ArticlePDF Available

Functionality and Biological Activity of Isolate Processed Water Generated During Protein Isolate Preparation of Fish Roes Using an Isoelectric Solubilization and Precipitation Process

Authors:

Abstract and Figures

This study evaluated the protein recovery, functional properties and biological activity of isolate processed water (IPW) generated in the preparation of protein isolates from fish roes (BH, bastard halibut Paralichthys olivaceus; ST, skipjack tuna Katsuwonus pelamis; YT, yellowfin tuna Thunnus albacares) by an isoelectric solubilization and precipitation process. The IPWs contained 2.7-5.4 mg/mL of protein, and the protein losses were 8-21% (P<0.05). The form capacity of IPW-3 for BH and ST, and IPW-4 for YT was 155, 194, and 164%, respectively. The emulsifying activity index (27-43 m2/g) of the YT-IPWs was the strongest, followed by ST (7-29 m2/g) and BH (10-19 m2/g). The 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl scavenging activities of IPW-1 and -3 were higher than those of IPW-2 and -4. The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid scavenging activity (IC50, mg/mL) of IPW-2 and -4 was 0.03 mg/mL for BH, 0.04-0.08 mg/mL for ST, and 0.04-0.07 mg/mL for YT. BH IPW-3 had the strongest reducing power (0.41 mg/mL) and superoxide dismutase-like activity (1.68 mg/mL). The angiotensin-I converting enzyme inhibitory activity of IPW-3 was the highest for ST (1.52 mg/mL), followed by BH and YT. The common predominant amino acids in the IPWs were the essential amino acids Val, Leu, Lys, and Arg and the non-essential amino acids Ser, Glu, and Ala.
Content may be subject to copyright.
한수지 50(6), 694-706, 2017
694
Copyright © 2017 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
Korean J Fish Aquat Sci 50(6),694-706,2017
Original Article
등전점
가용화
/
침전
(ISP, isoelectric solubilization/precipita-
tion)
공정은
수산
육상동물의
가공
발생하는
가공부산물
로부터
단백질의
회수율을
높일
있는
처리방법이다
.
ISP
공정은
1999
년대
미이용
/
저활용
어류
원료와
부산물로부터
,
기능성
분리단백질
(protein isolates)
경제적으로
생산하고자
개발된
주요
기술이다
(Hultin and Kelleher, 1999).
이러한
어류
분리단백질의
제조는
pH
조절에
따른
단백질
가용성의
변화를
이용하여
원치
않는
성분으로부터
목적하는
어류
단백질의
분리
회수를
가능하게
한다
(Underland et al., 2002; Mohan et al.,
2007; Lee et al., 2016b).
그러나
공정을
통해서
목적하는
등전점 용해/침전 공정으로 어류 분리단백질의 제조과정에서 발생하는
가공처리수에 대한 식품기능성 생리활성
이균우
1,3
·윤인성
1,3
·강상인
2,3
·이수광
2,3
·김재일
4
·김진수
2,3
·허민수
1,3
*
1
경상대학교 식품영양학과/해양산업연구소,
2
경상대학교 해양식품생명의학과/해양산업연구소,
3
경상대학교 수산식품산업화 기술지원센터,
4
부경대학교 식품영양학과
Functionality and Biological Activity of Isolate Processed Water
Generated During Protein Isolate Preparation of Fish Roes Using an
Isoelectric Solubilization and Precipitation Process
Gyoon-Woo Lee
1,3
, In Seong Yoon
1,3
, Sang In Kang
2,3
, Su Gwang Lee
2,3
, Jae-Il Kim
4
, Jin-Soo Kim
2,3
and Min Soo Heu
1,3
*
1
Department of Food and Nutrition/Institute of Marine Industry, Gyeongsang National University, Jinju 52828, Korea
2
Department of Seafood and Aquaculture Science/Institute of Marine Industry, Gyeongsang National University, Tongyeong
53064, Korea
3
Research Center for Industrial Development of Seafood, Gyeongsang National University, Tongyeong 53064, Korea
4
Department of Food Science and Nutrition, Pukyong National University, Busan 48315, Korea
This study evaluated the protein recovery, functional properties and biological activity of isolate processed water
(IPW) generated in the preparation of protein isolates from sh roes (BH, bastard halibut
Paralichthys olivaceus
; ST,
skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT, yellown tuna
Thunnus albacares
) by an isoelectric solubilization and pre-
cipitation process. The IPWs contained 2.7-5.4 mg/mL of protein, and the protein losses were 8-21% (P<0.05). The
form capacity of IPW-3 for BH and ST, and IPW-4 for YT was 155, 194, and 164%, respectively. The emulsifying
activity index (27-43 m2/g) of the YT-IPWs was the strongest, followed by ST (7-29 m2/g) and BH (10-19 m2/g). The
2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl scavenging activities of IPW-1 and -3 were higher than those of IPW-2 and -4. The
2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid scavenging activity (IC50, mg/mL) of IPW-2 and -4 was 0.03
mg/mL for BH, 0.04-0.08 mg/mL for ST, and 0.04-0.07 mg/mL for YT. BH IPW-3 had the strongest reducing power
(0.41 mg/mL) and superoxide dismutase-like activity (1.68 mg/mL). The angiotensin-I converting enzyme inhibitory
activity of IPW-3 was the highest for ST (1.52 mg/mL), followed by BH and YT. The common predominant amino
acids in the IPWs were the essential amino acids Val, Leu, Lys, and Arg and the non-essential amino acids Ser, Glu,
and Ala.
Key words: Roe protein isolates, Isolate processed water, Food functionality, Bastard halibut, Tunas
This is an Open Access article distributed under the terms of
the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens
(http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits
unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium,
provided the original work is properly cited.
https://doi.org/10.5657/KFAS.2017.0694 Korean J Fish Aquat Sci 50(6) 694-706, December 2017
Received 1 November 2017; Revised 5 December 2017; Accepted 6 December 2017
*Corresponding author: Tel: +82. 55. 772. 1440 Fax: +82. 55. 772. 1430
E-mail address: minsheu@gnu.ac.kr
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
695
,
수산가공산업에
있어서
발생하는
다양한
가공처리수의
나의
모델로서
식품
건강기능적인
측면의
가치에
대해
조명
하고자
하였다
.
재료 방법
재료
넙치
(BH, bastard halibut
Paralichythys olivaceus
)
통영시
소재
수산시장에서
살아있는
채로
구입하여
,
실험실로
운반한
,
알을
적출하여
실험에
사용하였으며
,
가다랑어
(ST, skip-
jack tuna
Katsuwonus pelamis
)
황다랑어
(YT, yellown
tuna
Thunnus albacares
)
알은
창원시
소재
동원산업
(Dong-
won F&B Co., Ltd. Changwon, Korea)
으로부터
동결상태의
알을
분양을
받아
사용하였다
.
알들은
실험에
사용하기
까지
polyethylene bags
밀봉상태로
-70
에서
보관하였다
.
어류
분리단백질
(roe protein isolate)
Lee et al. (2016b)
방법에
따라
제조하였다
.
,
어종의
동결
알에
100 g
대하여
6
배량
(w/v)
이온수를
가해
균질화
(POLYTRON®
PT 1200E, KINEMATICA AG, Luzern, Switzerland)
하고
, 2
N NaOH
사용하여
각각
pH 11
12
조절하여
,
알칼리
용화
(4 for 1 h)
과정을
거친
다음
,
이어서
원심분리를
실시하
였다
(Supra 22K, Hanil Science Industrial Co., Ltd., Incheon,
Korea, 12,000
g
, 4, 30 min).
원심분리
, pH 11
12
칼리
가용화
상층액에
대하여
2 N HCl
사용하여
어류
단백질
등전점
부근인
pH 4.5
5.5
각각
조정한
다음
,
원심분리
(12,000
g
, 4, 30 min)
하였다
.
이때의
원심분리
잔사는
어류
분리단백질로
회수하고
,
원심분리
상층액은
등전점
용해
/
전공정을
통해
발생한
가공처리수
(IPWs)
로서
각각
IPW-1 (pH
11/4.5), IPW-2 (pH 11/5.5), IPW-3 (pH 12/4.5)
그리고
IPW-4
(pH 12/5.5)
표시하였다
.
단백질
등전점
용해
/
침전
공정을
통해
발생한
IPWs
단백질
농도
Lowry et al. (1951)
방법에
따라
표준단백질로서
bovine
serum albumin
사용하여
구한
검량선을
통해
측정하였다
.
전기영동
시료의
단백질
분자량
분포는
Laemmli (1970)
방법에
sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis
(SDS–PAGE)
측정하였다
.
,
시료액은
SDS-PAGE
시료조
제용
완충액과
4:1 (v/v)
비율로
혼합한
, 100
에서
3 min
가열하여
조제하였다
. 10% Mini-PROTEAN® TGX™ Pre-
cast gel (Bio-Rad Lab., Inc., California, USA)
준비한
시료
(20 µg
단백질
)
주입하고
, Mini-PROTEAN® Tetra cell (Bio-
Rad Lab. Inc., California, USA)
장착한
다음
,
일정한
전류
(10 mA per gel)
통하게
하여
전기영동
실시하였다
.
단백질의
리단백질을
회수한
다음
,
원료
처리량에
대해
5-10
배량의
가공처
리수
(IPW, isolate processed water)
대량
발생하게
된다
(Chen
and Jaczynski, 2007a; Tahergorabi and Jaczynski, 2012a; Lee
et al., 2016b).
또한
어류
,
갑각류
,
연체류
등의
원료
수산물의
중에는
가공폐수
(process wastewaters)
라는
수세수
,
가열
처리수
(
또는
자숙수
),
압착수
,
액상의
가공부산물
(100 tons
수산물
원료에
대해
시간당
10
배량의
가공처리수를
사용
)
대량으로
발생
한다
(Afonso and Borquez, 2002; Dumay et al.,
2008).
이러한
수산식품
가공공정에서
발생하는
가공처리수는
유기물
부하가
높기
때문에
적절한
처리를
하지
않은
채로
방류
하게
되면
환경오염의
원인이
된다
.
그러나
이들
액상
가공부
산물인
가공처리수에는
sarcoplasmic protein,
효소
,
혈액
등의
잠재적으로
이용가치가
높은
유기성분
단백질
성분이
다량
함유되어있다
(Dumay et al., 2008; Yoon et al., 2017).
이와
련한
수산가공
처리수에
관한
정보로는
, surimi
제조
수세와
탈수과정에서
어육
중량당
10-20
배량의
수세수가
발생하며
,
과정을
통해서
어육
단백질의
30%
손실되고
(Watanabe et
al., 1982),
어육
llet
가공
시에는
10-30
배량의
수세수가
발생
하여
어육
단백질의
5-12%
손실된다
(Afonso and Borquez,
2002).
또한
수산가공원료의
가열처리
공정에서
발생하는
lob-
ster
shrimp (Dumay et al., 2008),
(Kim and Heu, 2001a;
2001b),
대합
(Joh and Hood, 1979)
등의
자숙
가공처리수는
량당
30-50
배량이
발생하고
,
이들
자숙수
중에는
단백질
성분
0.1-0.6 g/L
함유되어
있어
,
이를
농축하여
분말
인스턴트
향미소재로서
이용하고자
하였다
(Oh et al., 2007).
한편
,
수산물의
가공
중에
머리
,
껍질
,
비늘
,
내장
,
그리고
알과
같은
다양한
가공부산물이
다량으로
발생하고
,
전체중량의
30-60%
차지한다
(Klomklao and Benjakul, 2016; Narsing Rao et
al., 2014).
이러한
가공부산물
중에서
어류
(sh roe)
알집
(skeins)
둘러싸인
알을
말하며
,
단백질
(Sikorski, 1994)
수지방산
(Mahmoud et al., 2008)
풍부한
고영양성의
식품
자원이지만
,
연어나
철갑상어
알의
캐비어
(caviar),
명란
접적인
이용은
매우
한정적이다
.
대부분
식품소재로
이용되지
못하는
어류
알에
대한
선행연구
(Heu et al., 2006)
바탕으로
보다
효율적인
유용
단백질원
식품소재로서의
이용을
위하
,
어류
알로부터
분말농축물의
제조
(Lee et al., 2016a)
리단백질
(Lee et al., 2016b)
그리고
식품기능특성
(Park et
al., 2016)
대해
연구를
수행
있지만
,
이의
제조
과정에서
각각
액상
가공부산물인
자숙
가공처리수
(Yoon et al., 2017)
isolate processed water (IPW)
발생하였다
.
따라서
구에서는
넙치
(BH, bastard halibut
Paralichythys olivaceus
),
가다랑어
(ST, skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
)
황다랑
(YT, yellown tuna
Thunnus albacare
)
알로부터
등전점
/
침전
공정을
통한
분리단백질의
회수과정에서
발생하는
공처리수
(IPW)
대하여
거품성
유화
형성능과
같은
식품
기능특성
,
항산화
특성
항고혈압활성에
대하여
살펴
봄으로
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
696
분자량
분포는
Precision Plus Protein™ standards (10-250 K,
Bio-Rad Lab., Inc., California, USA)
사용하여
확인하였다
.
아미노산
시료의
아미노산분석은
2.5 mL
IPWs
0.25 mL of 6%
(w/v) 5-sulfosalicylic acid dihydrate
가하여
단백질
실시
하고
,
원심분리
(1,890
g
, 20 min, 4)
하였다
.
원심분리
상층액
(1.5 mL)
0.20 μm syringe lter (hydrophilic type)
사용하
여과한
다음
, lithium form
칼럼이
장착된
아미노산
분석기
(model 6300; Biochrom 30, Biochrom Ltd., Cambridge, UK)
taurine
아미노산
함량을
분석하였으며
,
분석결과는
100 g
단백질에
대한
개별
아미노산의
조성비
(%)
나타내었다
.
거품성 및 거품안정성
시료의
거품성
(FC, foaming capacity)
거품안정성
(FS, foam
stability)
Park et al. (2016)
방법에
따라
측정하였다
.
,
25 mL
메스실린더에
10 mL
시료용액을
옮겨
담고
,
균질
(POLYTRON® PT 1200E, KINEMATICA AG, Luzern,
Switzerland)
12,500 rpm
에서
1 min
동안
균질화
하였다
.
품이
형성된
시료는
주어진
시간
(0, 15, 30
60 min)
동안
실온
에서
정치하면서
,
부피와
거품의
부피를
측정하여
아래의
따라
FC
FS
구하였다
.
Foaming capacity (%) = VT/V0×100
Foam stability (%) = (Ft/Vt)/(FT/VT)×100
이때
VT
균질
직후
부피
, V0
균질
전의
부피
, FT
균질
직후
거품의
부피
, Ft
Vt
주어진
시간
(t=15, 30 and 60
min)
경과
후의
거품부피
부피를
의미하였다
.
유화능과 유화안정성
유화능
(EAI, emulsifying activity index)
유화안정성
(ESI,
emulsion stability index)
Park et al. (2016)
방법에
따라
정하였다
.
시료
(10 mL)
식용유
(soybean oil, Ottogi Co.,
Ltd., Seoul, Korea)
1:3 (v/v)
비율로
혼합하여
균질화한
(12,500 rpm, 1 min)
다음
,
균질화
액이
담긴
메스실린더의
래쪽에서
일정량
(50 μL)
emulsion
취하여
5 mL
0.1%
sodium dodecyl sulfate (SDS)
용액과
혼합한
다음
,
분광광도
(UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)
사용하여
500 nm
파장
에서
균질화한
직후의
흡광도
(A0min)
10
분경과
후의
흡광도
(A10min)
측정하여
아래의
식으로
각각
EAI (m2/g protein)
ESI (min)
구하였다
.
EAI
(m2⁄g protein) =
2 ×2.303 ×
A
×
DF
l
×
Φ
×
C
이때
, A
500 nm
에서의
흡광도
, DF
희석비
(100),
l
통과하는
cuvette
(1 cm), φ
혼합액
중에
식용유가
지하는
비율
(0.25)
그리고
C
단백질의
농도
(g/mL)
각각
타내었다
.
ESI (min) = A0 × ∆t
∆A
여기서
ΔA
A0min
대한
A10min
흡광도의
차이
, Δt
10
min
의미하였다
.
DPPH 라디칼 소거활성
시료의
2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH)
라디칼
소거활성은
Blois (1958)
방법을
다소
수정한
Yoon et al.
(2017)
따라
측정하였다
.
시료액
(1.5 mL)
대하여
동량
0.4 mM DPPH radical ethanolic solution (1.5 mL)
혼합
하고
,
실온의
암소에서
30 min
동안
반응시킨
,
파장
517 nm
(UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)
에서
흡광도를
측정하였다
.
DPPH
라디칼
소거
활성
(%)
아래의
식에
따라
구하였으며
,
IC50value (mg/mL)
50%
DPPH
소거활성을
나타내는
료의
농도
(mg/mL)
정의하였다
.
DPPH radical scavenging activity (%)=
(
Control
517-
Sample
517)×100
Control
517
이때
,
대조구
(control517)
시료용액
대신
이온수를
가하여
,
측정한
흡광도를
나타내었다
.
ABTS+ 라디칼 소거 활성
2,2'-Azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diam-
mouium salt (ABTS+)
라디칼
소거활성은
Binsan et al. (2008)
방법을
다소
수정한
Yoon et al. (2017)
따라
측정하였다
.
시료용액
(1 mL)
3 mL
ABTS+
용액과
혼합하여
,
실온의
암소에서
30 min
동안
반응시킨
,
파장
734 nm
에서
흡광도를
측정하였다
. ABTS+
라디칼
소거활성
(%)
아래의
식으로
산하였으며
, IC50value (mg/mL)
50%
ABTS+
라디칼
소거
활성을
나타내는
시료의
농도
(mg/mL)
정의하였다
.
ABTS
+ radical scavenging activity (%)=
(
Control
734-
Sample
734)×100
Control
734
이때의
대조구
(control734)
시료용액
대신
이온수를
가하
,
측정한
흡광도를
나타내었다
.
SOD 유사활성
Superoxide dismutase (SOD)
유사활성은
Marklond and
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
697
Marklund (1974)
방법을
일부
수정한
Yoon et al. (2017)
따라
측정하였다
. 500 μL
시료용액은
500 μL
7.2 mM
pyrogallol (10 mM HCl
용해
)
3 mL
1 mM EDTA
유하는
50 mM Tris-HCl
완충액
(pH 8.5)
혼합하여
, 30 min
동안
반응시켰다
.
이어서
100 μL of 1N HCl
가하여
반응정
시키고
,
파장
420 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)
흡광도를
측정하여
아래의
식을
통해
SOD
유사활성
(%)
계산하였다
.
SOD-like activity (%)=
[1- (
Sample
420-
Sample Blank
420)]×100
(
Control
420-
Control Blank
420)
이때의
sample blank
시료에
1 N HCl
가해
반응
정지
, pyrogallol
첨가하여
측정한
흡광도이며
, control blank
시료
대신
이온수와
1 N HCl
혼합한
다음
, pyrogallol
첨가해
측정한
흡광도를
나타내었다
.
환원력
시료용액의
환원력
(RP, reducing power)
Oyaizu (1988)
방법을
일부
수정한
Yoon et al. (2017)
따라
측정하였다
.
시료용액
(1 mL)
1 mL
0.2 M sodium phosphate
완충액
(pH 6.6)
1 mL
1% (w/v) potassium ferricyanide
혼합하
50
항온수조에서
20 min
동안
반응시켰다
.
이어서
1 mL
10% (w/v) trichloroacetic acid
가해
반응정지하고
,
원심
분리
(1,890
g
, 10 min)
하였다
. 1.5 mL
상층액은
동량의
온수와
0.3 mL
0.1% (w/v) ferric chloride
용액을
혼합하여
,
10 min
동안
반응
,
파장
700 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto,
Japan)
에서
흡광도를
측정하였다
.
환원력의
EC50
(mg/mL)
흡광도
0.5
나타내는데
필요한
시료의
농도로
정의하였다
.
Tyrosinase 저해활성
시료용액의
tyrosinase
저해활성은
Iida et al. (1995)
법을
다소
수정하여
측정하였다
.
, 300 μL
시료용액은
900
μL
mushroom tyrosinase (50 Unit/mL)
1.5 mL
50 mM
phosphate buffer (pH 6.8)
혼합하여
실온에서
30 min
동안
전단계
반응을
실시한
, 300 μL of 10 mM 3,4-Dihydroxy-L-
phenylalanine (L-DOPA)
용액을
가하여
,
파장
475 nm
에서
20
min
동안
1 min
간격으로
생성되는
dopachrome
흡광도를
니터링하면서
측정하였다
. Tyrosinase
저해활성
(%)
아래의
식을
통하여
계산하였다
.
Tyrosinase inhibitory activity (%)=
(
Control
475-
Sample
475)×100
Control
475
여기서
대조구
(control475)
시료
대신
이온수
가하여
측정
흡광도를
의미하였다
.
ACE 저해활성
Angiotensin I-converting enzyme (ACE)
저해활성은
Cush-
man and Cheung (1971)
방법을
다소
수정한
Yoon et al.
(2017)
따라
측정하였다
. 100 μL
시료용액
, 50 μL
ACE
그리고
50 μL
0.05 M sodium borate
완충액
(pH 8.3)
합한
반응액은
실온에서
30 min
동안
전단계
반응을
실시한
, 50 μL
5 mM hippurly-his-leu (HHL) acetate salt
함유
0.05 M sodium borate
완충액
(pH 8.3)
가하여
37
온수조에서
60 min
동안
반응을
진행하였다
.
효소반응의
정지
250 μL of 1 N HCl
가하여
실시하였으며
,
이어서
반응
중의
유리된
hippuric acid
추출을
위하여
1.5 mL
ethyl
acetate
가한
다음
,
원심분리
(1890
g
, 10 min, 4)
하였다
. 1.0
mL
상층액을
시험관에
옮기고
100
heating block
에서
ethyl acetate
완전히
증발시킨
다음
,
남아있는
hippuric acid
1.0 mL
이온수로
용해시킨
,
파장
228 nm (UV-2900,
Hitachi, Kyoto, Japan)
에서
흡광도를
측정하였다
. ACE
저해활
(%)
아래의
식에
따라
구하였으며
, IC50
(mg/mL)
ACE
활성의
50%
저해하는
시료의
농도로
정의
하였다
.
ACE inhibitory activity (%)=
[1- (
Sample
228-
Sample Blank
228)]×100
(
Control
228-
Control Blank
228)
이때의
sample blank
시료에
1 N HCl
가하여
반응정지
시킨
, HHL
첨가해
측정한
흡광도이며
, control blank
대신
이온수와
1 N HCl
혼합한
다음
, HHL
가하여
정한
흡광도를
나타내었다
.
통계처리
모든
실험은
3
이상
반복
실시하여
,
평균
(average)
표준
편차
(standard deviation)
나타내었다
.
데이터는
SPSS 12.0
K (SPSS Inc., Chicago, IL, USA)
통계프로그램을
이용하여
ANOVA test
통해
분산분석을
실시하고
, Duncan
다중위
검정법으로
최소유의차검정
(P<0.05)
실시하였다
.
결과 고찰
단백질 회수율
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
알로부터
전점용해
/
침전
(ISP, isoelectric solubilization/precipitation)
정을
통한
roe protein isolates (RPIs)
회수과정
중에
발생하
가공처리수
(IPWs, isolate processed waters)
단백질
회수
(
시료의
기준에서는
단백질
손실율
)
대하여
Table 1
나타
내었다
.
먼저
,
시료인
어류
알의
단백질
함량은
BH
15.98, ST
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
698
18.16
그리고
YT
18.27 g/100 g
이었다
.
이들
어류
알에
6
배량의
이온수를
가해
균질화
다음
, ISP
공정을
통해
발생한
IPWs
양은
어류
100 g
처리시
BH
590-613 mL,
ST
548-675 mL
그리고
YT
535-548 mL
수준이었다
.
(BH)
단백질에
대하여
, IPWs
단백질
회수율
(
어류
준으로는
손실율
)
18.44-20.68%
범위이었으며
, IPW-1 (pH
11/4.5)
회수율이
가장
높은
결과를
나타내어
,
처리공정에
유의적인
차이가
있었다
(P<0.05). ST
경우
IPWs
단백
회수율은
10.94-15.73%
범위이었으며
, IPW-2 (pH 11/5.5)
회수율이
유의적으로
높았으나
(P<0.05),
이외의
IPWs
간에
차이가
없었다
.
한편
, YT
경우
7.97-10.73%
범위의
단백
회수율을
나타내었으며
, IPW-4 (pH 12/5.5)
단백질
회수
율이
유의적으로
높았다
.
이상의
결과로
ISP
공정의
pH
조정에
따른
어류
분리단백질의
회수과정
중에
발생하는
IPWs
백질
회수율
(
손실율
)
어종
,
알칼리
용해
침전
과정에
따른
유의적인
차이가
있는
것이
확인
되었다
(P<0.05).
또한
색육
어류인
넙치가
회유성
혈합육
어류인
다랑어류에
비해
백질의
손실율이
높은
것으로
나타났다
.
Yoon et al. (2017)
어류
농축물
제조과정에서
얻어진
가공처리수는
넙치가
다랑어류
보다
단백질
회수율
(4-
10%)
유의적으로
높다고
하여
,
실험의
결과와
유사한
향을
나타내었으며
,
이는
넙치
알이
다랑어류
알에
비하여
가용
성의
유기성분
함량이
많은
것에
기인하는
것이라
판단되었다
.
Cho et al. (2000)
오징어
탈피
수세수와
자숙수에는
1.1%
0.6%
단백질성분이
존재하여
,
오징어
단백질의
5.5%
3.0%
차지였으며
, Kim et al. (2001b)
가공처
리수의
단백질함량은
0.4%-0.8%
이라고
하였다
.
또한
수산가
원료로서
가다랑어
,
문어
자숙
가공처리수에는
1.4-
3.6%
범위의
단백질을
함유하고
(Oh et al., 2007),
붉은
대게
가공처리수의
단백질함량이
12.2%
라고
하였다
(Kang et al.,
2007).
수세
가열처리
공정
중에
원료
중량당
단백질의
손실
5-30% (Watanabe et al., 1982; Afonso and Borquez, 2002)
이르고
,
원료
중량당
10-50
배의
가공처리수가
발생하며
,
용성
단백질성분
지질성분이
2-5 g/L (
0.2-0.5 %)
함유
되어
있다고
보고하였다
(Watanabe et al., 1982; Dumay et al
2008).
이상의
연구보고에
따르면
,
수산물
원료의
가공을
위하
사용되는
수세수와
자숙수
원료의
처리공정에
따른
가공
처리수에는
다양한
농도의
단백질이
함유되어
있고
,
원료
단백
질로부터
상당량의
손실이
가공공정
중에
발생하는
것이
확인
되었다
. ISP
공정에
따른
어류
분리단백질의
제조
회수한
이후에도
이들
IPWs
에는
이상의
연구보고의
수세수
또는
자숙
수에
비해
,
단백질
함량이
높은
것을
확인할
있었으며
,
어류
100 g
처리
1.5-3.3 g
단백질성분이
함유되어
있어
단백
함량
기준으로
8-21%
손실되는
것으로
,
실험과정을
통해
확인되었다
.
따라서
이들
IPWs
식품기능성
생리활성
대한
분석을
통해
ISP
공정에
따른
가공처리수의
식품소재로
서의
이용
방안에
대해
살펴보고자
하였다
.
단백질 분자량 분포(SDS-PAGE)
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
알의
ISP
정을
통해
발생
하는
IPWs
SDS-PAGE
의한
단백질분자량
분포는
Fig. 1
나타내었다
.
넙치
(BH)
알의
단백질분포
(Lane
1)
75-50 K
범위에서
3
, 50-25 K
범위에서
3
그리고
15-
10 K
범위에서
2
개의
단백질밴드가
관찰되었다
. ISP
공정을
발생한
IPWs
중에서
IPW-1 (Lane 2)
IPW-2 (Lane 4)
각각
pH 11
12
에서
알칼리
가용화
과정을
거친
, pH 4.5
침전과정을
거쳐
분리단백질을
회수한
다음
발생한
가공
처리수로서
,
이들
IPW
간에는
단백질
밴드의
분포에는
거의
이가
없는
것으로
확인
되었으며
, 37 K
부근에
희미한
단백질
밴드와
15 K
부근에서
하나의
단백질
밴드가
관찰되었다
.
한편
IPW-3 (Lane 3)
IPW-4 (Lane 5)
경우
, pH 5.5
에서
침전
Table 1. Protein recovery (%, w/v) of isolate processed waters
(IPW) obtained from sh roe during isoelectric solubilization and
precipitation (ISP) process
Sample
Volume
(mL/100 g
roe)
Protein
1
(mg/mL)
Total
protein
(g/100 g roe)
Protein
loss (%)
BH
Roe 15.98 -
IPW-1 613.10 5.39 3.30
a
20.68
a
IPW-2 549.34 5.36 2.94
a
18.43
b
IPW-3 602.38 4.98 3.00
a
18.77
b
IPW-4 590.63 5.27 3.11
a
19.48
ab
ST
Roe 18.16 -
IPW-1 557.92 3.59 2.00
b
11.03
b
IPW-2 557.99 5.12 2.86
a
15.73
a
IPW-3 547.51 3.63 1.99
b
10.94
b
IPW-4 674.75 3.15 2.13
b
11.70
b
YT
Roe 18.27 -
IPW-1 547.55 2.66 1.46
c
7.97
c
IPW-2 547.40 2.83 1.55
b
8.48
bc
IPW-3 546.54 2.92 1.60
b
8.74
b
IPW-4 535.09 3.54 1.89
a
10.37
a
1Based on Lowry method (1951). Values represent the mean ± SD
of n=3. Means with different small letters within same column in
each sample are signicantly different at P<0.05 by Duncan's mul-
tiple range test. BH, bastard halibut
Paralichythys olivaceus
; ST,
skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT, yellown tuna
Thunnus
albacares
; IPW-1 and IPW-2, isolate processed waters adjusting
pH 4.5 and 5.5, respectively, after alkaline solubilization at pH 11;
IPW-3 and IPW-4, isolate process waters adjusting pH 4.5 and 5.5,
respectively, after alkaline soulbilization at pH 12.
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
699
과정을
거쳐
생긴
가공처리수로서
, 37-25 K
범위
, 15 K
부근에
하나의
밴드
그리고
15 K
이하에서
진한
단백질
분포가
찰되었으며
,
이들
IPW
간에는
단백질
분포에
있어서
차이가
되지
않았다
.
가다랑어
(ST)
(Lane 6)
경우
, 250-100 K
범위에서
단백
질의
분포가
확인되었으나
밴드를
형성하지는
않았으며
, 75 K
부근에서
뚜렷한
2
개의
밴드
, 37 K, 25 K
15 K
부근에서
리고
15-10 K
에서도
하나의
밴드가
관찰되었다
.
가다랑어
(ST)
IPWs
중에서
Lane 7 (pH 11/4.5)
15-10 K
사이의
하나의
밴드와
10 K
미만의
단백질
밴드만이
관찰될
뿐이었으나
, Lane
9 (pH 12/4.5)
경우
, 50-37 K
범위에서
희미한
하나의
밴드
,
37-25 K
범위
, 25 K
부근
, 15 K
부근
, 15-10 K
사이에
각각
하나
밴드
그리고
10 K
미만의
분자량을
가지는
단백질의
분포가
확인되었다
.
그리고
Lane 8 (pH 11/5.5)
Lane 10 (pH 12/5.5)
단백질밴드의
분포는
거의
유사하였으나
, Lane 8
15-10
K
사이에
분포하는
단백질밴드에
차이가
관찰되었다
.
한편
,
다랑어
(YT)
(Lane 11)
가다랑어
(Lane 6)
유사한
백질밴드의
분포가
확인되었으나
, 37 K
부근에서
2
개의
단백
질밴드가
관찰된
것에
차이가
있었다
. pH 4.5
에서
침전과정
거친
IPW-1 (Lane 12, pH 11/4.5)
IPW-3 (Lane 14, pH
12/4.5)
그리고
pH 5.5
에서
침전과정을
거친
IPW-2 (Lane
13, pH 11/5.5)
IPW-4 (Lane 15, pH 12/5.5)
상호
유사한
단백질
분포를
보였으며
, Lane 13
15
Lane 12
14
하여
15-10 K
범위의
단백질밴드가
진하게
보임으로써
분자
범위의
단백질이
다량
분포하고
있음이
확인
되었다
.
이상의
SDS-PAGE
따른
어류
알의
단백질의
분자량분포는
어종
차이가
있었으나
,
등전점
용해
/
침전
공정에
의해
생긴
IPWs
에는
공통적으로
15 K
이하의
분자량의
단백질
성분이
다량
분포하고
있음을
확인할
있었다
.
따라서
단백질의
하전
특성
이용한
ISP
공정을
통해
어류
알로부터
분리단백질의
회수가
가능하였으며
,
아울러
IPWs
단백질
분포를
관찰함으로써
백질의
분자량에
따른
분획효과도
확인되었다
.
넙치
(Lane 1),
가다랑어
(Lane 6)
황다랑어
(Lane 11)
알의
100-75 K
범위에
관찰된
단백질
밴드는
skipjack, tongol
bonito roes
그리
egg yolk
에서
확인된
97 K
단백질
분자량을
갖는
vitellin
like protein, 50-37K
범위와
15 K
부근의
단백질
밴드는
각각
actin, troponin-T
myosin light chain (MLC)
으로
추정되었
으며
(Intarasirisawat et al., 2011), 15 K
이하의
단백질밴드는
ISP
공정의
가공처리수로
유리된
가용성
단백질일
것으로
판단
되었다
.
따라서
15 K
이하의
저분자량의
가용성
단백질이
분포
하는
것이
관찰된
IPWs
에는
거품성
유화능과
같은
식품기
능성이
기대되었다
.
거품 형성능
Table 2
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
분리단백질의
회수과정
중에
발생한
IPWs
식품기능성으로
거품
유화
형성능에
대한
결과를
나타낸
것이다
.
거품성
(FC, foaming capacity)
경우
, BH
ST
IPW-3 (
각각
155
194%)
그리고
YT
IPW-4 (164%)
로서
시료별
IPW
가장
높은
거품형성능을
나타내었으며
,
동일
시료내의
리방법에
따른
유의적인
차이가
인정
되었다
(P<0.05).
이러한
차이는
IPW
단백질
농도에
기인
하지만
,
실험
결과
단백
농도에
의존적으로
거품
형성능이
유의적인
증가를
나타내
지는
않았다
(Yoon et al., 2017).
전반적으로
ST
IPWs (119-
194%)
BH (125-155%)
YT
IPWs (107-163%)
비하
거품성이
우수한
경향을
나타내었다
.
또한
어류
알로부터
pH 12
에서의
알칼리
가용화를
거친
IPW-3
IPW-4
상대적
으로
거품
형성능이
우수한
경향을
보였으며
,
이어서
진행하는
어류
분리단백질을
회수하는
침전과정에서는
BH
ST
pH 4.5
에서
,
그리고
YT
pH 5.5
에서
거품성이
유의적으
우수한
결과를
나타내어
,
어종간의
차이도
일부
인정되었다
.
한편
,
거품형성
, 60
분까지
거품
안정성
(FS, foam stability)
있어서는
먼저
BH
IPW-1
4
각각
45%
24%
거품
유지되었으며
, YT
IPW-2
4
각각
38%
67%
거품
안정성인
인정된
반면에
ST
경우
, IPW-4
에서만
30
분간의
품이
유지되었을
뿐이었다
. Yoon et al. (2017)
어류
자숙
가공처리수는
단백질농도가
높을수록
거품성이
우수하며
,
료중의
단백질
농도가
식품기능성으로서
거품성에
있어
중요한
인자라고
보고하였다
.
그러나
실험의
결과의
IPWs
에서는
백질
농도에
따른
거품성의
유의적인
차이는
인정되지
않았으
Fig. 1. SDS-PAGE pattern of isolate processed waters obtained
from sh roe during isoelectric solubilization and precipitation
(ISP) process. M, molecular weight maker; Lane 1, 6 and 11 for
sh roes; Lane 2, 7 and 12 for IPW-1; Lane 3, 8 and 13 for IPW-2;
Lane 4, 9 and 14 for IPW-3; Lane 5, 10 and 15 for IPW-4. IPW-1
and IPW-2, isolate processed water adjusting pH 4.5 and 5.5, re-
spectively, after alkaline solubilization at pH 11; IPW-3 and IPW-
4, isolate processed water adjusting pH 4.5 and 5.5, respectively,
after alkaline solubilization at pH 12.
Skipjack tuna Yellowfin tunaBastard halibut
250
150
100
75
50
37
25
20
15
10
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
14.58 15.28
20.83
0
10
20
30
40
BH ST YT
Tyrosinase inhibition (%)
Sample
1.83
1.52
2.00
0.0
1.0
2.0
3.0
BH ST YT
IC50 (mg/mL)
Sample
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
700
,
이는
단백질
하전
(charge)
따른
기포성
용해도
특성을
이용한
등전점
가용화
/
침전
공정을
통해
발생한
IPWs
시료
로부터
유리
용해되는
자숙
가공처리수와는
다른
아미노산
단백질
조성에
기인하는
것으로
판단되었다
. Intarasirisawat
et al. (2012)
탈지
skipjack roe
단백질
가수분해물이
효소
작용으로
인한
단백질의
저분자화로
용해도가
증가하여
거품
성이
개선되었다고
하였으며
, Chalamaiah et al. (2015)
carp
roe protein
효소
가수분해물은
소수성
(hydrophobic)
아미
노산의
증가로
인해
-
공기
계면에서
급속히
흡착되어
거품성
개선된다고
보고한
있다
.
따라서
저분자량의
단백질
peptides
많이
분포하는
것으로
확인된
IPWs
에는
이상의
구보고에
언급된
어류
단백질
가수분해물에
준하는
거품형
성능을
나타내는
것이
확인되었다
.
거품이
형성되는
동안
,
새로
생성된
공기
-
액상
계면
(interface)
신속히
흡착되는
단백질들
계면에서
단백질의
되풀림
(unfolding)
단백질분자의
재배
치를
거치게
되어
,
거품형성능이
향상된다
(Damodaran, 1997).
따라서
연구의
pH
조절에
의한
등전점
용해
침전공정으
인해
구성
단백질의
하전에
변화가
일어나
단백질의
되풀림
단백질분자의
재배치가
일어나게
되어
,
침전단백질이
회수
되고
남은
IPWs
에는
저분자의
peptide
들이
다량
함유되어
있어
식품기능성으로서
거품형성능이
우수한
것으로
판단되었다
.
유화 형성능
유화
형성능
(emulsifying activity)
water-oil
계면에서
단백
질이
oil
흡착하여
emulsion
형성하는
능력이며
,
유화
정성
(emulsion stability)
형성된
emulsion
일정시간
동안
emulsion
유지시키는
능력으로
정의된다
(Can Karaca et al.,
2011).
이러한
유화성
(EAI, emulsifying activity index)
화안정성
(ESI, emulsion stbility index)
있어서
(Table 2),
BH
경우
, IPWs
유화성
(EAI, m2/g)
pH 5.5
에서
전과정을
거친
IPW-2
IPW-4
각각
19.13
17.44
로서
호간에는
유의적인
차이가
없었으나
(P>0.05), pH 4.5
에서
침전과정을
거친
IPW-1
IPW-3
과는
유의적인
차이를
나타
내었다
(P<0.05). ST
경우
, IPW-3
IPW-4
유화성은
26.05
28.64 m2/g
로서
IPW-1
IPW-2
비하여
유화성
유의적으로
우수하였으나
(P<0.05), YT
경우는
IPW-1
IPW-2
유화성이
IPW-3
4
비하여
유의적으로
높은
유화
성을
나타내어
,
어종간의
차이가
인정되었다
.
전반적으로
IPWs
유화성은
YT (26.84-43.09 m2/g)
가장
우수하였으며
, ST
그리고
BT
순이었다
.
이상의
결과는
어류
추출물
(45-107
m2/g)
자숙
가공처리수
(15-47 m2/g)
비하여
IPW
유화성
유사하거나
다소
낮은
수준임을
확인
있었다
(Yoon et
al., 2017).
한편
,
생성된
emulsion
유지되는
시간으로
나타낸
유화안
정성
(ESI, min)
YT
IPWs
12-18 min, ST
12-15 min
그리고
BH
12-14 min
으로
어종간의
유화안정성에는
거의
차이가
없었다
.
분자량이
상대적으로
peptide
존재하거
소수성
peptide
함량이
높을수록
emulsion
안정성에
여하게
되며
,
균질화
과정에서
새로
형성된
oil
방울의
표면에
peptide
흡착됨으로서
, oil
방울끼리의
결합을
방지하는
보호
Table 2. Foam capacity (FC), foam stability (FS), emulsifying activity index (EAI) and emulsion stability index (ESI) of isolate process
water (IPW) obtained from sh roe by ISP process (Sample)
Sample Protein
1
(mg/mL) FC (%) FS (%) 30 min FS (%) 60 min EAI (m
2
/g) ESI (min)
BH
IPW-1 5.39 133.70±2.03
b
73.29±1.81 45.08 ±5.08 9.71±1.00
b
12.21±0.15
IPW-2 5.36 124.84±4.89
b
25.65±6.69 -19.13 ±1.20
a
13.58±0.19
IPW-3 4.98 155.28±13.79
a
- - 9.64±1.35
b
11.90±0.46
IPW-4 5.27 124.74±0.00
b
43.44±6.47 24.40 ±3.84 17.44±1.65
a
14.00±0.72
ST
IPW-1 3.59 121.59±4.46
c
- - 6.76±0.68
c
15.05±0.23
IPW-2 5.12 145.53±0.00
b
- - 15.82±0.85
b
11.97±0.27
IPW-3 3.63 194.19±0.86
a
- - 26.05±1.18
a
14.02±1.06
IPW-4 3.15 119.06±0.31
c
91.02±6.11 -28.64±1.61
a
12.28±0.58
YT
IPW-1 2.66 106.98±0.80
c
- - 31.36±1.74
b
18.15±0.90
IPW-2 2.83 122.27±3.49
b
56.21±0.06 37.96 ±6.14 43.09±1.79
a
13.52±1.14
IPW-3 2.92 120.29±3.15
b
- - 28.34±0.84
c
12.24±0.21
IPW-4 3.54 163.85±3.49
a
74.10±2.63 66.68 ±2.92 26.84±0.68
c
15.65±0.51
1Based on Lowry method (1951). Values represent the mean±SD of n=3. Means with different small letters within same column in each
sample are signicantly different at P<0.05 by Duncan's multiple range test. BH, bastard halibut
Paralichythys olivaceus
; ST, skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT, yellown tuna
Thunnus albacares
; IPW-1 and IPW-2, isolate processed water adjusting pH 4.5 and 5.5, respec-
tively, after alkaline solubilization at pH 11; IPW-3 and IPW-4, isolate processed water adjusting pH 4.5 and 5.5, respectively, after alkaline
soulbilization at pH 12. ‘-’, not detected.
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
701
막들이
만들어지면서
emulsion
형성이
이루어진다
(Dickin-
son and Lorient 1994).
또한
,
분자량의
peptides
양친매성
(amphipathic)
아니더라도
좋은
유화
특성을
나타낼
있어
(Chobert et al., 1988),
연구의
IPWs
중에는
저분자
단백질
,
peptide
아미노산의
하전
(charge)
관련된
친수성
소수
성의
작용기에
의해
수중
유적형의
emulsion
생성되는
것으
추정되었다
.
항산화 활성
Table 3
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
분리단백질의
제조과정
중에
발생하는
IPWs
산업적
이용
능성을
알아보기
위하여
살펴본
DPPH
ABTS+
라디칼
소거
활성에
대한
결과를
나타낸
것이다
.
먼저
DPPH
라디칼
소거
활성
(DPPH, mg/mL)
경우
, IPWs
IC50
값은
먼저
BH
0.22-1.18 mg/mL
범위였으며
, ST
0.13-0.44 mg/mL
범위
,
그리고
YT
0.10-1.43 mg/mL
범위로서
, ST
IPWs
상대적으로
우수한
소거활성을
보였
.
어종
가장
우수한
DPPH
라디칼
소거활성을
나타낸
IPW
BH
IPW-3 (0.22 mg/mL), ST
IPW-1 (0.13 mg/mL)
그리고
YT
IPW-3 (0.10 mg/mL)
이었다
.
그리고
어종의
IPWs
모두
IPW-1
3
DPPH
라디칼
소거활성이
유의적으
높은
것으로
확인되었다
(P<0.05).
붉은
대게
자숙수
(Kang
et al., 2007), yellow stripe trevally (Klompong et al., 2007)
sardinella (Bougatef et al., 2010) byproducts
rohu roe (Cha-
lamaiah et al., 2013)
단백질
가수분해물의
DPPH
소거활성
(IC50)
0.5-1.0 mg/mL
수준으로
실험의
결과와
비교하여
유사하거나
오히려
낮은
소거활성을
나타내어
, IPWs
DPPH
소거활성이
효소처리
가수분해물
보다
우수하였다
.
한편
, ABTS+
라디칼
소거활성
(ABTS+, mg/mL)
있어서는
DPPH
라디칼
소거
활성과는
달리
어종의
IPWs
모두
IPW-2
4
IPW-1
3
비하여
유의적으로
강력한
소거활성을
나타내었다
(P<0.05).
항산화
활성에
있어서
IC50
값으로
살펴본
IPWs
ABTS+
라디칼이
DPPH
라디칼에
비하여
상대적으로
민감하게
반응하는
것으로
확인되었다
. Li et al. (2012)
보고
따르면
, grass carp
가수분해물의
ABTS+
소거활성이
DPPH
소거
활성
비해
강하다고
하였으며
, zein (Tang et al., 2010)
rohu roe (Chalamaiah et al., 2013)
가수분해물의
결과에
서도
유사한
결과를
나타내었다
.
이상의
결과와
연구보고에서
라디칼
소거
활성은
효소
가수분해물이나
가공처리수에
존재하
아미노산
소수성
,
조성
서열과
밀접한
관련이
있다고
판단
되었다
(Bougatef et al., 2010; Chalamaiah et al., 2013).
Table 4
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
IPWs
대한
DPPH
ABTS+
라디칼
소거활성
(Table 3)
결과에
비추어
IPW-1 (pH 11/4.5)
IPW-3 (pH 12/4.5)
상으로
환원력
(Reducing power)
SOD
유사활성에
대한
과를
나타낸
것이다
.
먼저
환원력
(EC50, mg/mL)
있어서
BH
IPW-3 (0.41 mg/mL)
가장
강력한
환원력을
나타
내었고
ST
IPW-3 (0.51 mg/mL)
그리고
IPW-1 (0.60 mg/
mL)
순이었으며
, YT
BH
ST
비하여
약한
환원력을
였다
(P<0.05). SOD
유사활성
(IC50, mg/mL)
있어서는
BH
IPW-3 (1.15 mg/mL)
가장
강한
활성을
보였고
,
이어서
YT
IPW-1 (1.68 mg/mL)
그리고
ST
IPW-1 (1.94 mg/mL)
순이었다
.
이상
IPWs
항산화
활성은
ABTS+
라디칼에
대해
가장
민감하게
반응하였으며
,
다음으로
DPPH,
환원력
그리고
SOD
유사활성
순이었다
. Yoon et al. (2017)
어류
자숙
공처리수의
항산화
활성
관련
연구에서
ABTS+
라디칼
,
환원력
,
DPPH
라디칼
그리고
SOD
유사활성
순으로
예민하게
반응한
다고
보고한
있어
,
어류
가공처리
방법
(
가열처리
/
칼리처리
)
간에
차이가
있지만
,
이들
가공처리수는
유사한
항산
활성의
경향을
나타내었다
.
따라서
어류
알로부터
등전점
용화
/
침전
공정을
통해
분리단백질을
회수하는
과정에
발생하
가공처리수는
다양한
항산화
활성을
나타냄으로써
,
산업적
응용
가능성을
기대할
있을
것으로
판단되었다
.
Table 3. DPPH and ABTS radical scavenging activities of isolate
processed waters (IPWs) obtained from sh roe by ISP process
(Sample)
Sample Protein
1
(mg/mL)
DPPH
(IC
50,
mg/mL)
ABTS
(IC
50
, mg/mL)
BH
IPW-1 1.97 0.34
b
0.0969
b
IPW-2 2.17 1.54
d
0.0341
a
IPW-3 1.86 0.22
a
0.1655
c
IPW-4 1.97 1.18
c
0.0334
a
ST
IPW-1 1.56 0.13
a
0.1479
c
IPW-2 2.01 0.28
c
0.0789
b
IPW-3 1.68 0.16
b
0.1679
d
IPW-4 3.15 0.44
d
0.0412
a
YT
IPW-1 2.66 0.59
c
0.0662
b
IPW-2 2.83 1.43
d
0.0435
a
IPW-3 2.92 0.10
a
0.1135
d
IPW-4 1.40 0.37
b
0.0734
c
1Based on Lowry method (1951). Values represent the means of
n=3. Means with different small letters within same column in
each sample are signicantly different at P<0.05 by Duncan's
multiple range test. DPPH, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl; ABTS,
2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid. BH, bastard
halibut
Paralichythys olivaceus
; ST, skipjack tuna
Katsuwonus pe-
lamis
; YT, yellown tuna
Thunnus albacares
; IPW-1 and IPW-2,
isolate processed water adjusting pH 4.5 and 5.5, respectively, af-
ter alkaline solubilization at pH11; IPW-3 and IPW-4, isolate pro-
cessed water adjusting pH 4.5 and 5.5, respectively, after alkaline
soulbilization at pH 12.
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
702
Tyrosinase 및 ACE 저해활성
식품기능성
항산화성에
대한
이상의
결과를
토대로
넙치
(BH),
가다랑어
(ST)
그리고
황다랑어
(YT)
알의
IPW-3
대하
tyrosinase
저해활성
(%)
으로
살펴
미백효과와
ACE
저해
활성
(IC50, mg/mL)
으로
살펴
항고혈압
효과에
대한
결과는
Fig. 2
나타내었다
.
태양광
노출은
keratinocytes
의한
라닌
생성
인자의
방출을
유도하여
과잉
색소
침착을
유발하
tyrosinase
합성을
자극하게
되어
(Chlapanidas et al., 2013),
태양광의
자외선으로
인해
활성산소종
(ROS, reactive oxygen
species)
발생
시킴으로서
피부의
색소침착에
영향을
주게
(Masaki, 2010).
최근
tyrosinase inhibitors
색소침착의
억제와
관련한
의약
화장품
분야에
관심이
증가하고
있다
(Schurink et al., 2007). IPW-3
tyrosinase
저해활성
(%)
각각
14.58 (BH), 15.28 (ST)
그리고
20.83% (YT)
로서
YT
가장
강한
저해활성을
나타내었다
(Fig. 2 top). Yoon et al.
(2017)
어류
추출물의
tyrosinase
저해활성은
7.5-14.2%
수준이었으나
,
가열처리
공정을
통해
얻어진
자숙
가공처리수
경우는
0.4-2.5%
수준의
저해활성만을
나타내어
가열처리
의한
단백질
성분의
응고
변성으로
인해
저해활성이
감소
하였다고
보고하였다
. Choi et al. (2011)
참치
자숙
가공처리
수의
tyrosinase
저해활성은
31.5%
수준이며
,
감마선
조사를
저해활성이
증가한다고
하였다
.
또한
아임계수로
가수분해
멸치가수분해물의
tyrosinase
저해활성은
14.7%
라고
하여
(Choi et al., 2017),
실험의
IPW-3
tyrosinase
저해활성은
어류
추출물
자숙
가공처리수
그리고
아임계수
멸치
가수
분해물에
비하여는
유사한
수준이거나
우수한
반면에
,
참치
숙액에
비하여는
낮은
수준의
저해활성을
보였다
.
이상의
결과
연구보고를
통해
분자량의
단백질
, peptide
또는
아미노
산을
함유하는
가공처리수의
단백질성분이
tyrosinase
저해활
성을
나타낸다는
것은
인정되었으나
,
저해활성은
강하지
것으로
확인
(30%
미만
)
되어
tyrosinase
저해를
통한
미백효
과는
기대하기
어려울
것으로
판단되었다
.
한편
, IPW-3
ACE
저해활성
(IC50, mg/mL)
으로
살펴
고혈압
효과
(Fig. 2 bottom)
각각
1.83 (BH), 1.52 (ST)
리고
2.00 mg/mL (YT)
이었으며
, ST
BH
YT
비하여
상대적으로
우수한
ACE
저해활성을
나타내었다
. Yoon et al.
(2017)
따르면
,
어류
추출물의
ACE
저해활성은
IC50
1.14-1.63 mg/mL
수준이라고
하였으며
,
이들
자숙
가공처
리수는
1.04-1.31 mg/mL
로서
가열
처리에
따른
ACE
저해활
성에는
차이가
거의
없었다고
보고하였다
.
또한
실험과
련한
수산가공
자숙수의
ACE
저해활성에
관한
보고에서
,
Table 4. Reducing power and SOD-like activities of isolate pro-
cessed waters (IPWs) obtained from sh roe by ISP process (Total)
Sample Protein
1
(mg/mL)
Reducing power
(EC
50
, mg/mL)
SOD
(IC
50
, mg/mL)
BH IPW-1 1.97 0.79
e
2.88
d
IPW-3 1.86 0.41
a
1.15
a
ST IPW-1 1.56 0.60
c
1.94
c
IPW-3 1.68 0.51
b
2.95
d
YT IPW-1 2.66 0.72
d
1.68
b
IPW-3 2.92 0.85
f
2.91
d
1Based on Lowry method (1951). Values represent the means of
n=3. Means with different small letters within the same column are
signicantly different at P<0.05 by Duncan's multiple range test.
SOD, superoxide dismutase. BH, bastard halibut
Paralichythys
olivaceus
; ST, skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT, yellown
tuna
Thunnus albacares
; IPW-1 and IPW-3, isolate process waters
adjusting pH 4.5 after alkaline solubilization at pH 11 and 12, re-
spectively
Fig. 2. Tyrosinase (top) and ACE inhibitory activity (bottom) of
isolate process water (IPW-3) obtained from sh roe by ISP pro-
cess. IPW-3 of isolate processed waters adjusting pH 4.5 after al-
kaline solubilization at pH 12. BH, bastard halibut
Paralichythys
olivaceus
; ST, skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT, yellown
tuna
Thunnus albacares
. Values represent the means of n=3. Means
with different small letters within the sample are signicantly dif-
ferent at P<0.05 by Duncan's multiple range test.
Skipjack tuna Yellowfin tunaBastard halibut
250
150
100
75
50
37
25
20
15
10
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
14.58 15.28
20.83
0
10
20
30
40
BH ST YT
Tyrosinase inhibition (%)
Sample
1.83
1.52
2.00
0.0
1.0
2.0
3.0
BH ST YT
IC
50
(mg/mL)
Sample
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
703
다랑어
,
문어
자숙수에는
거의
저해활성을
나타내지
(Oh et al., 2007)
반면에
,
가다랑어와
황다랑어
자숙수
(Yeo
et al., 1998)
멸치
자숙수
(Ji et al., 2002)
chromatography
active fraction
에는
0.62-1.00 mg/mL
저해활성을
나타내어
,
가공처리수의
분획
정제과정을
통해
ACE
저해활성이
개선
된다고
하였다
. ACE
제어와
관련한
천연의
peptide
대한
재의
연구는
수산식품의
가식부
자원에서
수산가공
부산물의
단백질
자원으로
연구범위가
확대
되었다
.
이러한
수산가공
부산물의
단백질자원인
yellow sole frame (Jung et al., 2006),
Pacic cod skin (Himaya et al., 2012)
그리고
skipjack roe (In-
tarasirisawat et al., 2013)
효소
가수분해물들은
35-86%
ACE
저해활성을
나타내었다
.
또한
다양한
효소를
이용한
수분해물은
1.5-16.3 mg/mL (IC50)
수준의
저해활성을
보였으
,
특히
Protamex
가수분해물이
가장
우수하다고
보고하였다
(Chung et al., 2006).
붉은
대게
자숙수
(Kang et al., 2007)
효소
가수분해물의
ACE
저해능
(IC50)
1.4-1.7 mg/mL
준이었다
.
실험결과와
연구보고를
통해
,
어류
가공처리수
(IPW)
ACE
저해활성은
연구보고들의
가수분해물과
활성획
보다
강하거나
유사한
활성을
나타내었다
.
아미노산 조성
어류
알의
등전점
용해
/
침전
공정에서
발생하는
IPW-3s
미노산
조성에
대한
분석결과는
Table 5
나타내었다
.
표에
어류
100 g
대하여
IPW-3
단백질
함량
(mg/100
g protein)
아미노산
조성비
(g/100 g protein)
제시하
,
단백질
함량에
아미노산의
조성비를
곱하면
,
각각의
아미노산함량도
환산
있도록
나타내었다
.
먼저
어류
IPW-3
단백질함량은
100 g
어류
알에
대하여
각각
BH
3,058.3 mg, ST
1,987.6 mg
그리고
1,587.2 mg
으로
어종
따른
유의적인
차이를
보였다
(P<0.05).
이들
어종의
추출물
(2750.4-3594.4 mg)
비하여는
다소
낮은
수준이었으나
,
자숙
가공처리수
(712.9-1490.4 mg/100 g)
비하여는
높은
아미노
함량을
나타내었다
(Yoon et al., 2017).
유리아미노산인
Tau
조성비는
BH (5.85%)
YT (5.79%)
간에는
유의적인
차이
없었으나
(P>0.05), ST (5.34%)
와는
유의적인
차이를
보였
(P<0.05).
그러나
각각
아미노산
조성비에
단백질함량을
곱한
절대적인
함량은
어종
모두
유의적인
차이를
나타내었
(P
<
0.05).
어류
IPW-3
주요
아미노산
(6%
이상
)
경우
, BH
필수
아미노산에서
Val, Leu Lys
Arg,
그리고
비필수
아미노산에
서는
Asp, Ser Glu
Ala
이었으나
, ST
YT
필수아미노산
에서
Val, Leu, His, Lys
Arg,
그리고
비필수
아미노산에서는
Ser, Glu
Ala
으로
백색육
어류인
넙치
(BH)
혈합육
어류인
가다랑어
(ST)
황다랑어
(YT)
간에는
주요
아미노산으로서
His
Asp
조성에
있어서
두드러진
차이가
있음이
확인
되었
. Tau
제외한
필수와
비필수
아미노산의
(EAA/NEAA)
있어서
, IPW-3s
각각
1.04 (BH), 1.32 (ST)
그리고
1.16
(YT)
로서
ST
가장
높은
비율을
보였다
.
넙치
추출물의
수와
비필수
아미노산의
(1.01)
실험결과와
유사한
반면
가다랑어
(1.58)
황다랑어
(1.50)
와는
차이가
있었다
(Yoon
et al., 2017).
이러한
등전점
용해
/
침전
공정을
통해
발생한
공처리수
IPW-3
필수
비필수
아미노산
비의
감소는
필수
아미노산이
상대적으로
비필수
아미노산에
비해
많이
어류
분리단백질로
이행하여
회수되었음을
의미하였다
. Cho et al.
(2000)
오징어
탈피
수세수는
Ile, Leu, Tau, Asp, Glu, Pro
Table 5. Amino acid compositions (%) of isolate processed waters
(IPW-3) produced from the protein isolates preparation of sh roes
by ISP process
Protein
(mg/100 g of roe)
BH ST YT
3058.3
a
1987.6
b
1587.2
c
Tau
1
5.85
a
5.34
b
5.79
a
Thr 3.89
b
4.03
a
4.03
a
Val
2
6.64
a
6.23
b
6.13
b
Met
2
1.83
c
2.56
a
2.33
b
ILe
2
4.00
b
4.71
a
3.48
c
Leu
2
7.61
b
9.00
a
7.17
c
Phe
2
3.61
b
3.91
a
3.62
b
His 2.81
b
9.36
a
7.80
b
Lys 10.32
a
7.66
c
8.54
b
Arg 7.33
b
6.47
c
7.59
a
EAA (%) 48.03
c
53.93
a
50.69
b
Asp 6.29
a
5.16
b
4.24
c
Ser 11.79
a
9.56
b
7.44
c
Glu 7.78
c
8.73
b
11.46
a
Pro
2
1.13
c
1.26
b
1.66
a
Gly
2
4.39
a
3.17
b
4.29
a
Ala
2
9.17
b
8.32
c
9.70
a
Cys 0.96
a
0.83
b
0.96
a
Tyr 4.60
a
3.69
b
3.78
b
NEAA (%) 46.12
a
40.73
c
43.52
b
Total (%) 100.00 100.00 100.00
EAA/NEAA 1.04
c
1.32
a
1.16
b
HAA (%) 38.37
b
39.17
a
38.38
b
1Free amino acid. 2Hydrophobic acids. BH, bastard halibut
Para-
lichythys olivaceus
; ST, skipjack tuna
Katsuwonus pelamis
; YT,
yellown tuna
Thunnus albacares
. EAA, essential amino acids;
NEAA, non-essential amino acids; HAA, hydrophobic amino
acid. Values are means of duplicate determination. Means with
different letters within the same row are signicantly different at
P<0.05 by Duncan’s multiple range test.
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
704
Ala
그리고
자숙수에는
Ile, Leu, Tau, Pro
Ala
주요
리아미노산이라고
하였으며
, Oh et al. (2007)
가다랑어
,
문어
자숙수의
주요
아미노산조성
(6%
이상
)
가다랑어는
His, Lys, Arg, Asp, Glu, Pro, Gly, Ala
이며
,
굴은
His, Lys, Arg,
Asp, Glu,
Pro,
문어는
Arg, Asp, Glu, Pro, Gly
Ala
이라
하였다
.
또한
붉은
대게
자숙수는
Phe, Lys, Arg, Asp, Glu,
Pro
Gly
주요
아미노산이라고
하였다
(Kang et al., 2007).
이상의
결과와
연구보고에서
원료
가공처리수간에도
아미
노산조성의
차이가
확인되었으며
,
이들
가공처리수에는
공통
적으로
Leu, Asp, Glu
Ala
조성비가
높은
것으로
나타났다
(Yoon et al., 2017).
한편
,
,
용해도
,
거품성
유화능과
같은
식품기능성에
영향
주는
IPW-3
소수성
아미노산조성은
각각
38.37% (BH),
39.17% (ST)
그리고
38.38% (YT)
차지하여
, ST
BH
YT
간에는
유의적인
차이가
있었다
(P<0.05).
이는
어류
출물
(41.75-53.92%)
자숙
가공처리수
(41.73-56.40%)
하여
(Yoon et al., 2017)
낮은
수준으로
등전점
용해
/
침전
정을
통한
소수성
아미노산이
분리단백질로
이행되었거나
,
수성
아미노산이
IPW
이행되었음을
의미하였다
.
단백질
원으로
이러한
아미노산
조성에서의
차이가
식품기능성
,
항산
특성
그리고
ACE
저해활성에도
영향을
미치며
,
소수성
친수성
아미노산은
수중
유적형
emulsion
계면활성제로서
작용하여
emulsion
안정성에
기여하게
된다
.
특히
소수성
미노산
(Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Pro, Phe
Met)
강한
항산화
활성에
기여하는
아미노산들이다
(Li et al., 2004). Gomez-Ruiz
et al. (2008)
ABTS+
라디칼과의
반응성이
뛰어난
아미노산
들은
Cys, Trp, Tyr
His
등이며
,
이들
아미노산을
함유하는
peptides
강한
ABTS+
라디칼
소거활성을
나타낸다고
하였
.
또한
Li et al. (2004)
peptide
서열
내에
친수성
아미노산
잔기가
ACE
활성
부위로의
접근을
방해하여
ACE
제어
활성에
영향을
있으며
,
아미노산
서열의
C-
말단에
Tyr, Phe, Trp,
Ala, Gly
Pro
같은
아미노산의
존재가
강한
ACE
저해활
성에
기여하는
(Mahmoodani et al., 2014)
반면에
Val, Pro, Tyr,
Leu, Ala, Lys,
Met
같은
소수성
아미노산은
항산화
pep-
tide
강한
영향을
미친다고
하였다
(Wiriyaphan et al., 2012).
이상의
식품기능성
항산화
특성
ACE
저해활성에
대한
험결과와
연구보고에
따르면
,
어류
알의
등전점
용해
/
침전공정
에서
발생한
가공처리수는
수산식품
가공부산물의
가수
분해물
보다
유사하거나
우수한
식품기능성
생리활성을
타내어
효용성과
가치가
있음이
확인되었다
.
따라서
식품가
공을
위해
사용되는
가공처리수
,
특히
수산물
기원의
가공처리
수는
대량처리로
인해
유기성분
단백질
성분이
희석된
상태
발생하지만
,
이를
적절히
농축하거나
분획을
통하여
분말
재화는
방안을
마련한다면
,
식품기능성
,
항산화
활성
생리
활성을
강화
소재로서
이용
가능성이
매우
높다고
판단되었다
.
논문은
2016
해양수산부
재원으로
한국해양과학기술진
흥원의
지원을
받아
수행된
연구의
일부임
(
수산식품산업기술
개발사업
해역별
특성을
고려한
전통수산가공식품
개발
상품화
).
연구는
2015
년도
(
)
약수학술진흥회
교수학술연
구비
지원사업
(C-D-2016-0006)
의해
수행되었으며
,
연구비
지원에
감사드립니다
.
References
Afonso MD and Borquez R. 2002. Review of the treatment of
seafood processing wastewaters and recovery of proteins
therein by membrane separation processes- prospects of the
ultraltration of wastewaters from the sh meal industry.
Desalination 142, 29-45. http://dx.doi.org/10.1016/S0011-
9164(01)00423-4.
Binsan W, Benjakul S, Visessanguan W, Roytrakul S, Tanaka
M and Kishimura H. 2008. Antioxidative activity of Mun-
goong, an extract paste, from the cephalothorax of white
shrimp (Litopenaeus vannamei). Food Chem 106, 185-193.
http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2007.05.065.
Bliois MS. 1958. Antioxidant determinations by the use of a
stable free radical. Nature 181, 1199-1200.
Bougatef A, Nedjar-Arroume N, Manni L, Ravallec R, Barkia
A, Guillochon D and Nasri M. 2010. Purication and iden-
tication of novel antioxidant peptides from enzymatic hy-
drolysates of sardinelle (Sardinella aurita) by-products pro-
teins. Food Chem 118, 559-565. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodchem.2009.05.021.
Can Karaca A, Low N and Nickerson M. 2011. Emulsifying
properties of chickpea, faba bean, lentil and pea proteins
produced by isoelectric precipitation and salt extraction.
Food Res Int 44, 2742-2750. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodres.2011.06.012.
Chalamaiah M, Hemalatha MD, Jyothirmayi T, Diwan PV,
Bhaskarachary K, Vajreswari A, Ramesh Kumar R and
Dinesh Kumar B. 2015. Chemical composition and im-
munomodulatory effects of enzymatic protein hydrolysates
from common carp (Cyprinus carpio) egg. Nutrition 31,
388-398. http://dx.doi.org/10.1016/j.nut.2014.08.006.
Chalamaiah M, Jyothirmayi T, Bhaskarachary K, Vajreswari A,
Hemalatha R and Dinesh Kumar B. 2013. Chemical compo-
sition, molecular mass distribution and antioxidant capacity
of rohu (Labeo rohita) roe (egg) protein hydrolysates pre-
pared by gastrointestinal proteases. Food Res Int 52, 221-
229. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodres.2013.03.020.
Chen YC and Jaczynski J. 2007. Gelation of protein recovered
from Antarctic krill (Euphausia superba) by isoelectric solu-
bilization/precipitation as affected by function additives. J
Agric Food Chem 55, 1814-1822. http://dx.doi.org/10.1021/
어류 알 Isolate Processed Water의 식품기능성 및 생리활성
705
jf0629944.
Chlapanidas T, Farago S, Lucconi G, Perteghella S, Galuzzi M,
Mantelli M and Torre ML. 2013. Sericins exhibit ROS-scav-
enging, anti-tyrosinase, anti-elastase, and in vitro immuno-
modulatory activities. Int J Biol Macromol 58, 47-56. http://
dx.doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2013.03.054.
Cho SY, Joo DS, Park SH, Kang HJ and Jeon JK. 2000. Change
of taurine content in squid meat during squid processing and
taurine content in the squid processing waste water. Korean
J Fish Aquat Sci 33, 51-54.
Chobert JM, Bertrand-Harb C and Nicolus MG. 1988. Solubil-
ity and emulsifying properties of caseins and whey proteins
modied enzymatically by trypsin. J Agric Food Chem 36,
883-892. http://dx.doi.org/10.1021/jf00083a002.
Choi JI, Kim JH and Lee JW. 2011. Physiological properties
of tuna cooking drip hydrolysate prepared with gamma ir-
radiation. Process Biochem 46, 1875-1878. http://dx.doi.
org/10.1016/j.procbio.2011.06.005.
Choi JS, Jang DB, Moon HE, Roh MK, Kim YD, Cho KK and
Choi IS. 2017. Physiological properties of Engraulis japoni-
cus muscle protein hydrolysates prepared by subcritical wa-
ter hydrolysis. J Eviron Biol 38, 283-289.
Chung IK, Kim HS, Kang KT, Choi YJ, Choi JD, Kim JS and
Heu MS. 2006. Preparation and functional properties of en-
zymatic oyster hydrolysates. J Korean Soc Food Sci Nutr
35, 919-925.
Cushman DW and Cheung HS. 1971. Spectrophotometric as-
say and properties of the angiotensin-converting enzyme of
rabbit lung. Biochem Pharm 20, 1637-1648. http://dx.doi.
org/10.1016/0006-2952(71)90292-9.
Damodaran S. 1997. Protein-stabilised foams and emulsions.
In: Food Proteins and Their Applications. Damodaran S, ed.
Marcel Dekker, New York, U.S.A., 57-110.
Dickinson E, Lorient D. Emulsions. 1994. Food macromol-
ecules and colloids. The Royal Society of Chemistry, Cam-
bridge, London, U.K., 201-274.
Dumay J, Radier S, Barnathan G, Berge JP and Jaouen P. 2008.
Recovery of valuable soluble compounds from washing
waters generated during small fatty pelagic surimi process\-
ing by membrane processes. Environ Technol 29, 451-461.
http://dx.doi.org/10.1080/09593330801983912.
Gomez-Ruiz JA, Lopez-Exposito I, Pihlanto A, Ramos M and
Recio I. 2008. Antioxidant activity of ovine casein hydro-
lysates: identication of active peptides by HPLC–MS/
MS. Eur Food Res Technol 227, 1061-1067. http://dx.doi.
org/10.1007/s00217-008-0820-3.
Heu MS, Kim HS, Jung SC, Park CH, Park HJ, Yeum DM, Park
HS, Kim CG and Kim JS. 2006. Food component character-
istics of skipjack (Katsuwonus pelamis) and yellown tuna
(Thunnus albacares) roes. J Kor Fish Soc 39, 1-8.
Himaya SWA, Ngo DH, Ryu B and Kim SK. 2012. An active
peptide puried from gastrointestinal enzyme hydrolysate of
Pacic cod skin gelatin attenuates angiotensin-1 converting
enzyme (ACE) activity and cellular oxidative stress. Food
Chem 132, 1872-1882. http://dx.doi.org/10.1016/j. food-
chem.2011.12.020.
Hultin HO and Kelleher SD. 1999. Process for isolating a pro-
tein composition from a muscle source and protein compo-
sition. Advanced Protein Technologies Inc., assignee. US
Patent 6,005,073.
Iida K, Hase K, Shimomura K, Sudo S, Kadota S and Namba
T. 1995. Potent inhibitors of tyrosinase activity and melanin
biosynthesis from Rheum ofcinale. Planta Med 61, 425-
428. http://dx.doi.org/10.1055/s-2006-958129.
Intarasirisawat R, Benjakul S and Visessanguan W. 2012. An-
tioxidative and functional properties of protein hydrolysate
from defatted skipjack (Katsuwonous pelamis) roe. Food
Chem135,3039-3048. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.
2012.06.076.
Intarasirisawat R, Benjakul S and Visessanguan W. 2011. Chem-
ical compositions of the roes from skipjack, tongol and boni-
to. Food Chem 124, 1328-1334. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodchem.2010.07.076.
Intarasirisawat R, Benjakul S, Wu J and Visessanguan W. 2013.
Isolation of antioxidative and ACE inhibitory peptides from
protein hydrolysate of skipjack (Katsuwana pelamis) roe. J
Funct Foods 5, 1854-1862. http://dx.doi.org/10.1016/j. jff.
2013.09.006.
Ji CI, Lee JH, Park DC, Gu YS, Kim IS, Lee TG and Kim SB.
2002. Angiotensin converting enzyme inhibitory activity in
peptic hydrolysates of cooking discards from anchovy fac-
tory ship. Korean J Food Sci Technol 34, 529-532.
Jung W, Mendis E, Je J, Park P, Son BW, Kim HC, Choi YK and
Kim S. 2006. Angiotensin I-converting enzyme inhibitory
peptide from yellown sole (Limanda aspera) frame protein
and its antihypertensive effect in spontaneously hyperten\-
sive rats. Food Chem 94, 26-32. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodchem.2004.09.048.
Joh Y and Hood LF. 1979. Preparation and properties of dehy-
drated clam avor from clam processing wash water. J Food
Sci 44, 1612-1614.
Kang KT, Heu MS and Kim JS. 2007. Improvement on the qual-
ity and functionality of red tanner crab cooking drip using
commercial enzymes. J Korean Soc Food Sci Nutr 36, 1022-
1030.
Kim IS, Heu MS, Lee JS, Kim PH, Cho ML, Ahn HJ, Shim
HD and Kim JS. 2001c. Quality stability of powdered soup
using powder from oyster wash water. Appl Biol Chem 44,
224-229.
Kim JS and Heu MS. 2001a. Preparation of instant powdered
soup using canned oyster processing waste water and its
characteristics. J Korean Fish Soc 34, 285-290.
Kim JS and Heu MS. 2001b. Preparation of instant powdered
soup using oyster wash water and its characteristics. Korean
이균우
윤인성
강상인
이수광
김재일
김진수
허민수
706
J Food Sci Technol 33, 534-539.
Klomklao S and Benjakul S. 2016. Utilization of tuna process-
ing byproducts: Protein hydrolysate from skipjack tuna
(Katsuwonus pelamis) viscera. J Food Process Preserv 41,
e12970. http://dx.doi.org/10.1111/jfpp.12970.
Klompong V, Benjakul S, Kantachote D and Shahidi F. 2007.
Antioxidative activity and functional properties of protein
hydrolysate of yellow stripe trevally (Selaroides leptolepis)
as inuenced by the degree of hydrolysis and enzyme type.
Food Chem 102, 1317-1327. http://dx.doi.org/10.1016/j.
foodchem.2006.07.016.
Laemmli UK. 1970. Cleavage of structural proteins during the
assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 227, 680-
685. http://dx.doi.org/10.1038/227680a0.
Lee HJ, Park SH, Yoon IS, Lee GW, Kim JS and Heu MS. 2016a.
Chemical composition of protein concentrate prepared
from yellown tuna Thunnus albacores roe by cook-dried
process. Fish Aquat Sci 19:12. http://dx.doi.org/10.1186/
s41240-016-0012-1.
Lee HJ, Lee GW, Yoon IS, Park SH, Park SY, Kim JS, Heu MS.
2016b. Preparation and characterization of protein isolate
from yellown tuna Thunnus albacares roe by isoelectric
solubilization/precipitation process. Fish Aquat Sci 19, 14:1-
10. http://dx.doi.org/10.1186/S41240-016-0014-Z.
Li GH, Le G.W, Shi YH and Shrestha S. 2004. Angiotensin I–
converting enzyme inhibitory peptides derived from food
proteins and their physiological and pharmacological ef-
fects. Nutr Res 24, 469-486. http://dx.doi.org/10.1016/j.nu\-
tres.2003.10.014.
Li X, Luo Y, Shen H and You J. 2012. Antioxidant activities
and functional properties of grass carp (Ctenopharyngodon
idellus) protein hydrolysates. J Sci Food Agric 92, 292-298.
http://dx.doi.org/10.1002/jsfa.4574.
Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL and Randall RJ. 1951.
Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol
Chem 193, 265-275.
Mahmoodani F, Ghassem M, Babji AS, Yusop SM and Khos-
rokhavar R. 2014. ACE inhibitory activity of pangasius cat-
sh (Pangasius sutchi) skin and bone gelatin hydrolysate. J
Food Sci Technol 51, 1847-1856. http://dx.doi.org/10.1007/
s13197-012-0742-8.
Mahmoud KA, Linder M, Fanni J and Parmentier M. 2008.
Characterisation of the lipid fractions obtained by proteolyt-
ic and chemical extractions from rainbow trout (Oncorhyn\-
chus mykiss) roe. Process Biochem 43, 376-383. http://
dx.doi.org/10.1016/j.procbio.2008.01.011.
Marklund S and Marklund G. 1974. Involvement of the superox-
ide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a con-
venient assay for superoxide dismutase. The FEBS Journal
47, 469-474. http://dx.doi.org/10.1111/j.1432-1033.1974.
tb03714.x.
Masaki H. 2010. Role of antioxidants in the skin: Anti-aging ef-
fects. J Dermatol Sci 58, 85-90.
Mohan M, Ramachandran D, Sankar TV and Anandan R.
2007. Inuence of pH on the solubility and conformation-
al characteristics of muscle proteins from mullet (Mugil
cephalus). Process Biochem 42, 1056-1062. http://dx.doi.
org/10.1016/j.procbio.2007.04.005.
Narsing Rao. 2014. Physico-chemical, functional and antioxi-
dant properties of roe protein concentrates from Cyprinus
carpio and Epinephelus tauvina. J Food Pharm Sci 15, 22.
http://dx.doi.org/10.14499/jfps.
Oh HS, Kang KT, Kim HS, Lee JH, Jee SJ, Ha JH, Kim JS and
Heu MS. 2007. Food component characteristics of seafood
cooking drips. J Korean Soc Food Sci Nutr 36, 595-602.
Oyaizu N, Yasumizu R, Miyama-Inaba M, Nomura S, Yoshida
H, Miyawaki S, Shibata Y, Mitsuoka S, Yasunaga K and
Morii S. 1988. (NZW x BXSB) F1 mouse. A new animal
model of idiopathic thrombocytopenic purpura. J Exp Med.
167, 2017-2022.
Park SH, Lee HJ, Yoon IS, Lee GW, Kim JS and Heu MS.
2016. Protein functionality of concentrates prepared from
yellown tuna (Thunnus albacares) roe by cook-dried
process. Food Sci Biotechnol 25, 1569-1575. http://dx.doi.
org/10.1007/s10068-016-0242-0.
Schurink M, van Berkel WJ, Wichers HJ and Boeriu CG.
2007. Novel peptides with tyrosinase inhibitory activ-
ity. Peptides 28, 485-495. http://dx.doi.org/10.1016/j.pep\-
tides.2006.11.023.
Tahergorabi R and Jaczynski J. 2012. Physicochemical changes
in surimi with salt substitute. Food Chem 132, 1281-1286. .
http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.11.104.
Undeland I, Kelleher SD and Hultin HO. 2002. Recovery of
functional proteins from herring (Clupea harengus) light
muscle by an acid or alkaline solubilization process. J Ag-
ric Food Chem 50, 7371-7379. http://dx.doi.org/10.1021/
jf0404445.
Watanabe H, Takai R, Sekigawa A and Hasegawa H. 1982. An
estimation of the amount of protein lost in the efuent from
frozen surimi manufacture. Bull Jpn Soc Sci Fish 48, 869-
871. http://dx.doi.org/10.2331/suisan.48.869.
Wiriyaphan C, Chitsomboon B and Yongsawadigul J. 2012.
Antioxidant activity of protein hydrolysates derived from
threadn bream surimi byproducts. Food Chem 132, 104-
111. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.10.040.
Yeo SG, Lee TG, Ahn CW, Kim IS, Gu YS, Park YH and Kim
SB. 1998. Angiotensin converting enzyme inhibitory activ\-
ity of skipjack/yellow tuna cooking broth. J Life Sci 8, 312-
317.
Yoon IS, Lee GW, Kang SI, Park SY, Kim JS and Heu MS.
2017. Food functionality and biological activity of pro-
cessed waters produced during the preparation of sh roe
concentrates by cook-dried process. Korean J Fish Aquat Sci
50, 506-519. https://doi.org/10.5657/KFAS.2017.0506.
... The global demand for proteins is increasing, and more food proteins are needed from the source of conventional proteins as well as the new source of protein. If we accept that all proteins will have nutritional value, the value in the food industry for both conventional and new protein sources is required to have enough food functional properties to allow the protein to be accepted as a food ingredient (Azadian, Nasab, & Abedi, 2012;Horax, Hettiarachchy, Kannan, & Chen, 2011;Lee et al., 2017). Among fish by-products, fish roes are highly nutritious material rich in essential fatty acids, minerals, and amino acids (Heu et al., 2006;Park et al., 2016). ...
... dispersion was 82.9 μg/ml and showed better scavenging activity than that (160-170 μg/ml) of enzyme hydrolysates from shrimp processing by-products (Kim, Yoon, Shim, & Lim, 2016). It also exhibited similar or slightly weaker scavenging activity than those of isolate processed water (33-97 μg/ml, Lee et al., 2017), extracts (28-45 μg/ ml), and cooking drips (55-110 μg/ml, Yoon et al., 2017) of fish roe. ...
... Current research on natural ACE inhibition peptides has extended to seafood protein sources, particularly seafood by-products. Lee et al. (2017) and Yoon et al. (2017) showed that the 50% ACE inhibitory activity concentration of processed waters recovered from fish roes ranged from 1.2 to 2.0 mg/ml, and these processed waters recovered through heat or alkali/acid treatment showed no difference according to treatment method in ACE inhibitory activity. On the other hand, the enzyme hydrolysates of skate skin gelatin (Ngo, Ryu, & Kim, 2014), yellow sole frame , skipjack roe (Intarasirisawat, Benjakul, Wu, & Visessanguan, 2013), and Pacific cod skin (Himaya, Ngo, Ryu, & Kim, 2012) showed 35%-86% ACE inhibitory activity and similar or superior to the results of this experiment. ...
Article
Full-text available
Four types of roe protein isolates (RPIs) were prepared through the alkaline solubilization and acid precipitation (ASAP) process, and their functional properties and in vitro bioactivities were evaluated. Higher buffer capacity in pH‐shift range of 8–12 was found in RPI‐1 (pH 11/4.5), required average 94.5 mM NaOH than that of other RPIs to change the pH by 1 unit. All the samples of 1% dispersion (w/v) showed the lowest buffering capacity near the initial pH. The water‐holding capacities (WHC) of RPIs and casein as controls without pH‐shift were in range of 3.7–4.0 g/g protein, and there were no significant differences (p > 0.05). At pH 2 and 8–12 with pH‐shift, WHC and protein solubility of RPIs were significantly improved compared to those of controls. Foaming capacities of RPI‐1 and RPI‐3 were 141.9% and 128.1%, respectively, but those of RPI‐2 and RPI‐4 were not detected. The oil‐in‐water emulsifying activity index of RPI‐1 and RPI‐3 was 10.0 and 8.3 m²/g protein, which was not statistically different from casein (7.0 m²/g), but lower than that of hemoglobin (19.1 m²/g). Overall, RPIs, casein, and hemoglobin exhibited lower food functionality at pH 4–6 near isoelectric points. Through the pH‐shift treatment, the food functionalities of RPIs were improved over the controls, especially in the pH 2 and pH 8–12 ranges. RPI also showed in vitro antioxidant and antihypertensive activities. Therefore, it has been confirmed that RPI extracted from yellowfin tuna roe has high utility as a protein‐ or food‐functional‐enhancing material or protein substitute resource for noodles, confectionery, baking, and surimi‐based products.
... 10 (Kang et al., 2007;Lee et al., 2017;Yoon et al., 2017). ...
... legumes (Horax et al., 2004), oilseeds (Horax et al., 2011), cereals (Agboola et al., 2005;Paraman et al., 2007) ( Azadian et al., 2012) . (Heu et al., 2006;Kang et al., 2015;Lee et al., 2016bLee et al., , 2017Yoon et al., 2017). ...
Article
Four roe protein isolates (RPIs) from olive flounder Paralichthys olivaceus roes (OFR) were recovered by isoelectric solubilization (pH 11 and 12) and precipitation (pH 4.5 and 5.5) and investigated for their food characteristics. RPIs contained 4.5–9.6% moisture, 64.1-69.5% protein, 16.1-19.8% lipid, and 1.0-3.9% ash. The protein yields of RPIs ranged from 50.1 to 56.8%, which was significantly different depending on the recovery conditions. A difference was observed in the SDS-PAGE protein band (25–100 kDa) between the alkaline solubilization at pH 11 (RPI-1 and 2) and pH 12 (RPI-3 and 4). The major amino acids of RPIs were Leu, Lys, Asp, Glu and Ala and major mineral components were sulfur, sodium, phosphorus, and magnesium, which were significantly different from OFR (P<0.05). Additionally, the lead and cadmium content was below the chemical hazard standard of the Korean food standards code. The Hunter color and whiteness of RPIs also showed significant differences according to the treatment conditions of the ISP process (P<0.05). This suggests that protein isolates recovered from olive flounder roes have high potential as nutritional supplements.
... Vitellogenin and vitellogenin derivatives derived from tuna roe have been reported as considerable functional proteins (Yoon et al., 2018). Isolated proteins from there different fish roes, including halibut, skipjack tuna, and yellowfin tuna treated by ISP processing have been demonstrated to have good emulsifying activity (Lee et al., 2017). Moreover, the comparison of functional properties of protein isolates from catfish (Batrachocephalus mino), Indian mackerel (Rastrelliger kanagurta), ponyfish (Aurigequula fasciata), and sardine (Sardinella brachysoma) and protein isolates from salmon, cod, and herring by-products have also been reported by Kumarakuru, Reddy, and Haripriya (2018) and Abdollahi and Undeland (2019), respectively. ...
... Both sea urchin and fish are aquatic animals, and sea urchin gonads as well as fish roes have similar biological function. Lee et al. (2017) have studied foaming properties of protein isolates from bastard halibut, skipjack tuna, and yellowfin tuna roe, which exhibited similar FC values but lower FS values in comparison to those of protein isolates from sea urchin. Moreover, the protein isolates from sea urchins also had higher FC and FS than those of Channa striatus and Lates calcarifer roe protein concentrates (Galla, Karakala, Akula, & Pamidighantam, 2012). ...
Article
Full-text available
Sea urchin Mesocentrotus nudus, Glyptocidaris crenularis, and Strongylocentrotus intermedius gonad protein isolates (mnGPIs, gcGPIs, and siGPIs) were extracted by isoelectric solubilization/precipitation (ISP) from the defatted gonads, and their functional properties were compared. Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis results showed the similar protein pattern between each protein isolate and defatted gonad, indicating the high efficiency of ISP processing for protein recovery. Amino acid profileconfirmed that the mnGPIs and siGPIs could be potential sources of essential amino acid in nature. As regard to functional properties, mnGPIs showed higher water‐ and oil‐ holding capacities followed bysiGPIs and gcGPIs and all protein isolates presented great foaming property. As for emulsifying activity index (EAI), mnGPIs, gcGPIs, and siGPIs showed the minimum solubility and EAI at pH 5, 3, and 4, respectively, and behaved a pH‐dependent manner. The gcGPIs revealed the highest EAI from pH 6 to 8 among the samples. In addition, circular dichroism showed increased content of β‐sheet at the expense of α‐helix and β‐turn, suggesting the structure denaturation of the protein isolates. Indeed, no statistical difference was observed between secondary structure of mnGPIs and siGPIs. Moreover, ISP processing increased free sulfhydryl content of sea urchin protein isolates, but no difference was observed among the samples. Furthermore, siGPIs revealed the highest amount of total sulfhydryl and disulfide bonds, whereas both defatted gonads and protein isolates from G. crenularis presented the maximum surface hydrophobicity. These results suggest that gonad protein isolates from three species of sea urchin possess various functionalities and therefore can be potentially applied in food system. Practical Application Sea urchin M. nudus, G. crenularis, and S. intermedius gonads are edible, whereas the functional properties of protein isolates from sea urchin gonad remain unknown. In this case, the extraction and comparison of three species of sea urchin gonad protein isolates will not only confirm functional properties but also screen food ingredients with suitable functions. In this study, functionalities of protein isolates derived from M. nudus, G. crenularis, and S. intermedius gonads would provide potential application in bakery food and meat products or as emulsifier candidates in food system.
... Lipid (13.8 ± 2.5-15.6 ± 1.0%) and ash content (1.8 ± 0.6-3.6 ± 0.1%) in the RPIs were lower than those in FDSTR (p < .05). This reduction in lipid and mineral content occurred because of mineral and fat migration into the processed water during ISP (Lee et al., 2017;. The protein content of RPI-2 and RPI-4 precipitated at pH 5.5 after alkaline solubilization was significantly higher than that of RPI-1 and RPI-3 precipitated at pH 4.5 (p < .05). ...
... Acid precipitation at pH 4.5 during ISP was found to be effective for removing minerals (potassium, sodium, sulfur, and phosphorus) except for iron. Therefore, most minerals in FDSTR migrated into the processed water during ISP (Lee et al., 2017;. ...
Article
Full-text available
Four roe protein isolates (RPIs) from skipjack tuna were prepared using isoelectric solubilization (pH 11 and 12) and precipitation (pH 4.5 and 5.5) (ISP) at different pH points to evaluate their physicochemical and functional properties and in vitro bioactivities. Moisture (<6.3%) and protein (71%–77%) content were maintained. Sulfur, sodium, phosphorus, and potassium were the major elements, and glutamic acid and leucine were the prevalent amino acids (12.2–12.8 and 9.6–9.8 g/100 g protein, respectively) in RPIs. RPI-1 showed the highest buffering capacity at pH 7–12. RPIs and casein showed similar water-holding capacities. At pH 12, RPI-1(pH 11/4.5) showed the highest solubility, followed by RPI-3(pH 12/4.5), RPI-2(pH 11/5.5), and RPI-4(pH 12/5.5) (p < .05). Oil-in-water emulsifying activity indices of RPI-1 and RPI-3 significantly differed. At pH 2 and 7–12, pH-shift treatment improved the food functionality of RPIs, which was superior to positive controls (casein and hemoglobin). RPI-1 showed ABTS+ radical scavenging (102.7 μg/ml) and angiotensin-converting enzyme inhibitory activities (44.0%).
... , (130-180 μg/mL; Yoon et al., 2020), (82 μg/ mL; Yoon et al., 2018d) (103 μg/ mL; Cha et al., 2020), (160-170 μg/mL; Kim et al., 2016) , (33-97 μg/ml, Lee et al., 2017), (28-45 μg/mL) (55-110 μg/ml, Yoon et al., 2017) . , peptide , peptide , , (Wu et al., 2003). ...
Article
Full-text available
Boil-dried concentrate (BDC) and steam-dried concentrate (SDC) were prepared from olive flounder Paralichthys olivaceus roe using the cook-dried process, and their food functionality and in vitro bioactivity were examined. The buffer capacity of BDC and SDC was found to be stronger in the alkaline region than in the acidic region, and the buffer capacity of SDC was superior to that of BDC. The water holding capacities of these concentrates were 7.6 and 7.4 g/g protein, respectively, both of which were significantly lower than that of freeze-dried concentrate (FDC). The solubility of BDC (13.4%) and SDC (12.7%), foaming capacity of BDC (107.7%) and SDC (110.6%), and oil-in-water emulsifying activity index of BDC (7.7 m2/g) and SDC (9.7 m2/g) were all significantly lower than the corresponding values for FDC (P<0.05). The lower food functionality of BDC and SDC compared with FDC can be attributed to the high-temperature denaturation of proteins during the cook-dried process. The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid radical scavenging activities (IC50) of SDC (2.5 mg protein/mL) was 60.4 μg/mL, and the angiotensin I converting enzyme inhibitory activity was 80.9%. Olive flounder roe concentrates have good antioxidant and antihypertensive activities, and can be used as materials or ingredients in the processing of seafood and other foods to enhance protein contents and food functionality.
... En cambio, las proteínas recuperadas al vapor mostraron actividad antihipertensiva medida por la capacidad inhibidora de la enzima convertidora de angiotensina I (ECA), siendo mayor dicha actividad en el lenguado japonés con un IC50 de 1.04 mg/mL. Usando estos mismos efluentes, pero sometidos a un proceso de precipitación y solubilización isoeléctrica,Lee et al., (2017) obtuvieron la mejor actividad inhibidora de ECA en bonito (IC50 = 1.52 mg/ml) y un mayor poder reductor y actividad de tipo superóxido dismutasa para lenguado japonés. Por su parte, Mahdabi y Shekarabi (2018) evaluaron las características funcionales y propiedades antioxidantes de hidrolizados proteicos de harina y agua de cola de anchoveta (Clupeonella sp.). ...
Chapter
La industria procesadora de productos pesqueros, derivado de sus actividades productivas, genera una importante cantidad de residuos líquidos, los cuales son comúnmente conocidos como efluentes pesqueros. Muchos de estos efluentes, son descargados al medio ambiente sin recibir algún tratamiento, generando un impacto negativo en los cuerpos de agua y zonas costeras donde son vertidos. Por otro lado, estudios han determinado que estos efluentes poseen concentraciones importantes de materia sólida, principalmente proteínas. Dicha proteína es de alta calidad considerando su perfil de aminoácidos, por lo cual es de interés emplear tecnologías para poder concentrarlas y recuperarlas. Una vez recuperada la fracción proteica de los efluentes pesqueros, a partir de esta se pueden obtener productos con alto valor agregado (p.ej. hidrolizados proteicos y péptidos bioactivos) aplicando tecnología enzimática. Las aplicaciones de estos nuevos productos en la industria alimentaria (humana o animal), pueden ser amplias y de importante valor económico. En esta revisión, se discutirá lo relacionado a alternativas de aprovechamiento de los efluentes generados en la industria pesquera, enfocándose en la recuperación y la utilización de fracciones proteicas. Se incluyen algunas técnicas empleadas para su obtención, mencionando sus ventajas y requerimientos; así como las propiedades tecno-funcionales y biológicas de las proteínas o sus hidrolizados proteicos obtenidos a partir de los efluentes pesqueros, y finalmente, se discutirá los usos y aplicaciones de efluentes pesqueros y sus hidrolizados como reemplazo de harina de pescado para la formulación de alimentos acuícolas, lo cual acarrea ventajas sobre el desempeño productivo y/o sobre distintos indicadores de la salud de los organismos.
... FRCs (0.082 mg/mL; Yoon et al., 2108a) (0.103 mg/mL; Cha et al., 2020), (0.16-0.17 mg/mL; Kim et al., 2016), (0.033-0.16 mg/mL; Lee et al., 2017), (0.028-0.045 mg/mL) (0.055-0.11 mg/mL; Yoon et al., 2017) . ...
Article
The purpose of this study was to evaluate the food functional properties and in vitro bioactivity of vacuum freezedried fish roe concentrates (FRCs) prepared from Alaska pollock Theragra chalcogramma (AP), bastard halibut Paralichthys olivaceus (BH) and skipjack tuna Katsuwonus pelamis (ST). All three species showed better buffering capacity on the alkaline side (pH 10-12) than on the acidic side. The water-holding capacities of the FRCs were 3.5, 8.5 and 4.2 g/g protein for AP, BH and ST, respectively, and were significantly higher than that of commercial egg white. The protein solubilities of the FRCs were 42.5% (AP), 50.0% (BH) and 13.9% (ST). The foaming capacities of the FRCs were not significantly different among the species (128.0% for AP, 128.3% for BH, and 143.3% for ST; P>0.05), and their foam stability was maintained at 53.0-74.2% for 60 minutes. The oil-in-water emulsifying activity indexes of AP and BH (19.5 and 20.2 m2/g protein, respectively) were significantly superior to that of ST (P<0.05). The 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl and 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothia-zoline-6-sulfonic acid radical-scavenging activities (IC50, mg/mL) of the FRCs were in the ranges of 1.05-3.26 and 0.13-0.18 mg/mL, respectively, and the angiotensin I converting enzyme inhibitory activity was in the range of 0.97-1.89 mg/mL.
Article
Full-text available
Roe protein hydrolyzates were prepared from protein isolate of olive flounder Paralichthys olivaceus roe using various proteases, and their bioactivity and functional properties were investigated. Pantidase NP-2 (PN, 14.2%) showed the highest degree of hydrolysis, followed by flourzyme (FL, 6.7%) and aroase AP-10 (AA, 6.5%). Free and released amino acid contents were significantly higher in PN (2,931.2 mg/100 g) and FL (2,725.6 mg/100 g) than in the other hydrolyzates (437.3–812.8 mg/100 g). The foaming activities (%) of papain (PA), trypsin (TR), and bromelain (BR) hydrolyzates were 193.4%, 176.7%, and 144.2%, respectively. The emulsifying activity indices of PA, BR, chymotrypsin, and TR (9.5–30.9 m2/g-protein) were superior to those of other the hydrolyzates (2.0–8.0 m2/g-protein, (P<0.05). The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzo- thiazoline-6-sulfonic acid (ABTS+) radical scavenging activities of protamex (PR, 108 µg/mL) and AA (115.5 µg/mL) were more potent (P<0.05). Angiotensin I converting enzyme inhibitory activities of all enzyme hydrolyzates (52.0–83.3%) were more robust compared with that of the control. Among the enzyme hydrolyzates, AA, FL, and PR showed relatively good tyrosinase inhibitory activities compared to that of the control (29.3%). Bioactivity and food functional properties showed that TR, BR, AA, and FL were superior.
Article
Full-text available
In the present study, protein hydrolysates were prepared from olive flounder Paralichthys olivaceus roe concentrate using different commercial proteases, and their functional properties and bioactivities were examined. Protamex (PR; 21.6%) showed the highest degree of hydrolysis, followed by alcalase (AL; 21.1%) and aroase AP-10 (AA; 20.2%). With regard to foaming activity, trypsin, chymotrypsin (CH), and bromelain (BR) had values ranging 181–188%, followed by neutrase (152%) and AA (141%). CH (36%) and BR (70%) maintained foam stability for up to 15 min. The oil-in-water emulsifying activity index of CH (10.6 m2/g) was the highest among all the hydrolysates. Notably, the 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzo-thiazoline-6-sulfonic acid (ABTS+) radical scavenging activities (IC50) were significantly higher in pantidase NP-2 (68.1 μg/mL) and flavourzyme (FL, 69.8 μg/mL) than in other hydrolysates. The tyrosinase inhibitory activities of FL, PR, and AA were inhibited by 12.5–19.8%. Aangiotensin I converting enzyme inhibitory activity of the control was 80.9%, and that of the hydrolysates of CH, AA, PR, and AL, which exhibited higher inhibitory activity, ranged 87.6–90.7%. CH, BR, and AA AP-10 hydrolysates exhibited superior bioactivity and functional properties. Therefore, these hydrolysates can be used as food ingredients in novel types of functional food-enhancing seafood and food processing industries.
Article
Full-text available
We investigated the functional properties and in vitro bioactivity of protein isolates (RPIs) recovered from olive floun�der Paralichthys olivaceus roes by isoelectric solubilization/precipitation process, according to pH-shift treatments. The buffer capacity of RPIs was shown to be stronger in alkaline pH than in acidic pH. Water holding capacity of RPIs was in range of 4.5–5.2 g/g protein with no significant differences (P>0.05). The foaming capacity and emulsifying activ�ity index of RPIs did not show any significant differences between RPI-1 (pH 11/4.5) and 3 (pH 12/4.5), however they were superior to RPI-2 (pH 11/5.5) and 4 (pH 12/5.5). The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzo-thiazoline-6-sulfonic acid radical scavenging activity of RPI-3 (2.5 mg protein/mL) was 102.4 μg/mL, and the angiotensin I converting enzyme inhibitory activity was 30.8%. Among the RPIs, RPI-3 was relatively superior in protein functional properties such as buffer capacity, foaming capacity, emulsification, and anti-oxidative activity. Therefore, we suggest that RPI prepared from olive flounder roes could serve as a potential food resource.
Article
Full-text available
This study evaluated the protein recovery and functional properties and biological activity of boiled and steamed process water (BPW and SPW, respectively) generated from the preparation of concentrated roe of bastard halibut (BH; Paralichthys olivaceus), skipjack tuna (ST; Katsuwonus pelamis), and yellowfin tuna (YT; Thunnus albacares) using the cook-dry process. The protein loss from the water extracts (EXT) of 100 g of roe protein was 15.05-19.71% and was significantly (P<0.05) higher than that of BPW (5.47-10.34%) and SPW (3.88-8.18%). The foam capacity of BPW (166-203%) and SPW (15-194%) was better than that of EXT. The emulsifying activity index of the original samples was lower than those (15.40-107.86 m2/g) of diluted protein samples. The 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity and the reducing power of BPW and SPW were stronger than those of EXT. The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS+) radical scavenging activity of EXT (0.028-0.045mg/mL) was significantly higher those of BPW and SPW. The angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitory activity of SPW was the highest for BH (1.04 mg/mL), followed by YT and ST. The predominant amino acids in SPW were Glu, Ala, Leu, and His. These results demonstrate that processing water containing diluted organic components, including protein, can be consumed directly by humans as a functional reinforcing material after appropriate concentration processes.
Article
Full-text available
Three kinds of roe protein concentrates (RPCs: boil-dried concentrate, BDC; steam-dried concentrate, SDC; freeze-dried concentrate, FDC) were prepared from yellowfin tuna to produce value added products for food applications. The buffer capacities of the RPCs were higher under alkaline than under acidic conditions. The water holding capacities of the RPCs were in range 4.5–4.7 g/g protein at pH 6.0. The protein solubility of the FDC (14.2%) was higher than those of the BDC (5.4%) and SDC (5.5%) at pH 6.0. The foaming capacity of the FDC (156.8%) was higher than those of the BDC (109.7%) and SDC (109.4%); the FDC foam was stable for 60 min. The oil-in-water emulsifying activity index of the FDC (12.2m2/g protein) exceeded those of the BDC and SDC (2.2m2/g protein). Protein concentrates from yellowfin tuna roe may be useful as a potential protein source and as a high-value food ingredient.
Article
Full-text available
Isoelectric solubilization/precipitation (ISP) processing allows selective, pH-induced water solubility of proteinswith concurrent separation of lipids and removal of materials not intended for human consumption such asbone, scales, skin, etc. Recovered proteins retain functional properties and nutritional value. Four roe proteinisolates (RPIs) from yellowfin tuna roe were prepared under different solubilization and precipitation condition(pH 11/4.5, pH 11/5.5, pH 12/4.5 and pH 12/5.5). RPIs contained 2.3–5.0 % moisture, 79.1–87.8 % protein, 5.6–7.4%lipidand3.0–3.8 % ash. Protein content of RPI-1 and RPI-2 precipitated at pH 4.5 and 5.5 after alkalinesolubilization at pH 11, was higher than those of RPI-3 and RPI-4 after alkaline solubilization at pH 12 (P< 0.05).Lipid content (5.6–7.4 %) of RPIs was lower than that of freeze-dried concentrate (10.6 %). And leucine and lysineof RPIs were the most abundant amino acids (8.8–9.4 and 8.5–8.9 g/100 g protein, respectively). S, Na, P, K asminerals were the major elements in RPIs. SDS-PAGE of RPIs showed bands at 100, 45, 25 and 15 K. Moisture andprotein contents of process water as a 2’nd byproduct were 98.9–99.0 and 1.3–1.8 %, respectively. Therefore,yellowfin tuna roe isolate could be a promising source of valuable nutrients for human food and animal feeds.
Article
Full-text available
Roe is the term used to describe fish eggs (oocytes) gathered in skeins and is one of the most valuable food products from fishery sources. Thus, means of processing are required to convert the underutilized yellowfin tuna roes (YTR) into more marketable and acceptable forms as protein concentrate. Roe protein concentrates (RPCs) were prepared by cooking condition (boil-dried concentrate, BDC and steam-dried concentrate, SDC, respectively) and un-cooking condition (freeze-dried concentrate, FDC) from yellowfin tuna roe. The yield of RPCs was in the range from 22.2 to 25.3 g/100 g of roe. RPCs contained protein (72.3–77.3 %), moisture (4.3–5.6 %), lipid (10.6–11.3 %) and ash (4.3–5.7 %) as the major constituents. The prominent amino acids of RPCs were aspartic acid, 8.7–9.2, glutamic acid, 13.1–13.2, and leucine, 8.5–8.6 g/100 g of protein. Major differences were not observed in each of the amino acid. K, S, Na, and P as minerals were the major elements in RPCs. No difference noted in sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis protein band (15–100 K) possibly representing partial hydrolysis of myosin. Therefore, RPCs from YTR could be use potential protein ingredient for human food and animal feeds.
Article
The concentrations of protein in the effluents from Alaska pollack frozen surirai manufacturing factories and their flow rates were measured to estimate the amount of protein resources lost in the effluent. Samples for protein concentration measurement were taken at three sites through the flow line of the effluent; the No. 1 and the No. 2 sites were the first and the second stage of the washing-out process and the No. 3 site was the pit for effluent treatment. By use of the data at the No. 3 site, the total amount of protein lost in the effluent was estimated to be as much as 30–60 percent of that of the frozen surimi products. Protein recovery of the effluent at the No. 1 site and that of No. 2 site would be worthwhile, since these effluents are rich in protein. It was found that their total protein concentrations were in the range of 2–8 g/l, about 80 percent of which was water soluble protein. © 1982, The Japanese Society of Fisheries Science. All rights reserved.
Article
Aim: To evaluate the beneficial biological activities of Engraulis japonicus muscle protein, the antioxidant and tyrosinase inhibitory activities of E. japonicus muscle protein hydrolysates prepared by subcritical water hydrolysis were investigated. Methodology: To evaluate the bioactivity of E japonicus subcritical hydrolysates, the applied temperature (pressure) was 140°C (2.6 bar); the reaction times were 0,5,10,15 and 20 min. Results: After 10 min of subcritical hydrolysis of particles obtained using 80-200 mesh, 46.39% of the E.japonicus muscle protein was hydrolyzed at 140°C. According to the response surface methodology results, particles generated with 80-200 mesh £ japonicus powder exhibited an increased yield of hydrolysates. The highest DPPH-radical-scavenging activity (34.91%) occurred in 60-80-mesh sized protein hydrolysates treated at 140°C for 15 min, and the highest tyrosinase inhibitory activity (99.24%) was identified in 80-200-mesh sized protein hydrolysates treated at 140°C for 5 min. Changes in the molecular weight distribution of E. japonicus muscle proteins after subcritical water hydrolysis were assessed by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. Interpretation: Subcritical water hydrolysis is a suitable technique for generating E. japonicus muscle protein hydrolysates with useful biological activities, within a short (5-15 min) time frame.
Article
Alcalase showed optimum activity against skipjack tuna (Katsuwonus pelamis) viscera at pH 10 and 65C. Enzyme concentration, reaction time and fish viscera/buffer ratio affected the degree of hydrolysis (DH) (P < 0.05). Hydrolysis with an enzyme level of 3% (w/w) for 20 min with fish viscera/buffer ratio of 1:2 (w/v) was found to be the optimum condition. Protein, lipid and ash content of freeze‐dried hydrolysate were 81.04, 6.78 and 12.01% dry weight basis, respectively. It was brownish yellow in color (L* = 62.46, a* = 1.44 and b* = 23.05). The hydrolysate contained a high amount of essential amino acids (43.13%) and had glutamic acid, methionine and aspartic acid as the dominant amino acids. Therefore, protein hydrolysate derived from skipjack tuna viscera could potentially serve as a good source of peptides and amino acids and the production of tuna waste protein hydrolysate has both ecological and economical advantage for the tuna industry. Practical Applications Efficient utilization of fish byproducts, especially viscera, is important for the economic viability of the aquatic food industry. Enzymatic hydrolysis is one of the most effective technologies for recovering value‐added proteins from fish viscera without losing their nutritional value. In this study, protein hydrolysate prepared from skipjack tuna viscera using Alcalase showed high protein content. Hence, it can be used in a wide range of food additives, diet nutrients and pharmaceutical agents.