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Immuno-stimulatory Activities of a High Molecular Weight Fraction from Cynanchum wilfordii Radix Obtained by Ultrafiltration

Authors:

Abstract and Figures

The purpose of this study was to investigate the immuno-stimulatory activity of the high-molecular-weight fraction (HMWF) of Cynanchum wilfordii (CW) extracts obtained by ultrafiltration in murine macrophage RAW 264.7 cells and to assess its immuno-stimulatory effect in mice. Ultrafiltration was performed with polyethersulfone membranes (30 kDa cutoff) in a cross-flow filtration system to obtain the HMWF of CW. The results showed that the HMWF increased the production of various cytokines such as tumor necrosis factor-a, interleukin-6, and nitric oxide in dosedependent manners. In addition, HMWF treatment increased the relative spleen weight as well as splenocyte proliferation induced by concanavalin A or bacterial lipopolysaccharide in mice. Natural killer (NK) cell activity in the HMWF-treated group was significantly increased compared to that in the control group. These results suggest that the HMWF of CW can support the immune system through secretion of macrophage cytokines, thereby enhancing NK cell activity and murine splenocyte proliferation.
Content may be subject to copyright.
KOREAN J. FOOD SCI. TECHNOL. Vol. 48, No. 3, pp. 268~274 (2016)
http://dx.doi.org/10.9721/KJFST.2016.48.3.268
268
©The Korean Society of Food Science and Technolog
y
한외거르기(Ultrafiltration) 의하여 분리된
백수오 고분자 분획물의 면역증진 활성
장 미·임태규· 홍희도·이영경· 김경탁 ·이은정· 이정훈 1·이윤지1· 김연복 1·조장원*
한국식품연구원 전통식품연구센터, 1
농촌진흥청 국립원예특작과학원 인삼특작부
Immuno-stimulatory Activities of a High Molecular Weight Fraction from
Cynanchum wilfordii Radix Obtained by Ultrafiltration
Mi Jang, Tae-Gyu Lim, Hee-Do Hong, Young Kyoung Rhee, Kyung-Tack Kim, Eunjung Lee,
Jeong Hoon Lee1, Yun Ji Lee1, Yeon Bok Kim1, and Chang-Won Cho*
Traditional Food Research Center, Korea Food Research Institute
1Department of Herbal Crop Research, National Institute of Horticultural & Herbal Science, RDA
Abstract The purpose of this study was to investigate the immuno-stimulatory activity of the high-molecular-weight
fraction (HMWF) of Cynanchum wilfordii (CW) extracts obtained by ultrafiltration in murine macrophage RAW 264.7
cells and to assess its immuno-stimulatory effect in mice. Ultrafiltration was performed with polyethersulfone membranes
(30 kDa cutoff) in a cross-flow filtration system to obtain the HMWF of CW. The results showed that the HMWF
increased the production of various cytokines such as tumor necrosis factor-α, interleukin-6, and nitric oxide in dose-
dependent manners. In addition, HMWF treatment increased the relative spleen weight as well as splenocyte proliferation
induced by concanavalin A or bacterial lipopolysaccharide in mice. Natural killer (NK) cell activity in the HMWF-treated
group was significantly increased compared to that in the control group. These results suggest that the HMWF of CW can
support the immune system through secretion of macrophage cytokines, thereby enhancing NK cell activity and murine
splenocyte proliferation.
Keywords: Cynanchum wilfordii, ultrafiltration, NK cell activity, macrophage, immuno-stimulatory activity
서론
「대한민국약전외한약(생약) 규격집(KHP) 등재된 백수오 (
首烏) 박주가릿과(Asclepiadaceae) 덩이 뿌리로서 기원을
조롱(Cynanchum wilfordii Hemsley)’으로 구분하고 있다 (1). 중국
중약대사전과 중약지에는 은조롱(격산우피소, C. wilfordii
Hemsley), 이엽우피소(C. auriculatum Royle ex Wight) 대근우
피소(C. bungei Dence) 수록되어 있으나 우리나라와 북한의
정서에는 은조롱 (Cynanchum wilfordii) 기원식물로 규정하고
(2,3). 최근에는 우리나라에서 백수오로 널리 재배되고 있는
조롱을 이엽우피소로 둔갑하거나 혼입하여 사용하면서 국민들의
혼란과 불안감을 고조시켜 건강기능식품 시장을 위축시키는
초로도 작용하였. 더구나 우리나라에서 재배된 백수오는 생산
성이 낮고 지주설치 비용과 노동력이 많이 소요되어 재배를
피하면서 국내의 재배와 생산량이 급격히 감소하였다(4). 따라서
백수오의 재배 활성화와 농가소득을 높이기 위해서는 다양한
리활성 성분 기능성식품 소재로서의 응용 가능성을 검토할
요가 있다. 한방에서 백수오는 피로회복, 조혈기능촉진, 동맥경화
등에 사용하고 있으며(5) 최근에는 불면증 , 불안, 빈혈, 노화
리고 다양한 노인성 질환에 효과가 있다고 보고되었다(6,7). 또한
다른 생약제제 혼합한 백수오 복합 추출물을 사용하여 난소적
동물 모델에서의 골밀도 증가효과를 확인 논문도 보고되어
있다(8).
식품가공 원료로 생약재의 이용이 증가하고 있는 만큼 질병의
치유보다는 건강 유지와 자양강장을 목적으로 섭취하는 경우가
많다 . 대표적으로 인삼의 다당류 (polysaccharides) 경우에는 tumor
necrosis factor (TNF)-α, 인터루킨(interleukin, IL)-1, 인터루킨-2,
인터루킨 -6, 인터루킨 -12, 인터페론(interferon, IFN)-γ granulocyte-
macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) 같은 다양한
사이토카인(cytokines) 생산과 림프계 세포를 증식하도록 자극
하는 강력한 면역조절 기능(9-12) 다양한 효능을 나타낸다고
밝혀져 있다. 최근에는 신체 면역체계의 기능저하가 감기와 같은
바이러스성 호흡 질환은 물론 대상포진, 갑상선 질환 등에
저항력을 떨어뜨릴 있다는 보고가 있어 식품섭취를 통해
인체의 면역반응을 증진시킬 있는 다양한 연구가 요구되고
으며(13,14), 특히 천연물을 대상으로 면역증진에 우수한 건강기
능식품의 소재연구도 활발하게 이루어지고 있다(15). 면역반응은
자기성분 이외의 외부 감염물질의 침입으로부터 유도되는 질병
환경을 제거하고 수복하는 중요한 생체적 방어 작용의 하나로
천성 면역(innate immunity)반응과 후천성 면역 (adaptive immunity)
반응으로 구분된다 (16). 선천 면역계에서 생체 방어 기구의 최전
*Corresponding author: Chang-Won Cho, Traditional Food Research
Center, Korea Food Research Institute, Seongnam 13539, Korea
Tel: 82-31-780-9312
Fax: 82-31-709-9876
E-mail: cwcho@kfri.re.kr
Received February 23, 2016; revised April 4, 2016;
accepted April 4, 2016
한외거르기(Ultrafiltration) 의하여 분리된 백수오 고분자 분획물의 면역증진 활성 269
선을 담당하는 큰포식세포(macrophage) 체내의 모든 조직에
포하면서 1차적으로 세균이나 바이러스 등의 감염성 병원체뿐만
아니라 노화된 정상세포와 암세포 등에 대해 탐식작용 (phagocytosis)
일으켜 제거하는 방어능력을 가지고 있다. 활성화된 큰포식세
포는 증식과 확산능력의 향상 등과 같은 세포의 형태적 변화뿐
아니라 대식능력의 증강, 산화질소(II) (nitric oxide, NO)
터루킨 계열 , TNF-α 등의 다양한 사이토카인 생성의 향상으로
면역반응을 극대화시키 중요 매개체 역할을 한다(17,18). 또한
암세포에 대하여 살해능력을 가지는 대표적 작동세포로 알려진
자연살해세포(natural killer cell, NK cell) 면역에 있어서 숙주
보호하고, 암이나 감염에 중요한 역할을 한다고 알려져 있으
초기 면역반응에서 감염인자에 대항하는 일차적 방어선을
지하고 있다 (19).
연구에서는 국내에서 재배되는 백수오 추출물을 한외거르
기하여 얻은 고분자 분획물의 in vitro in vivo상에서의 면역자
활성을 평가하여 면역증진 효과를 가지는 기능성식품소재로
서의 활용가능성을 검토함으로써 백수오의 국내 재배활성화와
농가소득을 높이기 위한 이용가능성을 증대시키고자 하였다.
재료 방법
실험재료
사용된 백수오(Cynanchum wilfordii) 2015 8
강원도 정선에서 채굴 2 백수오를 흥청
작과 인삼특작부 약용작물과 (Eumseong, Korea)에서 제공
사용하였다. 분자적 판별 위하여 샘플 뿌리조직으로부
RBC (Banqiao City, Taiwan)사의 HiYieldTM Genomic DNA
Mini Kit 이용하여 제조사의 뉴얼 따라 리하였으며 추출
DNA Multiskan GO UV/Vis microplate spectrophotometer
(Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) 이용하여 농도
도를 확인 20 ng/µL 정량하여 대한민국약전외한약(생약)
격집 (KHP)(1) 기재되어있는 공인검정 psbA-trnH
PCR 통해 시료를 검증하였다 .
시료의 제조
백수오 열수추출물 5.0 g 1L 증류수에 용해하여 2
추출한 분리(6,500×g, 10, 4oC)하여 얻은
여과하여 동건조하였다(CWX). 낮은 도에서 체상태의
추출물을 효과적으로 농축하고 정제하기 위하여 비열 공정
한외거르기를 통해 얻은 고분자와 저분자 분획에서의 면역활
성을 해보기 위해 백수오 열수추출물 증류수에 용해
분리(6,500×g, 10, 4oC)하여 얻은 층액 분자량
(MWCO; molecular weight cut off) 30,000 여과 사용한
한외여과장치(Sartocon-Mini system, Sartorius Co., Göttingen,
Germany) 이용하여 분자량 30 kDa 이상인 고분자 분획물
(CWUF>30) 30 kDa 이하인 저분자 분획물(CWUF<30)
동건조하였다 . 추출에 사용한 시료의 게와 동건조
기를 이용하여 전히 건조시킨 사의 게를 정하여
시료의 건조 중량에 대한 가용성 고형물 함량으로 추출
계산하였다.
일반성분 분석
함량은 -(phenol-sulfuric acid method)(20)으로
정하였으며, 험관 시료분 1%(w/v) 농도로 증류수에
시료용 0.45 µm 필터로 여과하여 각각 1mL
취하여 5% (phenol) 1 mL 혼합시. 여기에 5
mL 가한 30 반응시키고 490 nm에서 도를 정하
검량선으로부터 구해진 포도당(glucose) 함량을
으로
함량을 계산하였다. 산성당 함량은 카바-(carbazole-
sulfuric acid method)(21)으로 정하였으며, 시료분 1%(w/v)
농도로 류수로 시료용 0.45 µm 필터로 여과한
각각 0.5 mL 취하고 0.125% 카바(carbazole, Sigma-
Aldrich, St. Louis, MO, USA) 0.25 mL 가하여 혼합시.
여기에 진한 3mL 가하고 85oC에서 물중하여 15
시킨 525 nm에서 도를 정하여 보정선으로부터
해진 --갈락투론산(β-D-galacturonic acid, Sigma-Aldrich)
물질로 하여 함량 계산하였다 . 단백질 함량 정은
드법(Bradford method)(22) 정하였으며 물질로는
소혈알부민 (bovine serum albumin, Sigma-Aldrich) 사용하였다.
세포배양
우스의 큰포식세포주인 RAW 264.7 cell 한국세포주은
(KCLB, Seoul, Korea)에서 분양 받았으며 세포배양을 위해 10%
FBS 1% 페니실-트렙이신 (penicillin-streptomycin)
함하는 Dulbecco’s modified Eagle’s medium (Gibco BRL, Grand
Island, NY, USA)에서 37oC, 5% CO2 조건을 유지하여 배양하였다.
세포 생존율 측정
추출물에 의한 세포성을 알아보기 위하여 CCK-8 assay
(Dojindo Lab., Kumamoto, Japan) 이용하여 세포 존율
정하였다. RAW 264.7 세포를 96-well plate 1×104 cell/well
농도로 분주하여 24 배양한 시료를 농도(0, 30, 50, 150,
200 µg/mL) 리하였다. 양성대조으로는 1µg/mL 지방질다
당류(lipopolysaccharide, LPS) 리하였으며 24 배양한
에는 CCK-8 solution (10 µL/well) well 가시켜 37oC에서
2 동안 리하여 450 nm 장에서 ELISA reader (TECAN,
Männedorf, Switzerland) 사용하여 도를 정하였다 .
산화질소(II) 생성량 측정
면역증진 능력을 확인하기 위하여 griess reagent [1% (w/v)
sulfanilamide in 5% (v/v) 인산(phosphoric acid) 0.1% (w/v)
틸렌다이아민-염산(naphtylethylenediamine-HCl)] 이용하여
세포배양 중에 재하는 NO2
생성농도를 정하였다. RAW
264.7 세포를 6-well plate 5×105 cell/well 농도로 분주하여 24
배양한 후에 시료는 농도(0, 30, 50, 150, 200 µg/mL)
리하였으며 양성대조으로 지방질다당류는 1µg/mL
리하여 24 동안 배양하였다 . 세포배양 층액 동량의
griess reagent 혼합하여 에서 15 반응시킨 540 nm
도를 정하였으며 아질산소(sodium nitrite) 이용하여
작성한 준곡선으로부터 산화질소(II) 농도를 구하여 환산하였다.
사이토카인 생성량
세포배양 내의 TNF-α 인터루킨-6 분비량은 ELISA kit
(BD Bioscience, San Diego, CA, USA) 이용하여 정하였다.
96-well plate capture antibody (anti-mouse TNF-α 인터루킨-
6) 각각 분주하여 4
oC에서 룻밤 동안 coating. 이를
washing buffer (0.05% Tween-20 포함된 phosphate-buffered
saline (PBS)) 10% FBS 함유된 PBS으로 1
blocking washing buffer 하였다. microplate에는
산화질소(II) 정하였 동일한 세포배양 층액
270 한국식품과회지 48 3 (2016)
100 µL 분주하여 에서 2 반응시킨 washing buffer
하였다 . 희석 각각 biotinylated anti-mouse TNF-α
인터루킨-6 detection antibody streptavidin-horseradish peroxidase
conjugate 에서 1 반응시. 반응시킨 plate
washing buffer tetramethylbenzidine (TMB) sub-
strate solution 가하여 암실에서 30 동안 시킨 1
M 인산을 가하여 반응을 정지시키고 450 nm에서
정하였다.
실험동물
동물은 7 BALB/c 우스를 ()(Pyoungtaek,
Korea)로부터 공급 1주일 환경에 적응시킨
사용하였으며 고형사료와 물은 자유로이 공급하였다.
일정한 (23±3oC) (50±10%) 12 낮과
기를 유지하였다 . 한국식품연구원 동물실험윤리위원회의
(KFRI-M-15040) 받았으며 동물의 사용
국국보건원(NIH) 지침에 따라 하였다.
시험물질 투여
동물은 체중변화가 일정하고 건강한 동물만을
배치 의해 정상대조 시료 으로 었으
험군 6 사용하였다. 험군 4으로 생리식염
수를 여한 정상대조(CON) CVT-E002TM (COLD-FX, Afexa
Life Sciences Inc., Edmonton, AB, Canada) 200 mg/kg body
weight (BW)으로 여한 양성대조(PC), 백수오의 고분자 분획
(CWUF>30) 100, 200 mg/kg BW 농도로 여한 시료
으로 었다 . 여는 4 매일 1 경구로 하였으며
료일에 동물의 체중을 정하고 생시킨 ,
비장을 적출하여 체중에 대한 상대장기중량으로 계산하였다 .
비장세포 증식능 측정
동물을 경추골하여 비장을 균적으로 적출한
유리으로 하여 유리시. 분리된 세포현탁액
RPMI 1640 medium (Hyclone, Logan, UT, USA)내에서 200
(mesh) 인리스 (stainless steel sieve) 통과시켜 세포
유리시. 분리된 세포 현탁액 100 µm cell strainers (BD
Falcon, Palo Alto, CA, USA) 통과시켜 배양으로 2
, 3,000 rpm에서 10 분리 red blood cell lysing
buffer (Hybri-MaxTM, Sigma-Aldrich) 5 리하여 적혈구를
제거하였다. 적혈구가 제거된 비장세포는 다시 RPMI 1640 배양
분산시켜 trypan blue solution으로 혈구계수기
(hemocytometer) 용하여 세포수를 정하였. 24-well plate
3.0×106 cell/mL 분주하였다. mitogen으로 Con A
(concanavalin A, 7.5 µg/mL) 지방질다당류(30 µg/mL) 가하
37oC, 5% CO2 배양기에서 72 배양한 세포증식능을
CCK-8 assay 정하였다 .
자연살해세포 활성 측정
자연살해세포의 세포성은 자연살해세포에 의해 파괴되는
양세포 Yac-1세포로부터 리되는 수소제거효소(lactate dehy-
drogenase, LDH) 정하는 이용하였다. Yac-1 (target
cell) 세포는 96-well U-bottom culture plate 1×104 cell/well
되도록 조정한 분리된 비장세포 (effector cell) 같이 배양하였
으며 effector-to-target 세포 비가 10:1, 5:1, 2.5:1 되도록 세포
수를 조정하였다 . 37oC, 5% CO2 배양기에서 4 배양시킨
자연살해세포의 능에 의해 표적세포로부터 유리되는
수소제거효소의 발생량을 EZ-LDH Cell Cytotoxicity Assay Kit
(DoGen, Seoul, Korea) 이용하여 정하였다.
통계분석
과는 평균 ±준편차로 나타내었으며 통계리는 SPSS (Sta-
tistical Package for Social Science, version 20.0, SPSS Inc.,
Chicago, IL, USA) 통계프로그 이용하여 one way ANOVA
test 하였다. 험군 유의성은 Scheffe’s test p<0.05
에서 하였다 .
결과 고찰
세포독성
백수오 열수추출(CWX) 한외거르기를 이용하여 얻은 고분
분획물(CWUF>30) 저분자 분획물(CWUF<30) 세포
확인하기 위하여 농도(30, 50, 150, 200 µg/mL) 리한
과는 Fig. 1 . 정상 대조(CON) 비해 모든 농도에서
100% 이상의 존율 나타내어 세포 성에 향을 주지
.
산화질소(II) 생성능
큰포식세포가 활성화되면 산화질소(II) TNF-α 등의 사이토
카인을 분비하는 산화질소(II) 생성은 면역계에서 양세포나
세포내 감염된 생물에 대한 방어 작용을 하는 중요한 신호전
물질로 알려져 있다(23). 정상대조 지방질다당류만
양성대조, 백수오 열수추출물(CWX), 고분자 분획물
(CWUF>30) 저분자 분획물(CWUF<30) 농도 리하였
생성되는 산화질소(II) 양을 정한 과는 Fig. 2
. 고분자 분획물인 CWUF>30 경우 정상대조(CON) 비해
150 µg/mL 200 µg/mL 농도에서 유의적인 증가가 나타으며
양성 대조(지방질다당류) 비해 23.1% 34.9% 산화
질소(II) 생성하였다. 이는 한외거르기를 통해 고분자의 유효성
분이 농축으로써 높게 나타나는 으로 보여진다. 산화질소(II)
과량 생성은 전신적 염증을 유발하여 생체에 여러 부정적인
Fig. 1. Effect of various extracts of Cynanchum wilfordii on
v
iability of RAW 264.7 cells. Values with the different letters are
significantly different (p<0.05). CWX, hot water extract; CWUF
>30, a high molecular weight fraction obtained by ultrafiltration;
CWUF<30, a low molecular weight fraction obtained by
ultrafiltration.
한외거르기(Ultrafiltration) 의하여 분리된 백수오 고분자 분획물의 면역증진 활성 271
향을 치지만 적정량의 산화질소(II) 생성 선천성 면역의
중요한 인자로써 진다(24).
TNF-α 인터루킨-6 생성능
염증성 사이토카인인 TNF-α 생성능에 대한 면역활성을 검토
, 열수추출물(CWX) 고분자 분획물 (CWUF>30) 큰포
식세포(macrophage) 자극에 의한 TNF-α 분비를 농도 적으
증가시. 활성화된 큰포식세포는 선천성 면역 반응의 중요
인자로 지는 TNF-α, 인터루킨-6 인터루킨-12 등과 같은
사이토카인을 생산함으로써 이후의 면역반응을 유도한다고 알려
있다(25). 특히, TNF-α 경우에는 성숙 수지상 세포의
면에 단백질 또는 보조자극인자의 촉진하고 이는 성숙된
형태의 수지상세포로 전환시켜 T림프구와 상호작용을 통해 T
프구의 활성과 성장의 조절, 암세포의 세포용해유도 적인
항암 작용 나타낸다(26). CWUF>30 세포에 농도 리한
양성대조(지방질다당류 ) 생성한 TNF-α 분비량과 교했
150 200 µg/mL 농도에서 각각 63.1, 71.3%
TNF-α 생성하였다(Fig. 3A).
3개의 추출물 (CWX, CWUF>30 CWUF<30) 큰포식세포에
농도 리하였을 인터루킨-6 분비량을 정함으로써
역반응의 활성화 정도를 확인하고자 하였으며 과는 Fig. 3B
나타내었다. 활성화된 큰포식세포는 인터루킨 -6 생산함으로
면역반응을 조절한다고 알려져 있으며 B세포의 항체생성
포인 형질세포 (plasma cell) 분화를 유도하는 B세포의
극인자로써 면역로불 합성을 증진하는 다양한 작용을
나타낸다(27). CWUF>30 경우 활성화된 큰포식세포에서 면역
매개인자인 인터루킨 -6 생성을 농도 적으로 증가시으며
150 200 µg/mL 농도에서는 정상 대조(CON) 비해 유의
적인 차이를 나타내었다. 이는 CWUF>30 인터루킨 -6 생성량
증가시켜 B림프구를 분화시으로써 면역반응에 중요한 역할
있을 으로 진다.
백수오 추출물과 고분자 분획물의 화학적 특성
백수오로부터 열수추출물 (CWX) 한외거르기를 이용하여
고분자 분획물(CWUF>30) 일반 특성
과는 Tabl e 1 같다. 한외거르기 공정을 통해 저분자 물질이
리된 고분자 분획물인 CWUF>30 CWX보다 추출 감소
하였으며 57.95% 중성당과 34.01% 산성당과 8.04% 단백
질로 구성되어 있었다. CWX 경우 , 77.15% 중성당과 산성당
(16.49%) 단백질(6.36%) 소량 함유하고 있었다(Table 1).
CWUF>30 CWX보다 중성당은 감소하면서 상대적으로 산성당
증가되어 다당류의 주성분인 중성당과 산성당 함량에서 CWX
유의적인 차이를 나타으로써 면역활성 증진에 주로 산성다
당류가 여할 가능성을 제시해주었다. 체상태의 추출물을
과적으로 농축하고 정제하기 위해 비열 공정인 한외거르기
일반성분인 중성당 , 산성당과 단백질 함량에 향을 치는
Fig. 2. Effect of various extracts of Cynanchum wilfordii on NO
production from RAW 264.7 cells. Values with the different letters
are significantly different (p<0.05). CWX, hot water extract; CWUF
>30, a high molecular weight fraction obtained by ultrafiltration;
CWUF<30, a low molecular weight fraction obtained by
ultrafiltration.
Fig. 3. Effect of various extracts of Cynanchum wilfordii on the
productions of TNF-α (A) and IL-6 (B) from RAW 264.7 cells.
Values with the different letters are significantly different (p<0.05).
CWX, hot water extract; CWUF>30, a high molecular weigh
t
fraction obtained by ultrafiltration; CWUF<30, a low molecula
r
weight fraction obtained by ultrafiltration.
Table 1. Yield and the compositions of the high molecular weight
fraction obtained by ultrafiltration of Cynanchum wilfordii
CWX CWUF>30
Yield (%) 16.1±0.2a04.0±0.1b
Chemical composition (%)
Neutral sugar 77.15±0.43 a 57.95±3.81b
Uronic acid 16.49±0.35a34.01±3.42b
Protein 06.36±0.10 a 08.04±0.54b
Values represent Mean±SD.
a,b) The different superscripts in the same row indicate the significan
t
difference by Scheffe’s test (p<0.05).
272 한국식품과회지 48 3 (2016)
으로 보여지며 이러한 특성의 변화가 면역활성에
치는 으로 된다 . 인삼으로부터 분리된 다당류성분이
항암작용을 하여 다양한 면역증강효과를 나타낸다고 보고된
있으며, 중성 다당류 비해 산성 다당류가 면역체계에
향이 으로 나타(28-31). 산삼배양근에서 분리된
당류 분획은 중성당 64.8%, 산성당 34.3% 구성되어 있어
CWUF>30 조성 하였는, 산삼배양근의 중성당 구성은
포도당 85.5, 갈락토스(galactose) 5.9, 아라비노스(arabinose) 5.4,
노스(rhamnose) 2.9 Mole%였으며, 산성당은 갈락투론산(galac-
turonic acid) 71.5, 론산(glucuronic acid) 28.5 Mole%
성되어 있었다 (32).
체중과 면역장기 무게
일차 림프기 선은 세포매개 면역 (cell-mediated immunity)
적인 으로 림프구의 성숙이 일어나며 T세포 발생과
성숙장소로 감염으로부터 보호할 T세포를 생성하고
. 또한 림프절(lymph node) 비장은 2 림프기으로써 항원
수집되고 성숙한 림프구가 항원과 함께 작용하게 된다 . 비장
혈류 항원에 대한 면역반응을 유발시키는 중요한
할을 하는 으로 전신성 감염에 반응하는 이다 . 이러한
선과 비장의 증가는 비특이적인 면역반응과 특이적 면역
반응에서 중요한 지표로서 인식되고 있다(33-35). 동물의
중과 면역장기인 선과 비장의 게는 Ta bl e 2 나타내었다.
상대조(NC) 경우 3.16±0.95 g 체중 증가량이 나타으며
성대조(PC)에서는 3.74±1.08 g, 백수오의 고분 분획물(CWUF
>30) 100 200 mg/kg으로 여한 에서는 각각 3.55±0.89,
3.30±0.98 g으로 체중에 대한 유의적인 향은 나타나지 않았.
비장의 경우 , 정상대조 하여 양성대조 200 mg/kg
용량으로 여한 CWUF>30에서 증가는 나타지만 유의적
차이는 었다. 게의 경우, 정상대조 비해 양성대
CWUF>30 여한 모든 험군에서 유의적으로 증가하
였다(p<0.05).
Mitogen 의한 비장세포 증식능
비활성화된 림프구 (non-activated lymphocyte) 경우, 각종
원이나 mitogen, 사이토카인 여러 류의 자극에 의하여 활성
화되는 단계에서 세포증식(proliferation) 일어나게 되며 활성화
정도는 mitogen-stimulated response 의하여 확인할
면역 조절제를 하는 으로 광범위하게 사용되
있다(36). 백수오의 고분자 분획물(CWUF>30) 여가 비장
세포의 증식 효과에 향을 치는지 알아보기 위하여 비장으로
부터 분리된 비장세포(splenocyte) T세포의 mitogen Con A
B세포의 mitogen 지방질다당류를 이용하여 림프구의 증식
도를 정한 과는 Fig. 4A . T 림프구 증식 경우,
정상대조(CON) 비해 양성대조(PC) CWUF>30
모든 에서 유의적으로 증가하였으며 B 림프구의 증식능에
서도 CWUF>30 100 mg/kg 200 mg/kg으로 여한 모든
에서 정상대조 양성대조 비해 유의적으 높은 활성을
나타내었다(Fig. 4B). 이러한 과는 CWUF>30 여가 비장세
포를 증식시키는 mitogen 활성이 보여주며 외부의 항원
노출 항원에 대한 면역반응을 유도하는 면역세포의 수를
Fig. 4. Effect of orally-administered CWUF>30 on Con A-
induced T-lymphocyte (A) or LPS-induced B-lymphocyte (B)
proliferation in normal mice. Data were expressed as mean±SD o
f
six mice. CON, saline-treated group; PC, CVT-E002TM (200 mg/kg)
treated group (positive control); CWUF>30(100), a high molecula
r
weight fraction of Cynanchum wilfordii (100 mg/kg) treated group;
CWUF>30(200), a high molecular weight fraction of Cynanchum
wilfordii (200 mg/kg) treated group. Values with the different letters
are significantly different (p<0.05).
Table 2. Effect of the high molecular weight fraction of Cynanchum wilfordii on terminal body weight, absolute, and relative organ
weights of mice (mean±SD) (n=6)
Group Initial body
weight (g)
Terminal body
weight (g)
Spleen weight Thymus weight
Absolute (g) Relative (%) Absolute (g) Relative (%)
Negative control (saline) 17.42±0.53a20.58±1.03a0.095±0.005a0.447±0.023a0.043±0.004a0.207±0.019a
CWUF>30 (100 mg/kg) 17.53±0.60a21.08±0.98a0.092±0.002a0.436±0.024a0.053±0.006b0.253±0.026b
CWUF>30 (200 mg/kg) 17.53±0.49a20.82±0.92a0.099±0.007a0.472±0.023a0.054±0.007b0.258±0.024b
Positive control
(CVT-E002TM, 200 mg/kg) 17.60±0.51a21.35±0.97a0.100±0.010a0.464±0.033a0.059±0.003b0.277±0.011b
a,b)Means with different superscripts in the same column are significantly different at p<0.05
한외거르기(Ultrafiltration) 의하여 분리된 백수오 고분자 분획물의 면역증진 활성 273
증가시켜 외부감염에 대한 효과적인 방어를 유도할 있을
으로 예측되었다 .
자연살해세포의 활성화
자연살해세포는 주로 재하며 내재면역을 담당하는
포로 또는 바이러스 감염 환에서 생체의 초기 면역방어에
매우 중요하다 (37). 감염세포 암세포 등의 비자기 (non-self)
세포를 살해하는 세포성 면역활성을 가지고 있어 표적물질과
촉하게 되면 활성화되어 표적세포를 파괴하게 된다. 또한 바이러
스와 같은 병원균이 체내에 들어와 복제를 위해 숙주세포로
어가는 거나 세포를 적으로 제거하기도
한다(38). 백수오의 고분자 분획물(CWUF>30) 의한 자연살해
포의 활성화는 우스의 비장으로부터 분리된 비장세포(splenocyte)
자연살해세포에 민감한 세포로 알려진 Yac-1 세포를 함께
양하여 Ya c-1 세포의 세포사 정도를 정함으로써 확인하였다.
CWUF>30 200 mg/kg BW 농도로 경구 여한 우스의
장세포는 정상대(CON) 비하여 effector 세포와 표적세포의
10:1에서 유의적으로 증가하였으며(p<0.05) 양성대조
(PC) 유사한 으로 나타. 이는 정상대조 비해 YA C -
1 세포에 대한 정도가 양성대조 CWUF>30 (200 mg/kg)
에서 각각 81.2, 63.1% 증진시키는 과를 나타내었다
(Fig. 5). 따라 백수오의 고분자 분획물인 CWUF>30 NK세포
활성 향상에 향을 치며 리농도가 높을수록 자연살해
포의 활성이 증가하는 확인하였다. 인삼 추출물이 자연살해
세포의 활성능에 향을 미친다는 연구(39) 비추어 ,
백수오는 인삼의 효능과 마찬가지로 자연살해세포의 활성을
가시으로써 양세포의 제거에 정적으로 기여할 으로
된다.
요약
백수오의 국내 재배활성화와 함께 농가소득을 높이기 위한
능성 식품소재로서의 우수성을 적으로 응용하고자 백수오
출물의 역증진 활성을 평가하였다 . 낮은 도에서 체상태의
추출물을 효과적으로 농축하고 정제하기 위하여 비열 공정
한외거르기를 통해 분자량(MWCO) 30 kDa 여과
용하여 고분 분획물(CWUF>30) 저분자 분획물 (CWUF<30)
얻었으며 이를 큰포식세포 활성화를 통한 면역 증진 효과를
알아보기 위해 RAW 264.7 세포를 이용하여 면역활성의 지표가
되는 산화질소 (II) 생성량 사이토카인인 TNF-α, 인터루킨-6
생성량을 정한 , 정상대조(CON) 비해 CWUF>30
리하였을 농도 적으로 유의하게 증가하였다. 세포실
통해 면역증강활성 높은 CWUF>30 정상동물모델에서 면역
비장 선의 게를 증가시 비장세포 림프
증식도 유의하게 증가시. 이는 CWUF>30 여가 비장
세포를 증식시키는 mitogen 활성이 보여주며 외부의
원에 노출 항원에 대한 면역반응을 유도하는 면역세포의
증가시켜 항원에 대한 효과적인 방어에 으로
여진다. 또한 CWUF>30 여한 우스 비장세포(splenocyte)
Yac-1 세포 살해 정도를 정한 , 200 mg/kg BW 농도로
CWUF>30 여한 우스의 비장세포는 정상대조(CON)
하여 effector 세포와 target 세포의 10:1에서 유의적으로
증가하였으며 이는 양성대조(PC) 유사한 높은 활성을 보이
확인 있었다. 이와 같은 과를 통해 백수오
분자 분획물 (CWUF>30) 강력한 면역활성 증진효능을
으며 각종 바이러스 외부 항원들에 대응하여 초기 면역세포
자극하고 면역매개물질을 생성함으로써 인체의 비특이적
역반응을 증가시키는 중요한 역할을 있을 으로 기대된다 .
감사의
성과물 (논문 ) 흥청 연구사(세부과제: PJ01171602)
지원에 의해 이루어진 것임
References
1. Ministry of Food and Drug Safety. The Korean Herbal Pharmaco-
poeia. Available from: http://www.mfds.go.kr/herbmed/index.do?
nMenuCode=7. Accessed Jan. 29, 2016.
2. Kim MJ, Song BH, Nam SY, Kim IJ, Lee CH, Yun T. Effects of
nonsupporting methods on growth and yield of Cynanchum auric-
ulatum Royle ex Wight. Korean J. Medicinal Crop Sci. 13: 268-
272 (2005)
3. Hwang IS, Yoo JH, Seong ES, Lee JG, Kim HY, Kim NJ, Lim
JD, Ham JK, Ahn YS, Kim NY, Yu CY. The Effect of tempera-
ture and seed soaking on germination in Cynanchum wilfordii
(Maxim.) Hemsl. Korean J. Medicinal Crop Sci. 20: 136-139
(2012)
4. Lee JH, Kweon KT. Determination of harvest time and nominal
origin from Cynanchi wilfordii Radix. J. Korean Oriental Med.
33: 160-168 (2012)
5. Lee DW, Kim CH, Lee DU. Effect of culture conditions on the
biosynthesis of gagaminine, a potent antioxidant from the roots of
Cynanchum wilfordii. Biol. Pharm. Bull. 24: 1451-1453 (2001)
6. Yoon DW, Cho SM, Kim SJ, Kim JH, Kim DS, Lee SH, Yun
CH, Shin C. Effects of Cynanchum wilfordii Hemsley extract on
the sleep-wake architectures in rats. Sleep Med. Res. 2: 16-20
(2011)
7. Zenk MH, el-Shagi H, Schulte U. Anthraquinone production by
cell suspension cultures of Morinda citrifolia. Planta Med. 28:
79-101 (1975)
8. Kim SN, Li YC, Xu HD, Yi DG, Kim MS, Lee SP, Yi KT, Lee
JK, Kim JS, Kwon MS, Chang PS, Kwak BY. Phytoestrogenic
effects of combined plant extracts on the change of bone metabo-
lism of OVX rats. Korean J. Food Sci. Technol. 40: 316-320
Fig. 5. Effect of orally-administered CWUF>30 on NK cel
l
activity of splenocytes in normal mice. Data were expressed as
mean±SD of six mice. CON, saline-treated group; PC, CVT-E002T
M
(200 mg/kg) treated group (positive control); CWUF >30 (100),
a
high molecular weight fraction of Cynanchum wilfordii (100 mg/kg)
treated group; CWUF>30(200), a high molecular weight fraction o
f
Cynanchum wilfordii (200 mg/kg) treated group. Values with the
different letters are significantly different (p<0.05).
274 한국식품과회지 48 3 (2016)
(2008)
9. Lee YS, Chung IS, Lee IR, Kim KH, Hong WS, Yun YS. Acti-
vation of multiple effector pathways of immune system by the
antineoplastic immunostimulator acidic polysaccharide ginsan iso-
lated from Panax ginseng. Anticancer Res. 17: 323-331 (1997)
10. Kim KH, Lee YS, Jung IS, Park SY, Chung HY, Lee IR, Yun
YS. Acidic polysaccharide from Panax ginseng, ginsan, induces
Th1 cell and macrophage cytokines and generates LAK cells in
synergy with rIL-2. Planta Med. 64: 110-115 (1998)
11. Shin JY, Song JY, Yun YS, Yang HO, Rhee DK, Pyo S. Immun-
ostimulating effects of acidic polysaccharides extract of Panax
ginseng on macrophage function. Immunopharm. Immunot. 24:
469-482 (2002)
12. Song JY, Han SK, Son EH, Pyo SN, Yun YS, Yi SY. Induction
of secretory and tumoricidal activities in peritoneal macrophages
by ginsan. Int. Immunophrmacol. 2: 857-865 (2002)
13. Cho SH, Yang KM, Bae BS, In SA, Yu RN. Effect of sea tangle
intake on cytokine production in macrophage from normal and
diabetic mice. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 27: 952-959 (1998)
14. Cheng GC, Lee JY, Kim DC, Suh SO, Hwang WI. Inhibitory
effects of Salvia miltiorhiza extract on growth of some cancer
cells. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 29: 726-731 (2000)
15. Ji WD, Jeong HC, Lee SJ, Chun YG. Antimicrobial activity and
distilled components of garlic and ginger. J. Agr. Chem. Biotech-
nol. 40: 514-518 (1997)
16. Abo T, Kawamura T, Watanabe H. Immunologic states of autoim-
mune diseases. Immunol. Res. 33: 23-34 (2005)
17. Hibbs JB Jr, Taintor RR, Vavrin I, Rachlin EM. Nitric oxide: A
cytotoxic activated macrophage effector molecule. Biochem.
Bioph. Res. Co. 157: 87-94 (1998)
18. Nathan CF. Secretory products of macrophages. J. Clin. Invest.
79: 319-326 (1987)
19. Herberman RB, Ortaldo JR. Natural killer cell: Their roles in
defenses against disease. Science 214: 24-30 (1981)
20. Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F. Colori-
metric method for determination of sugar and related substances.
Anal. Chem. 28: 350-356 (1956)
21. Bitter T, Muir HM. A modified uronic acid carbazole reaction.
Anal. Biochem. 4: 330-334 (1962)
22. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation
of microgram quantities of protein utilizing the principle of pro-
tein-dye binding. Anal. Biochem. 72: 248-254 (1976)
23. Kim HS, Kang JS. Preparation and characteristics of bread by
medicinal herb composites with immunostimulating activity. J.
Korean Soc. Food Sci. Nutr. 37: 109-116 (2008)
24. Kim JJ, Lee SW, Park KW, Seo KI, Yee ST. Effect of Flam-
mulina velutipes extracts cultivated with oriental herbal plants on
the activation of immune cells. J. Life Sci. 22: 828-836 (2012)
25. Cho CW, Han CJ, Rhee YK, Lee YC, Shin KS, Shin JS, Lee
KT, Hong HD. Cheonggukjang polysaccharides enhance immune
activities and prevent cyclophosphamide-induced immunosuppres-
sion. Int. J. Biol. Macromol. 72: 519-525 (2015)
26. Yu AR, Park HY, Kim YS, Ha SK, Hong HD, Choi HD.
Immuno-enhancing effect of seed extracts on a RAW 264.7 mac-
rophage cell line. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 41: 1671-1676
(2012)
27. Cha JH, Kim YS, Lee EM. Effects of Prunellae spica water
extract on immune response in macrophage cells. J. Korean
Obstet. Gynecol. 23: 91-100 (2010)
28. Kim YS, Kang KS, Kim SI. Study on antitumor and immuno-
modulating activities of polysaccharide fractions from Panax gin-
seng: Comparison of effects of neutral and acidic polysaccharide
fraction. Arch. Pharm. Res. 13: 330-337 (1990)
29. Kim YS, Kang KS, Kim SI. Effects of ginseng components on
immunotoxicity of cyclophosphamide. J. Ginseng Sci. 15: 13-20
(1991)
30. Lee YS, Chung IS, Lee IR, Kim KH, Hong WS, Yun YS. Acti-
vation of multiple effector pathways of immune system by the
antineoplastic immunostimulator acidic polysaccharide ginsan iso-
lated from Panax ginseng. Anticancer Res. 17: 323-331 (1997)
31. Park KM, Jeong TC, Kim YS, Shin HJ, Nam KY, Park JD.
Immunomodulatory effect of acidic polysaccharide fraction from
Korean red ginseng (Panax ginseng). Nat. Prod. Sci. 6: 31-35
(2000)
32. Nam S, YK Rhee, Hong HD, Lee YC, YC Kim, Shin KS, Cho
CW. Immuno-modulatory activity of the crude polysaccharide
from wild ginseng adventitious root. Korean J. Food Nutr. 25:
755-761 (2012)
33. Gerberick GF, Cruse LW, Ryan CA. Local lymph node assay:
Differentiating allergic and irritant responses using flow cytome-
try. Eur. J. Med. Res. 19: 48-55 (1999)
34. Sikorski EE, Gerberick GF, Ryan CA, Miller CM, Ridder GM.
Phenotypic analysis of lymphocyte subpopulations in lymph
nodes draining the ear following exposure to contact allergens
and irritants. Fund. Appl. Toxicol. 34:25-35 (1996)
35. Suda A, Yamashita M, Tabei M, Taguchi K, Vohr HW, Tsutsui N,
Suzuki R, Kikuchi K, Sakaguchi K, Mochizuki K, Nakamura K.
Local lymph node assay with non-radioisotope alternative end-
points. J. Toxicol. Sci. 27:204-218 (2002)
36. Lee YS, Lee GH, Kwon YK, Park JH, Shin SW. Immunomodu-
latory effect of aqueous extracted Zingiberis rhizoma on cyclo-
phosphamide-induced immune suppression. J. Physiol. Pathol.
Korean Med. 21: 485-490 (2007)
37. Whiteside TL, Herberman RB. The role of natural killer cells in
immune surveillance of cancer. Curr. Opin. Immunol. 7: 704-710
(1995)
38. Lanier LL. NK cell receptors. Annu. Rev. Immunol. 16: 359-393
(1998)
39. See DM, Broumand N, Sahl L, Tilles JG. In vitro effects of
echinacea and ginseng on natural killer and antibody-dependent
cell cytotoxicity in healthy subjects and chronic fatigue syndrome
or acquired immunodeficiency syndrome patients. Immunophar-
macology 35: 229-235 (1997)
... The immune system is distinguished into innate immune responses and adaptive immune responses as one of the important biological defenses against factors induced by invasion of external pathogens (Jang et al., 2016). Innate immune cells comprise populations of white blood cells such as neutrophils, eosinophils, basophils, lymphocytes (B cells, T cells and natural killer cells) and monocytes (dendritic cells and macrophages) (Lacy & Stow, 2011). ...
Article
Full-text available
In this study, we evaluated whether extracts of the roots of Hibiscus syriacus (HSR) exert immune activation activities and elucidated its potential mechanism in macrophages. The HSR dose-dependently increased the production of immunomodulators such as nitric oxide (NO), inducible nitric oxide synthase (iNOS), cyclooxygenase-2 (COX-2), interleukin-1β (IL-1β), and tumor necrosis factor (TNF-α) activated phagocytosis in macrophages. Inhibition of toll-like receptors 4 (TLR4) reduced the production of immunomodulators induced by HSR. Inhibition of mitogen-activated protein kinase (MAPKs), nuclear factor-κB (NF-κB) and phosphoinositide-3 kinase (PI3K) signaling attenuated the production of immunomodulators induced by HSR. Based on the results of this study, HSR was thought to activate macrophages through the production of immunomodulators and phagocytosis activation through TLR4-dependent MAPKs, NF-κB and PI3K signaling pathways. Therefore, it is thought that the HSR has the potential to be used as agents for enhancing immunity.
Article
Full-text available
Background and Objective Although Cynanchum wilfordii Hemsley (C. wilfordii) has been widely used for treating insomnia in Korea, there are no objective data on its sleep-enhancing effects. Methods We examined the effects of this extract on sleep latency, sleep parameters, and NREM delta activity in rats administered several different dosages (300 mg/kg, 1 g/kg or 3 g/kg, p.o.) and compared them to valerian extract which is a popular natural hypnotic. Results We found no significant shortening of sleep latency was observed with any dosage of either C. wilfordii extract or with valerian. NREM sleep increased significantly at C. wilfordii dosages of 300 mg/kg and 1 g/kg but not for 3 g/kg. Only the 1 g/kg dosage significantly decreased the amount of wakefulness. Neither any of the C. wilfordii dosages nor valerian extract produced any effect on REM sleep amount. Conclusions Therefore, C. wilfordii could be a useful natural hypnotic with a sleep-enhancing effect.
Article
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This study is part of research to develop the technology for managing major medicinal crops after harvest. We studied the optimal germination conditions of (Maxim.) Hemsl. The mean germination time (MGT) of seeds was higher after soaking for 4 days after storage at for 8 weeks, than with germination at (3 days). However, the germinative energy (GE) decreased as the number of days soaking increased. The greatest germination rate () was at with no soaking of seeds stored at for 8 weeks. Based on these results, we characterized the germination conditions of a major medicinal crop.
Article
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In this study, we examined immuno-modulatory activities of crude polysaccharides from wild ginseng adventitious roots (WGAR). The crude polysaccharide (WGAR-CP) was isolated from WGAR by hot water extraction, ethanol precipitation, and dialysis. The major constituents in WGAR-CP were neutral sugar (64.77%), and uronic acid (34.32%). WGAR-CP demonstrated anti-complementary activity dose-dependently. The immuno-modulatory effects of WGAR-CP were also analyzed by measuring nitric oxide and cytokines in the supernatants of mouse peritoneal macrophages. Mouse peritoneal macrophages stimulated with WGAR-CP produced nitric oxide and various cytokines such as interleukin (IL)-6 and IL-12 in a dose-dependent manner. In conclusion, WGAR-CP may have immuno-modulatory activities by activating a complementary system and macrophages, which produces cytokines.
Article
Effects of red ginseng acidic polysaccharides (RGAP) on immune system were studied. The proliferation of spleen cells was induced by RGAP treatment per se. Cotreatment of lipopolysaccharide (100 μg/ml) or concanavalin A (1 μg/ml) with RGAP further stimulated the spleen cell proliferation. BALB/c mice treated with RGAP showed a slight splenic hyperplasia and increased antibody forming cell response to sheep red blood cells. Flow cytometry analysis revealed an influx of macrophages in the mice treated with RGAP.
Article
Ginseng components were examined for their ability to modify immunotoxicity of cyclophosphamide. Ginseng polysaccharide fraction (FO, 300 mg/kg) inhibited decreases in the ratio of spleen to body weight, white blood cells (WBC) count and the number of plaque forming cells (PFC) induced by cyclophosphamide (50 mg/kg, i.p.), and increased these variables in normal mice. Ginseng saponin fraction (50 mg/kg) showed to increase hemoglobin content as well as the number of PFC/spleen in normal mice. on the other hand, Panaxytriol (20 mg/kg) Prevented decrease in mc count by cyclophos phamide. Neither saponin fraction nor panaxytriol had any significant effect on the number of PFC and antibody titers in cyclophosphamide-treated mice. These results suggest that ginseng polysaccharine fraction may reduce the immunotoxicity of cyclophosphamide and may be effective in stimulating immune function in normal mice.
Article
Purpose: The purpose of this study was to investigate the effects of Prunellae Spica Water Extract(PSE) on immune response in macrophage cells. Methods: We had devided two group the one is normal group; not treated with PSE, and the other is experimental group; treated with PSE. We measured the cell viability of PSE on RAW 264.7 cells and investigated production of nitric oxide(NO) and cytokines such as interleukin(IL)-, IL-6 and tumor necrosis factor (TNF)- with sample PSE. Results: 1. Cell viability of PSE on RAW 264.7 cells was significantly decreased in both 24 hr and 48 hr incubation. 2. NO production of PSE on RAW 264.7 cells was significantly increased in both 24 hr and 48 hr incubation. 3. IL- production of PSE on RAW 264.7 cells was significantly increased under concentration over in 24 hr incubation. 4. IL-6 production of PSE on RAW 264.7 cells was significantly increased under concentration over in 24 hr incubation. 5. TNF- production of PSE on RAW 264.7 cells was significantly increased under concentration over in 24 hr incubation. Conclusion: NO, IL-, IL-6 and TNF- production of PSE on RAW 264.7 cells was significantly increased. This study suggest that PSE stimulates the macrophage and enhances the immune response.