Available via license: CC BY-SA 4.0
Content may be subject to copyright.
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
143
ОБЗОРЫ
УДК 618.39-07
DOI: 10.17816/JOWD663143-156
РОЛЬ ЕСТЕСТВЕННЫХ КИЛЛЕРОВ (NK-КЛЕТОК) В РЕПРОДУКТИВНЫХ ПОТЕРЯХ
© А.О. Агнаева
1, О.Н. Беспалова
1, Д.И. Соколов
1, 2, 3, С.А. Сельков
1, И.Ю. Коган
1
1 ФГБНУ «НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта», Санкт-Петербург;
2 ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет
им.академика И.П. Павлова» Минздрава России, Санкт-Петербург;
3 ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург
Для цитирования: Журнал акушерства и женских болезней. – 2017. – Т. 66. – № 3. – С. 143–156. doi: 10.17816/JOWD663143-156
Поступила в редакцию: 21.03.2017 Принята к печати: 15.05.2017
■ Достаточно частым явлением в современном мире являются репродуктивные потери. К репродуктивным не-
удачам относят: бесплодие, в том числе неясного генеза, многократные неудачи ЭКО, многократные имплан-
тационные потери— как однократное самопроизвольное прерывание беременности, так и привычная потеря
плода— в естественном цикле и после применения вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). В на-
стоящее время единого определения и классификации репродуктивных потерь нет. Этиология репродуктивных
потерь как в естественном цикле, так и после ВРТ чрезвычайно разнообразна. Удачное развитие беременности на
ранних сроках определяют генетические и иммунологические факторы. Среди репродуктивных неудач неясной
этиологии иммунологические причины составляют 50–80 %. За последние 20 лет доказано участие большого чис-
ла различных иммунологических факторов в процессах оплодотворения, имплантации и плацентации. Приэтом
доказательная база о роли каждого из них в патогенезе репродуктивных неудач только формируется. В насто-
ящее время иммунологические взаимоотношения между матерью и плодом рассматривают как двусторонний
коммуникационный процесс: с одной стороны, презентация фетальных антигенов, а с другой— распознавание
и реагирование на эти антигены материнской иммунной системы. Имплантация эмбриона сопровождается уси-
лением продукции провоспалительных цитокинов за счет привлечения лейкоцитов и резким изменением кле-
точного состава в децидуализированном эндометрии, в котором основную популяцию составляют NK-клетки,
в результате чего им отводят главную роль в нормальном развитии беременности на ранних сроках. NK-клетки
относят к системе врожденного иммунитета. Им не требуется предварительной сенсибилизации для осущест-
вления своих защитных функций. Их мишенями становятся все клетки, лишенные молекул главного комплекса
гистосовместимости I класса на поверхности мембраны. Свойства NK-клеток в матке и периферической крови
значительно отличаются: они имеют различную цитотоксичность, секреторный цитокиновый профиль, экс-
прессируют разные рецепторы, обладают разным иммунорегуляторным потенциалом. Для прогнозирования
наступ ления и пролонгирования беременности используют NK периферической крови (активность и количе-
ство). Оценка эндометриальных NK чаще проводится для диагностики хронического эндометрита. На настоя-
щий момент определение NK-клеток в периферической крови рассматривают как полезный диагностический
тест для формулирования показаний к назначению иммуноглобулинов и оценки эффективности данной терапии
упациенток с репродуктивными потерями.
■ Ключевые слова: привычная потеря беременности; многократные неудачи; NK-клетки; иммунология репро-
дукции; внутривенное введение иммуноглобулинов (ВВИГ).
ROLE OF NATURAL KILLER CELLS IN REPRODUCTIVE FAILURE
© A.O. Agnaeva 1, O.N. Bespalova 1 , D.I. Sokolov
1, 2, 3, S.A. Selkov
1, I.U. Kogan 1
1 FSBSI “The Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology named after D.O. Ott”,
Saint Petersburg, Russia;
2 I.P. Pavlov First St Petersburg State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian
Federation, Saint Petersburg, Russia;
3 FSBSI “Institute of Experimental Medicine”, Saint Petersburg, Russia
For citation: Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2017;66(3):143-156. doi: 10.17816/JOWD663143-156
Received: 21.03.2017 Accepted: 15.05.2017
ISSN 1684–0461
144 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
Репродуктивные потери являются акту-
альной проблемой современного акушерства
игинекологии. Кним относят бесплодие, не-
эффективные протоколы ЭКО, самопроиз-
вольное прерывание беременности, втом чис-
ле привычное невынашивание. Установлено,
что только около 30 % концептов (продуктов
зачатия) при естественном планировании бе-
ременности у человека завершается родами,
около 50 % — прерывается еще до наступле-
ния очередной менструации (так называе-
мые доклинические потери беременности),
а 15–20 %— приходится напотери клиниче-
ской беременности [1, 2].
В настоящее время несформулировано уни-
фицированное определение понятия «много-
кратные или повторные неудачи ЭКО». Одни
авторы в его основу закладывают количество
неэффективных циклов ВРТ (2 иболее; 3 ибо-
лее) [3–5], другие— дополняют информацией
околичестве и качестве перенесенных эмбри-
онов [6]. Например, 8 эмбрионов на стадии
дробления или 4 — на стадии бластоцисты
в2–6 циклах ЭКО [7]. Помнению профессора
L. Polanski (2014), повторные неудачи ВРТ —
это отсутствие имплантации, определяемой
поуровню ХГЧ всыворотке крови на14-й день
после переноса эмбрионов хорошего качества,
вдвух иболее последовательных циклах ЭКО.
При этом общее количество перенесенных эм-
брионов должно быть не менее четырех (для
эмбрионов настадии дробления) или неменее
двух (для бластоцист) [8].
Имеются также некоторые несоответствия
и в определении привычного невынашива-
ния беременности (ПНБ). Так, Королевский
колледж акушеров и гинекологов (RCOG)
иЕвропейское общество репродукции человека
иэмбриологии (ESHRE) определяют ПНБ как
последовательную потерю трех иболее беремен-
ностей до 24 недель, Американское общество
репродуктивной медицины (ASRM)— 2потери
до20 недель. В Российской Федерации тради-
ционно кПНБ относят 2 иболее прерывания
беременности, а обследование пар с данной
проблемой многие рекомендуют начинать уже
с1-го выкидыша [9–11]. Кроме этого, внекото-
рых странах биохимическая беременность (бе-
ременность, зафиксированная по повышению
уровня ХГЧ) невключается впонятие «потери
беременности» [12].
Максимальное число прерываний бере-
менности происходит вI триместре, причем
около 70 % — до 8 недель. Досих пор при-
нято считать, что спорадическое прерывание
беременности наранних сроках— это прояв-
ления естественного отбора: у60 %абортусов
диагностируется аномальный кариотип. При
этом при повторных потерях частота генети-
чески неполноценных эмбрионов значительно
ниже[13]. Помнению многих специалистов,
в80 % случаев причиной повторных прерыва-
ний беременности являются иммунологиче-
ские [14,15]. Среди иммунологических при-
чин принято выделять ауто- иаллоиммунные,
что определяет направленность иммунного
■ Reproductive losses are quite frequent in the modern world. They include: infertility, infertility of unknown etiology,
multiple losses when IVF, recurrent implantation failure, miscarriage, recurrent miscarriage, both in the natural cycle
and after ART management. It is important to note that the classification of some of these categories are not established
yet. The etiology of reproductive losses is extremely diverse. Successful development of pregnancy at early terms is de-
terminedby genetic and immunological factors. Among the reproductive failures of unclear etiology, immunological
causes are 50-80%. Over the past 20 years there are already known many different immunological factors that play role
in the processes of fertilization. In this case, the evidence base on the role of each of them in the pathogenesis of repro-
ductivefailures is only being formed. Currently, the immunological relationship between mother and fetus is considered
asatwo-way communication process: the presentation of fetal antigens on the one hand, and on the other– the recogni-
tion and response to these antigens of the maternal immune system. Implantation of the embryo is accompanied by an
increase in the production of proinflammatory cytokines followed by a sharp change in the cellular composition in the
decidualizing endometrium, and the main population is NK cells. That is why this type of cells have a significant role in
the normal development of pregnancy. The properties of NK cells in the uterus and peripheral blood are significantly
different. To predict the onset and prolongation of pregnancy, peripheral blood NK (activity and quantity) is used. Evalua-
tion of endometrial NK is often performed for the diagnosis of chronic endometritis. Currently, the definition of NK cells
in peripheral blood in many clinics is proposed as a useful diagnostic test to address the issue of further appointment of
immunoglobulins and evaluating the effectiveness of this therapy in patients with reproductive losses.
■ Keywords: recurrent pregnancy loss; recurrent implantation failure; NK-cells; reproductive immunology; IVIg.
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
145
ОБЗОРЫ
ответа либо против собственных антигенов,
либо против антигенов плода. За последние
20 лет описано значительное число различ-
ных иммунологических факторов, имеющих
большое значение для процессов оплодот-
ворения, имплантации и плацентации. При
этомдоказательная база ороли каждого им-
мунологического фактора в патогенезе ре-
продуктивных неудач только формируется
(табл.1).
В настоящее время иммунологические взаи-
моотношения между матерью иплодом рассма-
тривают как двусторонний коммуникацион-
ный процесс: содной стороны— презентация
фетальных антигенов, а с другой — распоз-
навание и реагирование на эти антигены ма-
теринской иммунной системы. Определяет
механизмы иммунной привилегированности
прежде всего система врожденного иммуните-
та материнского организма. Имплантация эм-
Биомаркеры
Связь
спривычным
невынаши-
ванием
беременности
Прогности-
ческая
значимость Что нужно сделать?
Аутоантитела
АФА +++ ++
Стандартизация методов оценки
иреференсных значений.
Прогностические исследования
упациентов без лечения
Антитела ктканям
щитовидной железы,
антинуклеарные
антитела
+++ ? Прогностические исследования
упациентов без лечения
Растворимые
иммунологические
маркеры
Цитокины
периферической крови ??
Более чувствительные
инадежные методы
Маннозосвязывающий
лектин ++ + Дополнительные исследования
Клетки иммунной
системы Количество NK
периферической крови +?
Установление референсных
значений вразличные фазы
цикла ипри беременности
Активность NK
периферической крови +?
Эндометриальные
NK-клетки ?/+ ?
Установление референсных
значений вразличные фазы
цикла.
Стандартизация метода
Децидуальные
NK-клетки ?–
Подбор правильных
контрольных образцов
(анеуплоидные выкидыши?)
Т-регуляторные
клетки
периферической крови ??
Установление референсных
значений вразличные фазы
цикла. Стандартизация метода
Генетические
биомаркеры Полиморфизм генов
цитокинов ?–
Более крупные исследования.
Этническая идиагностическая
однородность групп пациентов
Совместимость
супругов посистеме
HLA +++ ++
Исследования сиспользованием
современных методов
Четкое определение критериев
совместимости аллелей
HLA II класса ++ + Более крупные исследования.
Исследования гомогенных
в отношении анамнеза
иэтнической принадлежности
групп
HLA-C, HLA-G + ?
Таблица 1
Иммунологические маркеры репродуктивных потерь
Table 1
Immunological markers of reproductive failure
ISSN 1684–0461
146 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
бриона сопровождается усилением продукции
провоспалительных цитокинов за счет при-
влечения лейкоцитов с последующим резким
изменением клеточного состава в децидуали-
зирующемся эндометрии, вкотором основную
популяцию составляют NK-клетки, вследствие
чего им отводят главную роль в нормальном
развитии беременности наранних сроках [16].
Маточная плацентация характеризуется
прикреплением ворсин хориона кматеринской
базальной децидуальной оболочке иустановле-
нием функционального кровотока. Впроцессе
инвазии полуаллогенные клетки трофобласта
находятся втесном взаимодействии спопуля-
цией децидуальных NK-клеток, которые игра-
ют главную роль вангиогенезе имодификации
спиральных артерий, регулируют глубину ин-
вазии трофобласта [17, 18].
NK-клетки (natural killer cells) происходят
из гемопоэтической стволовой клетки: об-
разуется лимфоидная клетка-предшествен-
ник, которая дифференцируется в Т-клетки
(CD3+), В-клетки (CD19+) и натуральные кил-
леры (СD3–CD56+CD16+). Молекула CD16 для
данных клеток является одним из основных
рецепторов, передающих сигнал к активации,
иучаствует вобеспечении реакции антителоне-
зависимой клеточной цитотоксичности, атак-
же индукции секреции цитокинов. NK-клеткам
нетребуется предварительной сенсибилизации
для осуществления своих защитных функций.
Их мишенями становятся все клетки, лишен-
ные молекул главного комплекса гистосовме-
стимости I класса на поверхности мембраны.
Однако натуральные киллеры— это непросто
«киллеры» инфицированных или трансформи-
рованных клеток, помимо этого им присущи
иммунорегуляторные функции засчет продук-
ции различных цитокинов ихемокинов.
Действие NK-клеток тонко регулируется че-
рез сеть активирующих и ингибирующих ре-
цепторов на их поверхности: так называемые
killer immunoglobulin like receptor (KIR), NKG-
рецепторы (natural killer group), цитотоксиче-
ские рецепторы NKp30, NKp44, NKp46 идругие.
Дифференцировка, развитие, функциональные
и фенотипические свойства NK-клеток связа-
ны споследующим изменением репертуара ре-
цепторов, присутствующих наих мембране, что
всвою очередь влияет нанаступление иразви-
тие физиологической беременности [19].
У человека выделяют две функционально
различные подгруппы NK. Большинство кле-
ток периферической крови слабо экспресси-
руют СD56 иинтенсивно экспрессируют CD16
(CD56dim, CD16low). Для них характерно боль-
шое количество лизосомальных гранул, содер-
жащих гранзимы и перфорин. Другие попу-
ляции NK-клеток интенсивно экспрессируют
CD56 и слабо или совсем не экспрессируют
CD16 (CD56bright, CD16dim/low). Они облада-
ют регуляторными свойствами, однако под воз-
действием цитокинов свойства ифункции этих
клеток могут меняться [20]. Распространение
клеток CD56bright ворганизме неограничива-
ется кровью иэндометрием. Эта группа клеток
составляет основную массу лимфоцитов влим-
фатических узлах, миндалинах, желудке, пече-
ни, висцеральной жировой ткани. Ав легких,
почках, молочных железах, костях, селезенке,
наоборот, преобладают CD56dim.
В эндометрии зернистые лимфоциты были
описаны около 100лет назад. Но только спо-
явлением методов иммуногистохимического
анализа в 90-х гг. британскими учеными эти
клетки были отнесены к линии natural killer
cells [21, 22]. После этого был введен термин
uterine natural killer cell (uNK), тоесть маточ-
ные NK-клетки. Вотличие отпериферической
крови, в эндометрии преобладают NK-клетки
CD56bright. Вне зависимости от фазы мен-
струального цикла, uNK-клетки составляют
минимум 30 % отобщего количества эндоме-
триальных лимфоцитов, в секреторную фазу
их количество прогрессивно увеличивается,
ивслучае наступления беременности, наран-
них сроках, достигает 70 % (рис. 1).
Что касается NK-клеток периферической
крови, то, по данным литературы, значитель-
ных изменений вих количестве вфолликуляр-
ную илютеиновую фазы менструального цикла
непроисходит [23, 24]. Входе исследований, из-
учающих изменения активности перифериче-
ских NK-клеток вовремя менструального цик-
ла, были получены неоднозначныерезультаты:
либо отсутствие изменений в течение цик-
ла[24], либо снижение активности NK-клеток
влютеиновой фазе [25, 26].
При физиологическом течении беремен-
ности количество pbNK уменьшается глав-
ным образом в результате уменьшения ко-
личества CD16+ [27]. Кроме того, pbNK при
беременности демонстрируют снижение ци-
тотоксической активности [28]. В первые не-
дели беременности увеличивается экспрессия
ингибирующих рецепторов (различные KIR,
включая CD94/NKG2A), достигая максимума
ктретьему месяцу беременности, с последую-
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
147
ОБЗОРЫ
щим снижением добазальных уровней кконцу
беременности[29, 30].
Изменения числа периферических NK-кле-
ток, их фенотипа иактивности впериод бере-
менности может быть свидетельством того, что
эти процессы имеют гормональную регуляцию.
Так, вработах С.В. Ширшева идр. (2008) уста-
новлено, что инкубация клеточных культур
NK-клеток сэстриолом вконцентрации, соот-
ветствующей I триместру беременности, сни-
жает процент лимфоцитов, экспрессирующих
CD16 [31]. При этом в концентрации, харак-
терной для III триместра беременности, гормон
неоказывает достоверного влияния наиссле-
дуемый показатель. Добавление в клеточные
культуры прогестерона в концентрации, со-
ответствующей Iтриместру беременности, до-
стоверно снижает уровень клеток CD3–CD16+.
При этом доза прогестерона, соответствующая
III триместру беременности, напротив, повы-
шает количество клеток CD3–CD16+ вкульту-
ре. Показано, что прогестерон самостоятельно,
атакже опосредованно через синтез прогесте-
рон-индуцируемого блокирующего фактора
(PIBF) способен угнетать цитолитический по-
тенциал NK-клеток [31, 32].
Вопрос пополнения пула маточных NK-
клеток остается на данный момент дискута-
бельным. Предполагается три возможных ис-
точника NK-клеток эндометрия:
• трансэндотелиальная миграция NK-клеток
из периферической крови вслизистую по-
лости матки;
• пролиферация NK-клеток in situ в эндоме-
трии;
• деление идифференцировка стволовых кле-
ток непосредственно всамом эндометрии.
В силу того что свойства NK-клеток вмат-
ке ипериферической крови значительно отли-
чаются (имеют различную цитотоксичность,
секреторный цитокиновый профиль, экспрес-
сируют разные рецепторы, имеют разный им-
мунорегуляторный потенциал), оценить им-
мунные процессы взоне плодово-материнского
контакта по характеристике NK-клеток пери-
ферической крови представляется не совсем
корректным. Нона настоящий момент изуче-
ние NK-клеток является одной изактуальных
и наиболее спорных проблем в области ре-
продуктивной медицины [33, 34]. Втабл.2 и3
приведены исследования, вкоторых пытались
оценить количество и активность NK-клеток
периферической крови иэндометрия, атакже
установить, имеетсяли связь этих показателей
срепродуктивными нарушениями.
Первое исследование, вкотором были полу-
чены данные отом, что уровень pbNK-клеток
может быть прогностическим фактором на-
ступления итечения беременности, проведено
в1995 г. J. Kwak иA. Beer вСША [35]. Врабо-
ту были включены 116 женщин с привычной
потерей плода неясной этиологии, ванамнезе
у которых было 3 и более потерь на ранних
сроках (35 из них были вновь беременны),
и45женщин спервичным бесплодием имного-
кратными неудачами ЭКО. Вгруппу контроля
Рис. 1. Процесс инвазии ворсин трофобласта
Fig. 1. The process of trophoblast villus invasion
ISSN 1684–0461
148 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
Год Авторы Дизайн исследования Группы пациентов Результат
активность NK количество NK
1995 J. Kwak,
A. Beer
[54]
Оценивался
субпопуляцион ный состав
лимфоцитов, наличие АФА.
ПНБ— 3 иболее потери,
неудачи ВРТ— 3 иболее
ПНБ (116 жен.)
берем. инеберем.,
неудачи ВРТ
(45жен.), контроль
берем. инеберем.
–
Повышено (%)
уженщин сПНБ
наранних сроках,
уАФА-позитив-
ных женщин
наиболее высокий
уровень CD56+16+
1995 K. Higu-
chi et al.
[55]
ПНБ— 3 иболее потери ПНБ, контроль Повышена уженщин
сПНБ наранних
сроках
Повышено (%)
уженщин сПНБ
наранних сроках
2000 P. Em-
mer et
al. [56]
NK-клетки хранились
вжидком азоте.Затем
оценивалось их взаимо-
действие сК562 пореакции
высвобож дения Cr51
(ПНБ— 2 иболее потери
до16 нед.)
ПНБ (планирующие
беременность),
контроль
Выше вгруппе ПНБ
–
2001 E. Ntri-
valas et
al. [57]
Оценивалась экспрессия
CD94; CD69 наpbNK
изо лированно, затем
при культи вировании
склетками ED27, HT-29,
НТВ-26 (линейные
клет ки трофобласта,
коло ректального рака,
аденокарциномы молочной
железы)
ПНБ неясной
этиологии (22чел.),
St неясной этиологии
снеудачами ЭКО
(18чел.), контроль
(13)
Повышена вгруппе
ПНБ ибесплодия
посравнению
сконтролем. При
культивировании
склетками ED27
иHT-29 активность
достоверно
повышалась вовсех
группах
–
2002 S.S. Sou-
za et al.
[58]
ПНБ— 2 иболее потери ПНБ (нормаль ный
кариотип родителей),
контроль
Несколько ниже
вгруппе контроля Различий
неполучено
2003 H. Ya-
ma da et
al. [59]
Оценивали активность
NK-клеток наэтапе
планирования ипри
наступлении беременности
пореакции высвобождения
Cr51 при взаимодействии
сК562. IПНБ— 2 иболее
потери; II ПНБ— 3 иболее
потери после живорождения
I иII ПНБ (113 чел.),
у40 изних— ПНБ
неясной этиологии
У женщин сс/в
инормальным
кариотипом
достоверно выше,
чем вгруппе
живорождения
–
2006 R. Rous-
sev et al.
[60]
Определение активности
NK-клеток сК562
вприсутствии ВВИГ,
Intralid иHLA-G
ПНБ (110 чел.)
инеудачи ВРТ
(165 чел.)
Дозозависимое угнетение активности
NK. Вболее низких концентрациях
эффективнее оказались IL иHLA-G
2007 C. Rerri-
cone et
al. [61]
Оценивалось количество
NK-клеток (проточная
цитофлуориметрия)
ПНБ + АФС, ПНБ без
АФС, ПНБ неясной
этиологии; контроль
Наиболее высокие показатели NK
получены вгруппе ПНБ неясного генеза,
затем ПНБ + АФС, затем ПНБ без АФС.
Чем выше уровень NK, тем раньше
прерывалась беременность
2012 G. Sacks
et al.
[62]
Многократные неудачи
ВРТ— 3 иболее попытки
переноса свежих
либо замороженных
эмбрионов. Биохимическая
беременность
расценивалась как
выкидыш
Неудачи ВРТ
(171чел.), контроль В группе снеудачами
ВРТ достоверно
повышена. При
делении группы
взависимости
отпродолжительности
St или количества
попыток ВРТ
различий не получено
В группе
снеудачами
ВРТ достоверно
повышено
Примечание: ПНБ — привычное невынашивание беременности; АФА — антифосфо-липидные антитела;
ВРТ— вспомогательные репродуктивные технологии; ВВИГ — внутривенное введение иммуноглобулинов;
АФС — антифосфолипидный синдром
Таблица 2
Оценка NK-клеток в периферической крови при репродуктивных потерях
Table 2
Peripheral blood NK cell testing in reproductive failure
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
149
ОБЗОРЫ
вошли 22здоровые беременные всроке 4–6не-
дель гестации и17 фертильных небеременных
женщин. Каждой пациентке проводился ана-
лиз субпопуляционного состава лимфоци-
тов периферической крови (CD3, CD4, CD8,
CD19, CD56). Было установлено, что уровень
NK-кле ток выше 18 % впериферической крови
является абсолютно «плохим» прогностиче-
скимфактором течения беременности (увсех
женщин беременность прервалась), а уровень
12–18 % — относительно неблагоприятным
маркером. Аналогичные результаты были по-
лучены вдругих исследованиях [36, 37].
С этого момента интерес к NK-клеткам
иих роли врепродукции значительно возрос.
Появилось большое количество работ, вкото-
рых было изучено содержание NK-клеток как
впериферической крови, так ивэндометрии.
Использовались методы проточной цитоме-
трии (материал для исследования — кровь
и эндометрий), иммуногистохимии (эндоме-
трий). Результаты варьировали взависимости
от того, в какую фазу менструального цикла
происходил забор крови/эндометрия; крите-
риев включения в исследование (2, 3 и более
потери беременности; первичное или вторич-
ное невынашивание или бесплодие и т. д.).
Оценка количества NK-клеток осуществлялась
ивабсолютных, ивотносительных значениях
отобщего числа циркулирующих лимфоцитов
[38, 39].
В 2014 г. в Великобритании был проведен
метаанализ, включавший всебя данные 22ра-
бот, опубликованных в MEDLINE, Embase,
Cochrane Library и Web of Science в период
с1950 по2012 г. Было показано, что количество
Год Автор Дизайн исследования Группы пациентов Результаты
1996 M. Lachapelle
et al. [63] БЭ на18–25 д.ц.
Проточная цитометрия.
ПНБ— 3 иболее
последовательных с/в
до12 нед.
Группа ПНБ— 20 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС)
В группе ПНБ
NK сфенотипом
CD16brightCD56dim выше,
чем вконтроле
1999 S. Quenby
et al. [64] БЭ 19–22 д.ц.
Иммуногистохимия.
ПНБ— 3иболее потери
беременности
ПНБ— 22 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС,
исключены эндокринные
причины) иконтроль
Более высокий процент
CD16+ иCD56+
посравнению сконтролем
1999 K. Clifford
et al. [65] БЭ 20–23 д.ц.
Иммуногистохимия.
ПНБ— 3иболее потери
беременности
ПНБ— 29 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС,
исключены эндокринные
причины) иконтроль
Повышенное количество
CD56+ уженщин
спотерями до13 нед.
2002 P. Emmer
et al. [66] Соскоб изполости матки
после прервавшейся/
замершей беременности.
Иммуногистохимия.
ПНБ— 2иболее потери
до16 нед.
ПНБ— 9 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС)
иконтроль
Повышенная экспрессия
CD56+ иCD16+
2004 S. Shimada
et al. [67] БЭ всередину лютеиновой
фазы. Проточная
цитометрия. ПНБ—
2иболее потери
ПНБ— 20 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС,
тромбофилии, исключены
эндокринные причины)
иконтроль
Не получено различий
2002 T. Michimata
et al. [68] БЭ 18–21 д.ц.
Иммуногистохимия.
ПНБ— 2иболее потери
ПНБ— 17 чел.
(нормальный кариотип
родителей, без АФС,
исключены эндокринные
причины) иконтроль
Не получено различий
Примечание: ПНБ— привычное невынашивание беременности; АФС— антифосфолипидный синдром; БЭ—
биопсия эндометрия
Таблица 3
Оценка NK-клеток в эндометрии при репродуктивных потерях
Table 3
Endomethrial NK cell testing in reproductive failure
ISSN 1684–0461
150 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
NK-клеток достоверно неотличалось вгруппах
пациенток сбесплодием иПНБ ифертильных
женщин. Однако вэтомже метаанализе ужен-
щин срепродуктивными потерями количество
периферических NK-клеток в абсолютных
числах достоверно отличалось по сравнению
с контролем [40]. Вместе с тем нужно учиты-
вать, что вданный метаанализ вошли работы,
в которых осуществлялись разные методи-
ческие подходы к оценке NK-клеток (разные
фазы менструального цикла, учет стрессорных
воздействий, наличие вирусных заболеваний,
различные особенности лабораторной диа-
гностики и т. д.). Но,несмотря на отсутствие
единых стандартизированных норм и правил
определения NK-клеток в периферической
крови, в мировых иммунологических клини-
ках порепродуктологиианализ насодержание
и активность NK-клеток является обязатель-
ным диагностическим маркером для расче-
та рисков неудач беременностей, в последнее
время совместно сдругими маркерами рассма-
тривается как показание для назначения имму-
нотерапии— внутривенного введения иммуно-
глобулинов (ВВИГ).
Препараты иммуноглобулинов для вну-
тривенного введения занимают все более зна-
чимое место в практической медицине, в том
числе вакушерстве, гинекологии ирепродук-
тологии. Впервые с1935 г. в практику вошло
парентеральное применение иммуноглобули-
на человека вкачестве средства лечения кори.
Внутривенное введение иммуноглобулинов
стало возможным после того, как E.J. Cohn et
al. в1946 г. описали метод выделения иммуно-
глобулинов путем спиртового фракционирова-
ния плазмы человека [41]. Несмотря надока-
занную эффективность ВВИГ при целом ряде
иммунопатологий, их клиническое применение
в первую очередь ограничивается из-за высо-
кой стоимости, ав репродуктологии из-за от-
сутствия единых показаний, сроков, доз вводи-
мых препаратов иконтроля иммунологических
показателей [42, 43].
Основным механизмом иммуностимулиру-
ющего действия ВВИГ является нейтрализация
антигена за счет естественного титра антител,
содержащихся впрепаратах. Также ВВИГ спо-
собно сдвигать Тх1-Тх2 в сторону активации
клеточного иммунного ответа [44, 45].
Возможно, положительный эффект приме-
нение ВВИГ у пациенток с репродуктивными
потерями связан сблагоприятными отсрочен-
ными процессами, основанными на иммуно-
модулирующем действии нормальных антител
наТ- иВ-лимфоциты имакрофаги, снижении
интенсивности повреждения мембран клеток
ферментами системы комплемента, а также
на ингибировании синтеза алло- и аутоанти-
тел потипу механизма обратной связи исни-
жении количества и цитотоксической актив-
ности NK-клеток [46]. Поэтому применение
ВВИГ в комплексной терапии тяжелых форм
репродуктивных неудач иммунологической
этиологии может быть патогенетически обо-
снованным[47].
Применение ВВИГ врепродуктологии счи-
тается off-label: нет клинических рекоменда-
ций, четких показаний и правил применения
иммуноглобулинов при неудачах имплантации
иранних потерях беременности [48]. Вакушер-
стве не существует обязательных показаний
для назначения иммуноглобулинов, но допу-
стимо использование ВВИГ в двух направле-
ниях: как заместительную терапию при иммун-
ной защите от инфекционных заболеваний
бактериальной и смешанной этиологии и для
регуляции или модуляции иммунитета при
состояниях, в основе которых лежат иммуно-
логические механизмы (аллоиммунные, транс-
плацентарные). Фармакокинетика эндогенных
высокомолекулярных белков при ВВИГ значи-
тельно отличается отвведения синтетических
препаратов, их биодоступность приближается
к100 %, апродолжительность действия состав-
ляет 3–4 недели. Впроведенных исследованиях
поприменению ВВИГ обращают на себя вни-
мание различия в подходах к формированию
групп пациенток, использование различных
схем идозировки иммуноглобулинов, при этом
вбольшинстве случаев эффективность терапии
оценивают на основании исходов беременно-
сти (аименно живорождение), аконтроль им-
мунологических показателей непроводят [49].
Впервые терапия ВВИГ была назначена па-
циенткам спривычными потерями при отсут-
ствии положительных результатов после при-
менения преднизолона игепарина. Упациенток
с верифицированным диагнозом антифосфо-
липидного синдрома эффективность ВВИГ
достигала 70–80 % [50, 51]. У женщин с ПНБ
неясной этиологии результаты были неодно-
значны[52]. Так, из10 контролируемых иссле-
дований, вкоторых применялось ВВИГ, только
в четырех частота живорождения достоверно
была выше. В остальных 6 этот показатель
не отличался. Важно отметить, что в каждом
из этих исследований количество пациентов
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
151
ОБЗОРЫ
было разным (от30 до150); терапию иммуно-
глобулинами начинали как до беременности,
на этапе планирования, так и во время бере-
менности — с 6–8 недель; группы пациенток
формировались либо наосновании акушерско-
го анамнеза, либо на основании иммунологи-
ческого обследования; дозы и кратность вво-
димых иммуноглобулинов заметно отличались
(табл. 4). В5 работах терапия начиналась еще
наэтапе планирования беременности, ив4 из5
была доказана эффективность. В 3 исследова-
ниях показания кВВИГ основывались нетоль-
ко на акушерском анамнезе, но и на данных
иммунологического обследования, ивкаждом
изних эффективность была доказана. Следует
обратить внимание, что только водном изис-
следований определялся кариотип абортусов,
то есть процент потерь беременности ввиду
аномального кариотипа не учитывался вовсе,
а это те потери, на которые никакой метод
не смог бы повлиять. Можно также сказать
отом, что, поданным некоторых авторов, эф-
фективность ВВИГ зависела от вида ПНБ:
частота живорождений была выше в группе
вторичного ПНБ, чем при первичном ПНБ [52].
Чтоже касается пациенток сбесплодием неяс-
ного генеза имногократными неудачами ВРТ,
поданным метаанализа, проведенного в2013 г.
Li et al., вкоторый вошло около 8000 пациен-
тов, эффективность ВВИГ доказана утех, кому
терапия назначалась наосновании иммуноло-
гического обследования идонаступления бе-
ременности [53].
Таким образом, несмотря на интенсивные
исследования, роль NK-клеток и методы кор-
рекции их функциональной активности в ре-
продукции остаются спорными. Однако уже
сейчас можно утверждать, что NK-клетки яв-
ляются иммунологическим маркером неблаго-
получия в процессе наступления и развития
беременности. Но нужно помнить о том, что
NK — это интегральный показатель, кото-
рый зависит от многих факторов (пола, воз-
Год Авторы Сроки, схемы, дозы икратность внутривенного введения
иммуноглобулинов
1994 German RSA IVIg Study
Group [69] После наступления беременности («+» тест)— 30г, затем по20г каждые
3 недели до25–26 недель
1995 O.B. Christiansen et al.
[70] После наступления беременности— 35г в5/6 нед., 25г в7/8, 30г в28,
30, 32, 34 недели
1995 C.B. Coulamn et al. [71] До наступления беременности— 500мг/кг/месяц втечение 4 циклов.
При беременности— 500мг/кг/месяц до30–32 недель или дородов
1998 M.D. Stephenson et al. [72] До наступления беременности— 500мг/кг/месяц в фолликулярную
фазу втечение 6 циклов
1999 B. Jablonowska et al. [73] После наступления беременности— 20г каждые 3 недели
2002 O.B. Christiansen et al. [74] После наступления беременности— по0,8 г/кг до20 недель, затем
по1г/кг с20-й по26-ю неделю
2004 G. Triolo et al. [75] После наступления беременности— 0,4 г/кг/день втечение 2 дней.
Затем 1 раз вмесяц до31-й недели
2008 E.E. Winger et al. [76] До наступления беременности— 400мг/кг/месяц. Один раз
втечение1–3 менструальных циклов, затем после наступления
беременности («+» тест)— однократно
Таблица 4
Схемы, дозировки и кратность внутривенного введения иммуноглобулинов у пациенток с репродуктивными потерями
Table 4
Schemes, dosages and brevity of IVIG in patients with reproductive losses
Рис. 2. Содержание различных иммунологических
клеток в эндометрии в зависимости от фазы менстру-
ального цикла
Fig. 2. The content of various immunological cells in the en-
dometrium, depending on the phase of the menstrual cycle
ISSN 1684–0461
152 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
раста, фазы менструального цикла, наличия
беременности, стресса, физической актив-
ности, наличия вирусных инфекций и т. д.).
Функциональная активность NK-клеток может
быть критерием для назначения иммуномоду-
лирующей терапии, вчастности ВВИГ, атакже
маркером контроля ее эффективности.
В настоящее время основной задачей, кото-
рая стоит перед исследователями, является раз-
работка стандартизированного метода оценки
активности NK-клеток и их количества в пе-
риферической крови, атакже разработка норм
(референсных значений) для здоровых фер-
тильных женщин иженщин спатологией.
Литература
1. Choudhury S. Human reproductive failure I: Immu-
nological factors. Human Reproduction Update.
2001;7(2):113-34. doi:10.1093/humupd/7.2.113.
2. Edmonds DK, Lindsay KS, Miller JF, et al. Early embry-
onic mortality in women. Fertil Steril. 1982;38(4):447-53.
doi: 10.1016/S0015-0282(16)46579-9.
3. Sermondade N, Delarouzière V, Ravel C, et al. Char-
acterization of a recurrent poor-quality embryo mor-
phology phenotype and zygote transfer as a rescue
strategy. Reprod Biomed Online. 2012;24(4):403-9.
doi: 10.1016/j.rbmo.2012.01.004. Epub 2012 Jan 24.
4. Tan B, Vandekerckhove P, Kennedy R, Keay S. Investi-
gation and current management of recurrent IVF treat-
ment failure in the UK. BJOG: An International Journal
of Obstetrics and Gynaecology. 2005;112(6):773-780.
doi: 10.1111/j.1471-0528.2005.00523.x.
5. Debrock S, Melotte C, Spiessens C, Peeraer K. Pre-
implantation genetic screening for aneuploidy of
embryos after in vitro fertilization in women aged
at least 35 years: a prospective randomized trial.
Fertil Steril. 2010;93(2):364-73. doi: 10.1016/j.fertn-
stert.2008.10.072. Epub 2009 Feb 26.
6. Margalioth E, Ben-Chetrit A, Gal M, Eldar-Geva T.
Investigation and treatment of repeated implanta-
tion failure following IVF-ET. Human Reproduction.
2006;21(12):3036-3043. doi:10.1093/humrep/del305.
7. Firouzabadi RD, Ahmadi S, Oskouian H, Davar R.
Comparing GnRH agonist long protocol and GnRH
antagonist protocol in outcome the first cycle of ART.
Arch Gynecol Obstet. 2010;281(1):81-5. doi: 10.1007/
s00404-009-1073-5. Epub 2009 Apr 9.
8. Polanski L, Baumgarten M, Quenby S. What ex-
actly do we mean by ‘recurrent implantation failure’?
A systematic review and opinion. Reproductive Bio-
Medicine Online. 2014;28(4):409-423. doi:10.1016/j.
rbmo.2013.12.006.
9. Кошелева Н.Г., Плужникова Т.А. Невынашивание
беременности // Мир медицины. – 1998. – № 11–12. –
С. 43. [Kosheleva NG, Pluzhnikova TA. Nevynashivanie
beremennosti. Mir mediciny. 1998;(11-12):43.
(In Russ.)]
10. Сидельникова В.М., Сухих Г.Т. Невынашивание
беременности: руководство для практикующих
врачей. – М., 2011. [Sidel’nikova VM, Suhih GT.
Nevynashivanie beremennosti: rukovodstvo dlja
praktikujushhih vrachej. Moscow, 2011. (In Russ.)]
11. Сидельникова В.М. Привычная потеря беремен-
ности. – M.: Триада-Х, 2002. [Sidel’nikova VM.
Privychnaja poterja beremennosti. Moscow, Triada-X;
2002. (In Russ.)]
12. Bashiri A, Harlev A, Agarwal A. Recurrent Pregnancy
Loss. 1st ed. Cham: Springer International Publishing;
2016.
13. Беспалова О.Н. Генетические факторы риска не-
вынашивания беременности: автореф. дис. … д-ра
мед. наук. – СПб., 2009. [Bespalova ON. Geneticheskie
faktory riska nevynashivanija beremennosti [dissertation].
Saint Petersburg; 2009. (In Russ.)]
14. Тетруашвили Н.К. Ранние потери беременности
(иммунологические аспекты, пути профилакти-
ки и терапии): автореф. дис. … д-ра мед. наук. –
М., 2008 [Tetruashvili NK. Rannie poteri beremennosti
(immunologicheskie aspekty, puti profilaktiki i terapii).
[dissertation] Moscow, 2008. (In Russ.)]
15. Сельков С.А. Иммунологические аспекты невы-
нашивания беременности: автореф. дис. … д-ра
мед. наук. – СПб., 1996. [Sel’kov SA. Immunologicheskie
aspekty nevynashivanija beremennosti. [dissertation]
Saint Petersburg; 1996. (In Russ.)]
16. Газиева И.А. Иммунопатогенетические механиз-
мы формирования плацентарной недостаточно-
сти и ранних репродуктивных потерь: автореф.
дис. … канд. мед. наук. – Екатеринбург, 2014.
[Gazieva IA. Immunopatogeneticheskie mehanizmy
formirovanija placentarnoj nedostatochnosti i rannih
reproduktivnyh poter’. [dissertation] Ekaterinburg;
2014. (In Russ.)]
17. Сотникова Н.Ю. Иммунные механизмы регуля-
ции инвазии трофобласта // Российский имму-
нологический журнал. – 2010. – № 4. – С. 9–13.
[Sotnikova NJu. Immunnye mehanizmy reguljacii
invazii trofoblasta. Rossijskij immunologicheskij
zhurnal. 2010;(4):9-13. (In Russ.)]
18. Айламазян Э.К., Павлов О.В., Сельков С.А. Роль
иммунной системы фетоплацентарного комплек-
са в механизмах преждевременного прерывания
беременности // Акушерство и гинекология. –
2004. – № 2. – С. 9–15. [Ajlamazjan JeK, Pavlov OV,
Sel’kov SA. Rol’ immunnoj sistemy fetoplacentarnogo
kompleksa v mehanizmah prezhdevremennogo
preryvanija beremennosti. Akusherstvo i ginekologija.
2004;(2):9-15. (In Russ.)]
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
153
ОБЗОРЫ
19. Mikhailova V, Belyakova K, Selkov S, Sokolov D. Pe-
culiarities of NK cells differentiation: CD56dim and CD-
56bright NK cells at pregnancy and in non-pregnant state.
Medical Immunology (Russia). 2017;19(1):19-26.
doi: 10.15789/1563-0625-2017-1-19-26.
20. Михайлова В.А., Сельков С.А., Соколов Д.И.
Фенотипические и функциональные харак-
теристики NK-клеток при беременности //
Акушерство и гинекология. – 2011. – № 5. – С. 4–9.
[Mihajlova VA, Sel’kov SA, Sokolov DI. Fenotipicheskie
i funkcional’nye harakteristiki NK-kletok pri bere-
mennosti. Akusherstvo i ginekologija. 2011;(5):4-9.
(In Russ.)]
21. Bulmer JN, Morrison L, Longfellow M, et al. Granulat-
ed lymphocytes in human endometrium: histochemi-
cal and immunohistochemical studies. Hum Reprod.
1991Jul;6(6):791-8. doi: 10.1093/oxfordjournals.hum-
rep.a137430.
22. Starkey PM, Clover LM, Rees MC. Variation during
the menstrual cycle of immune cell populations in hu-
man endometrium. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol.
1991;39(3):203-7. doi: 10.1016/0028-2243(91)90058-S
23. Northern AL, Rutter SM, Peterson CM. Cyclic changes
in the concentrations of peripheral blood immune cells
during the normal menstrual cycle. Proc Soc Exp Biol
Med. 1994;207(1):81-8. doi: 10.3181/00379727-207-
43795.
24. Yovel G, Shakhar K, Ben-Eliyahu S. The effects of sex,
menstrual cycle, and oral contraceptives on the num-
ber and activity of natural killer cells. Gynecol Oncol.
2001;81(2):254-62. doi: 10.1006/gyno.2001.6153.
25. Souza SS, Castro FA, Mendonça HC, et al. Influ-
ence of menstrual cycle on NK activity. J Reprod
Immunol. 2001;50(2):151-9. doi: 10.1016/S0165-
0378(00)00091-7
26. Григорьева В.В., Сельков С.А., Шапахова О.В.,
Малыгин А.М. Активность естественных киллеров
при различных формах невынашивания
беременности // Aкушерство и гинекология. –
1991. – № 4. – С. 26–28. [Grigor’eva VV, Sel’kov SA,
Shapahova OV, Malygin AM. Aktivnost’ estestvennyh
killerov pri razlichnyh formah nevynashivanija bere-
mennosti. Akusherstvo i ginekologija. 1991;(4):26-8.
(In Russ.)]
27. Gregory CD, Shah LP, Lee H, et al. Cytotoxic reac-
tivity of human natural killer (NK) cells during normal
pregnancy: a longitudinal study. J Clin Lab Immunol.
1985;18(4):175-81.
28. Gregory CD, Lee H, Scott IV, Golding PR. Phenotypic
heterogeneity and recycling capacity of natural killer
cells in normal human pregnancy. J Reprod Immunol.
1987;11(2):135-45. doi: 10.1016/0165-0378(87)90017-9.
29. Ponte M, Cantoni C, Biassoni R. Inhibitory receptors
sensing HLA-G1 molecules in pregnancy: decidua-
associated natural killer cells express LIR-1 and CD94/
NKG2A and acquire p49, an HLA-G1-specific recep-
tor. Proc Natl Acad Sci USA. 1999;96(10):5674-9.
doi: 10.1073/pnas.96.10.5674.
30. Dosiou C, Giudice L. Natural Killer Cells in Preg-
nancy and Recurrent Pregnancy Loss: Endocrine
and Immunologic Perspectives. Endocrine Reviews.
2005;26(1):44-62. doi:10.1210/er.2003-0021.
31. Ширшев С.В., Некрасова И.В., Орлова Е.Г. Ре-
гуляция фенотипического созревания NK и NKT
клеток гормонами репродукции // Вестник Перм-
ского университета. – 2008. – Вып. 9(25). –
С. 100–103. [Shirshev SV, Nekrasova IV, Orlova EG.
Reguljacija fenotipicheskogo sozrevanija NK i NKT
kletok gormonami reprodukcii. Vestnik Permskogo
universiteta. 2008;9(25):100-3. (In Russ.)]
32. Laskarin G, Strbo N, Sotosek V, Rukavina D, et al. Pro-
gesterone directly and indirectly affects perforin expres-
sion in cytolytic cells. Am J Reprod Immunol. 1999;42(5):
312-20. doi: 10.1111/j.1600-0897.1999.tb00107.x.
33. Roussev R, Ng S, Coulam C. Natural Killer Cell Func-
tional Activity Suppression By Intravenous Immuno-
globulin, Intralipid and Soluble Human Leukocyte
Antigen-G. American Journal of Reproductive Im-
munology. 2007;57(4):262-269. doi:10.1111/j.1600-
0897.2007.00473.x.
34. Choudhury S. Human reproductive failure II: Immu-
nogenetic and interacting factors. Human Repro-
duction Update. 2001;7(2):135-160. doi:10.1093/hu-
mupd/7.2.135.
35. Beer A, Kwak J, Ruiz J. Immunophenotypic profiles
of peripheral blood lymphocytes in women with recur-
rent pregnancy losses and in infertile women with mul-
tiple failed in vitro fertilization cycles. American Journal
of Reproductive Immunology. 1996;35(4):376-382.
doi: 10.1111/j.1600-0897.1996.tb00497.x.
36. Michou VI, Kanavaros P, Athanassiou V. Fraction of the
peripheral blood concentration of CD56+/CD16–/CD3-
cells in total natural killer cells as an indication of fertility
and infertility. Fertil Steril. 2003;80(Suppl 2):691-7.
37. Thum MY, Bhaskaran S, Abdalla HI, et al. An in-
crease in the absolute count of CD56dimCD16+CD69+
NK cells in the peripheral blood is associated with a
poorer IVF treatment and pregnancy outcome. Hum
Reprod. 2004;19(10):2395-400. Epub 2004 Aug 19
38. The Role of Natural Killer Cells in Human Fertility. Sci-
entific Impact Paper No. 53, 2016. URL: https://www.
rcog.org.uk/globalassets/documents/guidelines/sci-
entific-impact-papers/sip_53.pdf (дата обращения:
13.04.2017).
39. Чугунова А.А., Зайнулина М.С., Селютин А.В. Со-
держание основных субпопуляций иммунокомпе-
тентных клеток у беременных с невынашивание
и антифосфолипидным синдромом при лече-
ISSN 1684–0461
154 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
нии препаратами иммуноглобулинов // Акушер-
ство и гинекология. – 2012. – № 2. – С. 30–35.
[Chugunova AA, Zajnulina MS, Seljutin AV. The content
of main subpopulations of immunocompetent cells in
pregnant women with miscarriage and antiphospholipid
syndrome during intravenous immunoglobulin
treatment. Obstetrics and Gynecology. 2012;(2):30-5.
(In Russ.)]
40. Clark D, Coulam C, Stricker R. Is intravenous immuno-
globulins (IVIG) efficacious in early pregnancy failure? A
critical review and meta-analysis for patients who fail in
vitro fertilization and embryo transfer (IVF). Journal of As-
sisted Reproduction and Genetics. 2006;23(9-10):383.
doi: 10.1007/s10815-006-9057-x
41. Cohn EJ, Strong LE, et al. Preparation and properties
of serum and plasma proteins; a system for the sepa-
ration into fractions of the protein and lipoprotein com-
ponents of biological tissues and fluids. J Am Chem
Soc. 1946;68:459-75. doi: 10.1021/ja01207a034.
42. Агаджанова A.A., Сидельникова В.М. Опыт примене-
ния препарата Гамимун-Н у больных с антифосфо-
липидным синдромом и привычным невынашиванием
беременности // Материалы VII Российского форума
«Мать и дитя». – М., 2005. – С. 28 [Agadzhanova AA,
Sidel’nikova VM. Opyt primenenija preparata Gamimun-N
u bol’nyh s antifosfolipidnym sindromom i privychnym
nevynashivaniem beremennosti. Materialy VII Rossijs-
kogo foruma “Mat’ i ditja”. (conference proceedings)
Moscow; 2005:28. (In Russ.)]
43. Егорян Л.С. Иммуноглобулины в профилакти-
ке внутриутробных инфекций: автореф. дис. …
канд.мед. наук. – Ростов на/Д, 2006. [Egorjan LS.
Immunoglobuliny v profilaktike vnutriutrobnyh infekcij.
[dissertation]. Rostov-on-Don; 2006 (In Russ.)]
44. Сельков С.А., Соколов Д.И., Чепанов С.В. Имму-
норегуляторные эффекты иммуноглобулинов для
внутривенного ведения // Медицинская иммуноло-
гия. – 2013. – Т. 15. – № 1. – С. 5–12. [Sel’kov SA,
Sokolov DI, Chepanov SV. Immunoreguljatornye
jeffekty immunoglobulinov dlja vnutrivennogo
vedenija. Medicinskaja immunologija. 2013;15(1):5-12.
(In Russ.)]
45. Формуляр по использованию препаратов иммуно-
глобулинов для внутривенного введения в неонато-
логии // Н.Н. Володин, ред. Протоколы диагностики,
лечения и профилактики внутриутробных инфек-
ций у новорожденных детей . – М., 2001. – С. 72–90.
[Formuljar po ispol’zovaniju preparatov immunoglobuli-
nov dlja vnutrivennogo vvedenija v neonatologii.
N.N. Volodin, ed. Protokoly diagnostiki, lechenija
i profilaktiki vnutriutrobnyh infekcij u novorozhdjonnyh
detej. Moscow; 2001: P. 72-90. (In Russ.)]
46. Carp H. Recurrent Pregnancy Loss. 2nd ed. Tel Aviv:
CRS Press; 255-261.
47. Чепанов С.В., Соколов Д.И., Шляхтенко Т.Н. Экс-
периментальное обоснование эндотелиопротек-
торного эффекта иммуноглобулинов для внутри-
венного ведения при акушерской патологии // Аку-
шерство и гинекология. – 2016. – № 5. – С. 82–89.
[Chepanov SV, Sokolov DI, Shlachtenko TN, et al.
Experimental rationale for the endothelial protective
effect of intravenous immunoglobulins in obstetric
disease. Obstetrics and Gynecology. 2016;(5):82-9.
(In Russ.)]
48. Ушкалова Е.А., Шифман Е.М. Проблема
нерегламентированного применения иммуно-
глобулина для внутривенного введения
в акушерстве // Акушерство и гинекология. –
2011. – № 3. – C. 74–80. [Ushkalova EA, Shifman EM.
Problema nereglamentirovannogo primenenija im-
munoglobulina dlja vnutrivennogo vvedenija v akush-
erstve. Akusherstvo i ginekologija. 2011;(3):74-80
(In Russ.)]
49. Seshadri S, Sunkara S. Natural killer cells in female in-
fertility and recurrent miscarriage: a systematic review
and meta-analysis. Human Reproduction Update.
2013;20(3):429-438. doi:10.1093/humupd/dmt056.
50. Moraru M, Carbone J, Alecsandru D, et al. Intravenous
immunoglobulin treatment increased live birth rate in
a Spanish cohort of women with recurrent reproduc-
tive failure and expanded CD56(+) cells. Am J Re-
prod Immunol. 2012;68(1):75-84. doi: 10.1111/j.1600-
0897.2012.01135.x. Epub 2012 Apr 18.
51. Кривонос М.И., Зайнулина М.С., Чепанов С.В.,
и др. Клинико-иммунологические аспекты ведения
женщин с неудачами ВРТ // Журнал акушерства
и женских болезней. – 2014. – № 5. – C. 89–94.
[Krivonos MI, Zaynulina MS, Chepanov SV, et al. Clinical
and immunological aspects of treatment women with
repeated in-vitro fertilization failure. Journal of Obstetrics
and Women’s Diseases. 2014;(5):89-94. (In Russ.)]
52. Hutton B, Sharma R, Fergusson D, et al. Use of in-
travenous immunoglobulin for treatment of recurrent
miscarriage: a systematic review. BJOG. 2007;114(2):-
134-42. Epub 2006 Dec 12.
53. Li J, Chen Y, Liu C, et al. Intravenous immunoglobulin
treatment for repeated IVF/ICSI failure and unexplained
infertility: a systematic review and a meta-analysis. Am
J Reprod Immunol. 2013;70(6):434-47. doi: 10.1111/
aji.12170.
54. Kwak JY, Beaman KD, Gilman-Sachs A, et al. Up-
regulated expression of CD56+, CD56+/CD16+, and
CD19+ cells in peripheral blood lymphocytes in preg-
nant women with recurrent pregnancy losses. Am
J Reprod Immunol. 1995;34(2):93-9. doi: 10.1111/
j.1600-0897.1995.tb00924.x.
55. Higuchi K, Aoki K, Kimbara T, Hosoi N. Suppression
of natural killer cell activity by monocytes following im-
ISSN 1684–0461
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
155
ОБЗОРЫ
munotherapy for recurrent spontaneous aborters. Am
J Reprod Immunol. 1995;33(3):221-7. doi: 10.1111/
j.1600-0897.1995.tb00888.x.
56. Emmer PM, Nelen WL, Steegers EA, et al. Peripheral
natural killer cytotoxicity and CD56(pos)CD16(pos) cells
increase during early pregnancy in women with a his-
tory of recurrent spontaneous abortion. Hum Reprod.
2000;15(5):1163-9. doi: 10.1093/humrep/15.5.1163.
57. Ntrivalas EI, Kwak-Kim JY, Gilman-Sachs A, et al. Sta-
tus of peripheral blood natural killer cells in women
with recurrent spontaneous abortions and infertility of
unknown aetiology. Hum Reprod. 2001;16(5):855-61.
doi: 10.1093/humrep/16.5.855.
58. Souza SS, Ferriani RA, Santos CM, Voltarelli JC. Immu-
nological evaluation of patients with recurrent abortion.
J Reprod Immunol. 2002;56(1-2):111-21. doi: 10.1016/
S0165-0378(01)00145-0.
59. Yamada H, Morikawa M, Kato EH, et al. Pre-concep-
tional natural killer cell activity and percentage as pre-
dictors of biochemical pregnancy and spontaneous
abortion with normal chromosome karyotype. Am J Re-
prod Immunol. 2003;50(4):351-4. doi: 10.1034/j.1600-
0897.2003.00095.x.
60. Roussev R, Ng S, Coulam C. Natural Killer Cell Functional
Activity Suppression By Intravenous Immunoglobulin, In-
tralipid and Soluble Human Leukocyte Antigen-G. Ameri-
can Journal of Reproductive Immunology. 2007;57(4):
262-269. doi: 10.1111/j.1600-0897.2007.00473.x.
61. Perricone C, De Carolis C, Giacomelli R, et al. High
levels of NK cells in the peripheral blood of patients
affected with anti-phospholipid syndrome and recur-
rent spontaneous abortion: a potential new hypothe-
sis. Rheumatology. 2007;46(10):1574-8. doi: 10.1093/
rheumatology/kem197.
62. Sacks G, Yang Y, Gowen E, et al. Detailed analysis of pe-
ripheral blood natural killer cells in women with repeated
IVF failure. Am J Reprod Immunol. 2012;67(5):434-42.
doi: 10.1111/j.1600–0897.2012.01105.x.
63. Lachapelle MH, Miron P, Hemmings R, Roy DC. En-
dometrial T, B, and NK cells in patients with recurrent
spontaneous abortion. Altered profile and pregnancy
outcome. J Immunol. 1996 15;156(10):4027-34.
64. Quenby S, Bates M, Doig T. Pre-implantation endome-
trial leukocytes in women with recurrent miscarriage.
Hum Reprod. 1999;14(9):2386-91. doi: 10.1093/hum-
rep/14.9.2386.
65. Clifford K, Flanagan AM, Regan L. Endometrial
CD56+ natural killer cells in women with recur-
rent miscarriage: a histomorphometric study. Hum
Reprod. 1999;14(11):2727-30. doi: 10.1093/hum-
rep/14.11.2727.
66. Emmer PM, Steegers EA, Kerstens HM. Altered phe-
notype of HLA-G expressing trophoblast and de-
cidual natural killer cells in pathological pregnancies.
Hum Reprod. 2002;17(4):1072-80. doi: 10.1093/hum-
rep/17.4.1072.
67. Shimada S, Kato EH, Morikawa M, Iwabuchi K, et al. No
difference in natural killer or natural killer T-cell popula-
tion, but aberrant T-helper cell population in the endome-
trium of women with repeated miscarriage. Hum Reprod.
2004;19(4):1018-24. doi: 10.1093/humrep/deh159.
68. Michimata T, Ogasawara MS, Tsuda H, et al. Dis-
tributions of endometrial NK cells, B cells, T cells,
and Th2/Tc2 cells fail to predict pregnancy out-
come following recurrent abortion. Am J Reprod
Immunol. 2002;47(4):196-202. doi: 10.1034/j.1600-
0897.2002.01048.x.
69. Intravenous immunoglobulin in the prevention of re-
current miscarriage. The German RSA/IVIG Group.
Br J Obstet Gynaecol. 1994;101(12):1072-7.
doi: 10.1111/j.1471-0528.1994.tb13584.x.
70. Christiansen OB, Mathiesen O, Husth M, et al. Place-
bo-controlled trial of treatment of unexplained second-
ary recurrent spontaneous abortions and recurrent
late spontaneous abortions with i. v. immunoglobulin.
Hum Reprod. 1995;10(10):2690-5. doi: 10.1093/ox-
fordjournals.humrep.a135769.
71. Coulam CB, Krysa L, Stern JJ, Bustillo M. Intrave-
nous immunoglobulin for treatment of recurrent preg-
nancy loss. Am J Reprod Immunol. 1995;34(6):333-7.
doi: 10.1111/j.1600-0897.1995.tb00960.x.
72. Stephenson MD, Dreher K, Houlihan E, Wu V. Pre-
vention of unexplained recurrent spontaneous abor-
tion using intravenous immunoglobulin: a prospective,
randomized, double-blinded, placebo-controlled trial.
Am J Reprod Immunol. 1998;39(2):82-8. doi: 10.1111/
j.1600-0897.1998.tb00339.x.
73. Jablonowska B, Selbing A, Palfi M, Ernerudh J. Preven-
tion of recurrent spontaneous abortion by intravenous
immunoglobulin: a double-blind placebo-controlled
study. Hum Reprod. 1999;14(3):838-41. doi: 10.1093/
humrep/14.3.838.
74. Christiansen OB, Pedersen B, Rosgaard A, Husth M.
A randomized, double-blind, placebo-controlled trial
of intravenous immunoglobulin in the prevention of
recurrent miscarriage: evidence for a therapeutic ef-
fect in women with secondary recurrent miscarriage.
Hum Reprod. 2002;17(3):809-16. doi: 10.1093/hum-
rep/17.3.809.
75. Triolo G, Ferrante A, Ciccia F, Accardo-Palumbo A.
Randomized study of subcutaneous low molecu-
lar weight heparin plus aspirin versus intravenous
immunoglobulin in the treatment of recurrent fetal
loss associated with antiphospholipid antibodies.
Arthritis Rheum. 2003;48(3):728-31. doi: 10.1002/
art.10957.
76. Winger EE, Reed JL.Treatment with tumor necrosis fac-
tor inhibitors and intravenous immunoglobulin improves
ISSN 1684–0461
156 ОБЗОРЫ
2017 ТОМ LXVI ВЫПУСК 3
live birth rates in women with recurrent spontaneous
abortion. Am J Reprod Immunol. 2008;60(1):8-16.
doi: 10.1111/j.1600–0897.2008.00585.x.
■ Адреса авторов для переписки (Information about the authors)
Алана Олеговна Агнаева — ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»,
Санкт-Петербург. E-mail: forlucky999@mail.ru.
Alana O. Agnaeva— FSBSI “The Research Institute of Obstetrics,
Gynecology and Reproductology named after D.O. Ott”, Saint
Petersburg, Russia. E-mail: forlucky999@mail.ru.
Олеся Николаевна Беспалова — д-р мед. наук, ведущий науч-
ный сотрудник I акушерского отделения патологии беремен-
ности. ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта», Санкт-Петербург.
E-mail:shiggerra@mail.ru.
Olesya N. Bespalova— MD, PhD, DMSc, Leading researcher of the
1st obstetric pregnancy pathology department. FSBSI “The Research
Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology named after
D.O. Ott”, Saint Petersburg, Russia. E-mail: shiggerra@mail.ru.
Дмитрий Игоревич Соколов — д-р биол. наук, зав.лабораторией
межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточ-
ных взаимодействий. ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта», Санкт-
Петер бург. E-mail:falcojugger@yandex.ru.
Dmitriy I. Sokolov— DBSc, Head of Laboratory of Intercellular
Interactions, Department of Immunology and Intercellular
Interactions. FSBSI “The Research Institute of Obstetrics, Gynecology
and Reproductology named after D.O. Ott”, Saint Petersburg, Russia.
E-mail: falcojugger@yandex.ru.
Сергей Алексеевич Сельков — д-р мед. наук, профессор, заслужен-
ный деятель науки, заведующий отделом иммунологии и меж-
клеточных взаимодействий. ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»,
Санкт-Петербург. E-mail:selkovsa@mail.ru.
Sergey A. Selkov— MD, professor, Head of the Department of
Immunology and Intercellular Interactions. FSBSI “The Research
Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology named after
D.O. Ott”, Saint Petersburg, Russia. E-mail: selkovsa@mail.ru.
Игорь Юрьевич Коган— профессор, ученый секретарь. ФГБНУ
«НИИ АГиР им. Д.О. Отта», Санкт-Петербург. E-mail:ikogan@
mail.ru.
Igor Yu. Kogan— professor, scientific secretery. FSBSI “The Research
Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology named after
D.O. Ott”, Saint Petersburg, Russia. E-mail:ikogan@mail.ru.