11.005
Singh K., Davies G., Alenazi Y., Eaton J.R.O., Kawamura
A., Bhattacharya S. 2017. Yeast surface display identi-
es a family of evasins from ticks with novel poly-
valent CC chemokine-binding activities. Scientic Re-
ports 7(1): 4267. DOI: 10.1038/s41598-017-04378-1
Schwanz L. 2008. Chronic parasitic infection alters re-
productive output in deer mice. Behavioral Ecology
and Sociobiology 62(8): 1351–1358. DOI: 10.1007/
s00265-008-0563-y
Stanyukovich M.K. 1997. Keys to the gamasid mites (Ac-
ari: Parasitiformes, Mesostigmata, Macronyssoidea
et Laelaptoidea) parasiting bats (Mammalia, Chirop-
tera) from Russia and adjacent countries. Rudolstädter
naturhistorische Schriften 7: 13–46.
Stork N.E., Lyal C.H. 1993. Extinction or ‘co-extinction’
rates? Nature 366: 307. DOI: 10.1038/366307a0
Strachan D.P. 1989. Hay fever, hygiene, and household size.
British Medical Journal 299(6710): 1259–1260. DOI:
10.1136/bmj.299.6710.1259
Strona G., Galli P., Fattorini S. 2013. Fish parasites resolve
the paradox of missing coextinctions. Nature Communi-
cations 4: 1718. DOI: 10.1038/ncomms2723
Summers K., McKeon S., Sellars J., Keusenkothen M., Mor-
ris J., Gloeckner D., Pressley C., Price B., Snow H.
2003. Parasitic exploitation as an engine of diversity.
Biological Reviews 78(4): 639–675. DOI: 10.1017/
S146479310300616X
Telfer S., Lambin X., Birtles R., Beldomenico P., Burthe
S., Paterson S., Begon M. 2010. Species interactions
in a parasite community drive infection risk in a wild-
life population. Science 330(6001): 243–246. DOI:
10.1126/science.1190333
Templeton A.R., Robertson R.J., Brisson J., Strasburg J.
2001. Disrupting evolutionary processes: the eect of
habitat fragmentation on collared lizards in the Mis-
souri Ozarks. Proceedings of the National Academy of
Sciences of the United States of America 98(10): 5426–
5432. DOI: 10.1073/pnas.091093098
Thomas F., Renaud F., Guegan J.F. 2005. Parasitism and
Ecosystems. New York: Oxford University Press. 221 p.
Thomas F., Guégan J.-F., Renaud F. 2009. Ecology and Evolution
of Parasitism. New York: Oxford University Press. 240 p.
Tiov V.E., Skalon O.I., Rostigaev V.A. 1977. Key of Cau-
casian eas. Stavropol: Stavropol Book Publishing
House. 278 p. [In Russian]
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011
21
CONSERVATION OF ANIMALS’ PARASITE SPECIES:
PROBLEMS AND PROSPECTS
Maria V. Orlova1,2, Oleg L. Orlov1,3
1Tyumen State University, Russia
2National Research Tomsk State University, Russia
e-mail: masha_orlova@mail.ru
3Ural State Medical University, Russia
e-mail: o_l_orlov@mail.ru
Parasitism is a widespread life-history strategy in nature. Despite the abundance of parasitic species, many as-
pects of their biology (e.g., population parameters, vulnerability degree, extinction possibility, and the need for
protection) remain understudied. Parasites are perceived negatively (even by some scientists). This results in the
underappreciation of the importance of parasites in the biosphere. In this review, we summarise modern views
on the ecological, scientic and applied signicance of parasites. According to literature review, parasitism is
not considered as a strictly negative phenomenon. And parasites are recognised as signicant components of
the ecosystem similarly to free-living species. Prospects and extent of co-extinction of parasites with the hosts
and the possible consequences of this phenomenon are discussed. Additionally, we discussed the problems and
solutions associated with parasitic species conservation as well as recommendations on considering the status of
protected species to several ectoparasite species.
Key words: biodiversity conservation, co-extinction, endangered species, parasites
Tompkins D.M., Greenman J.V., Hudson P.J. 2001. Dif-
ferential impact of a shared nematode parasite on
two gamebird hosts: implications for apparent com-
petition. Parasitology 122: 187–193. DOI: 10.1017/
S0031182001007247
Tompkins D.M., Sainsbury A.W., Nettleton P., Buxton D.,
Gurnell J. 2002. Parapoxvirus causes a deleterious dis-
ease in red squirrels associated with UK population de-
clines. Proceedings of the Royal Society of London. Se-
ries B, Biological Sciences 269(1490): 529–533. DOI:
10.1098/rspb.2001.1897
Vesk P.A., McCarthy M.A., Moir M.L. 2010. How many
hosts? Modelling host breadth from eld samples.
Methods in Ecology and Evolution 1(3): 292–299. DOI:
10.1111/j.2041-210X.2010.00026.x
Waxman L., Smith D.E., Arcuri K.E., Vlasuk G.P. 1990.
Tick anticoagulant peptide (TAP) is a novel inhibitor of
blood coagulation factor Xa. Science 248(4955): 593–
596. DOI: 10.1126/science.2333510
Wegner K.M., Reusch T.B.H., Kalbe M. 2003. Multiple
parasites are driving major histocompatibility com-
plex polymorphism in the wild. Journal of Evolution-
ary Biology 16(2): 224–232. DOI: 10.1046/j.1420-
9101.2003.00519.x
Weinstock J.V. 2012. The worm returns. Nature 491(7423):
183–185. DOI: 10.1038/491183a
Whiteman N.K., Santiago-Alarcon D., Johnson K.P.,
Parker P.G. 2004. Differences in straggling rates
between two genera of dove lice (Insecta: Phthi-
raptera) reinforce population genetic and co-
phylogenetic patterns. International Journal for
Parasitology 34(10): 1113–1119. DOI: 10.1016/j.
ijpara.2004.06.003
Whiteman N.K., Parker P.G. 2005. Using parasites to infer
host population history: a new rationale for parasite
conservation. Animal Conservation 8(2): 175–181.
DOI: 10.1017/S1367943005001915
Whitrow M. 1990. Wagner-Jauregg and fever therapy.
Medical History 34(3): 294–310. DOI: 10.1017/
S0025727300052431
Windsor D.A. 1990. Heavenly hosts. Nature 348: 104. DOI:
10.1038/348104c0
Windsor D.A. 1995. Equal rights for parasites. Conser-
vation Biology 9(1): 1–2. DOI: 10.1046/j.1523-
1739.1995.09010001.x
Windsor D.A. 1998. Most of the species on Earth are para-
sites. International Journal for Parasitology 28(12):
1939–1941.
Wirth T., Meyer A., Achtman M. 2005. Deciphering host mi-
grations and origins by means of their microbes. Molec-
ular Ecology 14(11): 3289–3306. DOI: 10.1111/j.1365-
294X.2005.02687.x
Zhigileva O.N. 2013. Helminthic fauna of mice (Apodemus
agrarius, Mus musculus) in residential and interresiden-
tial territories in Western Siberia. Povolzhskiy Journal
of Ecology 2: 156–163. [In Russian]
Zimmer C. 2000. Parasite Rex: Inside the World of Nature’s
Most Dangerous Creatures. New York: Touchstone-
Simon and Schuster. 320 p.
Zuber D., Widmer A. 2000. Genetic evidence for host
specicity in the hemiparasitic Viscum album L. (Vis-
caceae). Molecular Ecology 9(8): 1069–1073. DOI:
10.1046/j.1365-294x.2000.00963.x
Zuk M. 2007. Riddled with Life: Friendly Worms, Ladybug
Sex, and the Parasites that Make us Who we are. Or-
lando: Harcourt Books. 240 p.
Nature Conservation Research. Заповедная наука 2019. 4(1) : 1–21 https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.011