Treatment of a ridge atrophy and two peri-implant defects with equine bone and an equine pericardium membrane: clinical and histological outcome

Full text

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Published on: Stomatolog, 2013, 19 (1): pg.32-37
Treatment of a ridge atrophy and two peri-implant defects with equine bone and an
equine pericardium membrane: clinical and histological outcome.
Danilo Alessio Di Stefano*
*Private practice, Milan, Italy and Department of Dentistry, Vita e Salute San Raffaele
University, Milan, Italy
Corresponding Author:
Danilo Alessio Di Stefano , Via Civitali 40, 20148 Milano, Italy
Fax +39 02 48705638
e-mail: distefano@centrocivitali.it
Word count: 2866
Number of figures: 9 (19)
Number of tables: 0
Running title: Clinical and histological results using equine bone substitutes and membranes.
Summary: Treatment of a ridge atrophy two and peri-implant dehiscences in the upper
maxilla with equine bone and an equine pericardium membrane, along with results of
histological analysis of a bone core taken from the augmentation site after four months of
healing.

2
Abstract
Objective: While deproteinized bovine bone and bovine membranes have been well studied
and can yield good results when used to treat bone defects and peri-implant dehiscences,
enzymatically deantigenated equine bone and equine membranes has emerged as possible
alternative biomaterials. The objective of this study is the clinical and histological assessment
of such materials. Methods: Enzymatically deantigenated equine bone and an equine
pericardium membrane were used to restore peri-implant defects remaining after the
placement of two osseointegrated implants in the upper maxilla and a concomitant ridge
atrophy. All defects were grafted with a mixture of autogenous and equine bone and covered
with an equine pericardium membrane. After four months a bone core sample was obtained
from the grafted site. Results: Four months after implant placement a good bone regeneration
could be observed. A prosthesis was delivered three months later providing functional and
aesthetic rehabilitation. Peri-implant bone levels were maintained over the four years follow
up. Histological analysis of the bone core revealed that the graft material had undergone
nearly complete remodelling, and a fair amount of newly formed vital bone was present at the
time of sample collection. Conclusions: The deantigenated equine bone and pericardium
membrane acted as effective graft and barrier for guided bone regeneration to perform a
vertical and horizontal bone augmentation of an atrophic ridge and of two peri-implant
defects, leading to a more than satisfactory aesthetic outcome.
Key Words: bone grafting, peri-implant defect, bone regeneration, biocompatible
biomaterials

3
Introduction
Implant rehabilitation has become over years a standard approach to the partially or fully
edentulous patient. As implant placement is spreading, also an increasing demand for long-
term highly aesthetic results is being observed. Consequently, an augmented knowledge and
awareness of all the factors1 that contribute to the long term successful management of soft
tissues, namely gingiva and papillae, has highlighted the importance of a correct management
of the underlying bone levels2. This calls for bone grafting also of apparently small defects as
limited loss of bone height and implant threads exposure3 in one-step implant placement
surgeries.
As far as the grafting material is concerned the properties of autogenous bone have long led it
to be considered the gold standard for bone regeneration. An additional surgical procedure,
though, with increased morbidity,4 is always required to obtain the graft, and there may be
insufficient quantities of autogenous bone for grafting large or multiple defects.5 As an
alternative, homologous bone, heterologous bone, and alloplastic materials, have been used
alone or in combination.6-15
Anorganic bovine bone particles have good osteoconductive properties but may also have a
low resorption capacity.16 Recently, an enzymatically deantigenated form of equine bone was
introduced for use as a scaffold in bone regeneration of different bone defects.17-20 The
enzymatic process used to clean this material preserves type I bone collagen component in its
native, non-denatured, state, and this should allow an improved bone-regeneration process,
given the well-known biological properties of this molecule.21-28
When osteoclasts were cultured over such equine, enzymatically deantigenated and collagen-
preserving bone substitutes,29 their adhesion and activity was significantly higher than that
found for osteoclasts grown over deproteinized bovine bone.30
When sites augmented with equine bone alone were compared to others augmented with the

4
same material added with autogenous bone, immunohistochemical tests showed no
differences between the two as far as the expression of some markers of bone regeneration
(NOS1, NOS2 and VEGF) were concerned.31
At the present time no published data are available about the use of enzyme-deantigenated
equine bone for the treatment of peri-implant defects. We decided therefore to present a case
of a patient showing partial implant threads exposure after placement and a significant ridge
atrophy, which were treated by grafting enzymatically deantigenated equine bone, containing
native type I collagen, in association with an equine pericardium membrane. A bone biopsy
was also collected and underwent histological and histomorphometric analysis to assess the
bone substitute remodelling quality and extent. Controls followed up to four years after
surgery.

5
Materials and methods
Dental implant surgery
The patient was a healthy but smoking 37-year-old woman who presented missing teeth at
positions 12 - 14 and a vertical and horizontal bone atrophy at the same positions, the vertical
one being particularly marked at position 12 (Figures 1 and 2). Tooth 11 should have been
extracted to get the proper ridge bone peak level, but the patients refused to.
A one-step treatment plan was therefore developed that called for the placement of two
osseointegrated implants and the restoration of the bone deficit by grafting a bone substitute
and protecting the grafted site with a guided bone regeneration membrane. The plan called
also for an artificial papilla being placed at element 11, according to the patient’s will, who
provided informed consent.
Antibiotic prophylaxis (Amoxicillin/Clavulanic acid, Augmentin, Glaxo-SmithKline, Verona,
Italy), 2 g, 1 hour before surgery and then every 12 hours for 7–9 days, was initiated and the
patient was subjected to mouth rinses with Chlorhexidine 0.2% (Corsodyl, Glaxo-
SmithKline). Also Nimesulide (Aulin, Roche, Milano, Italy) 100 mg was administered, 1
hour before surgery and then twice a day for 5 days. Local anaesthetic was administered by
means of an infiltration with 1% Articaine with adrenaline 1:100000.
A full-thickness trapezoidal mucoperiosteal flap was detached to expose the bone ridge. After
preparing a proper template, two osseointegrated titanium implants (Prime®, Prodent, Milan,
Italy) were placed. Autogenous bone was then collected from the exposed ridge, with a bone
scraper (Safescraper® Twist, Meta, Reggio Emilia, Italy) and mixed with equine enzyme-
deantigenated bone granules (Osteoxenon® Mix Bone Granules, Bioteck, Arcugnano, Italy)
in a 30:70 (autogenous : heterologous) ratio. The peri-implant gaps and the atrophic bone
were then grafted with the mixture. A resorbable pericardium membrane (Heart®, Bioteck,

6
Arcugnano, Italy) was then shaped with scissors and positioned to cover the graft site.
Finally, complete flap closure was achieved (Fig. 3a-e).
Soft tissues healed uneventfully (Fig 4) and sutures were removed at 10 days. The patient
healed uneventfully (Fig. 5a). Four months later, after antibiotic prophylaxis as already
described, a new full-thickness trapezoidal flap was elevated to allow a careful clinical
inspection of the alveolar ridge and a biopsy sample was taken at the regenerated site, using a
trephine with an external diameter of 3 mm (Fig. 5b). Healing screws were positioned (Fig.
5c). After soft tissue conditioning (Fig 6a-b) provisional restoration was placed, and three
months later the final prostheses was delivered, comprising the artificial papilla at position 11
(Fig. 7a-b), achieving final patient rehabilitation. The patient was recalled each year for the
following four years for follow up controls.
Histological analysis
The bone biopsy was fixed in 4% formalin and decalcified for 21 days in a solution
containing Sodium Formiate 0.76 M and Formic Acid 1.6 M (Panreac Quimica, Barcelona,
Spain). Subsequently, the sample was dehydrated in graded ethanol, and embedded in
paraffin. This procedure allowed a rapid infiltration of the tissue and the achievement of the
right softness for cutting, with only minimal artifactual shrinking, thus providing a tissue
morphology which is representative of the in vivo bone features. 5 μm thick sections were
achieved, mounted on slides and haematoxylin-eosin stained and observed at 3.5x
magnification.

7
Results
Clinical outcome
The patient did not present any clinical symptoms during follow up controls. At the moment
of bone core collection the bone ridge volume appeared fully augmented, and no volume loss
was observed, with respect to the one grafted four months before (Fig. 5b). All follow-up
radiographs taken up to 4 years after implant placement showed complete maintenance of the
peri-implant bone levels (Fig. 9).
Histological results
A quite extended bone structure could be observed. Bone substitute residual particles could
be identified as areas, even not showing marked basophilia, in which bone lacunae were
devoid of osteocytes. The bone substitute residual particles were in close contact, with no
gaps, with the alive bone tissue (eosin-stained and osteocytes-rich). A small amount of
connective tissue was observed. Neither cartilage-like tissue nor inflammatory reactions were
observed. (Fig. 8).

8
Discussion
Both the bone atrophy and the peri-implant defects were regenerated effectively by grafting
the equine bone substitutes and the equine pericardium membrane. Histological findings
showed that the biomaterials grafted were biocompatible, as confirmed by the absence of any
inflammatory cell, and by the fact that bone graft particles were always contacting closely
newly-formed bone areas. This indicates also a good osseointegration of the bone graft
particles with the newly formed bone. The absence of cartilage tissue was consistent with a
direct ossification mechanism.
These results are consistent with previous published data showing the remodelling of these
equine bone substitutes to occur at a physiological rate, and allowing for implant insertion in
newly-formed bone only, or in newly-formed bone containing only a small amount of
residual particles.17,20,31 This behaviour, different from the one observed when bovine
deproteinized bone had been used, where slow or nearly absent remodelling is observed,
confirms what already observed in earlier studies.32-34 This could be explained by the
different processing anorganic bovine bone and enzyme-deantigenated equine bone are
subjected to be made deantigenic. Anorganic bovine bone, in fact, is thermally-treated at a
temperature greater than 600°C that eliminates type I bone collagen, while enzymatic
deantigenation occurs in physiologic conditions (37°C), thus preserving type I bone collagen
unaltered. This could possibly explain why osteoclast adhesion is somewhat impaired on
thermally-treated bovine bone, while it is not on enzyme-treated bone tissue.29-30
Our data show that, at four months from the graft surgery, a fair amount of the bone graft had
been replaced by autogenous, newly-formed bone. This condition, unlike bone regeneration
with anorganic bovine bone where graft particles are still present after years, mimics more
closely the native bone state and could represent a clinical benefit since, theoretically, could
allow to perform early implant placement and early implant loading,

9
Conclusions
Equine enzyme deantigenated bone substitutes and equine pericardium membranes are
biocompatible and allowed an effective management of a maxillary bone atrophy and two
peri-implant dehiscences, leading to a more than satisfactory aesthetic outcome.

10
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13
Figures
Fig. 1a-b: Panoramic radiograph and TC before surgery. Teeth from 12 to 14 are lost and
both a vertical and a horizontal bone loss are present.
Fig. 2: Pre-surgical intra-oral view.
Fig. 3: Implant placement and grafting surgery. A mixture of autogenous and equine bone
(Osteoxenon Mix Granules, Bioteck, Italy) is grafted and then covered with a pericardium
membrane (Heart, Bioteck, Italy).

14
Fig. 4: Suture healing.
Fig. 5: Soft tissues healing; site inspection showing the position where the bone core had
been collected and cover screws placed.
Fig. 6: Soft tissue and papillae conditioning.

15
Fig. 7: Final restoration. Even if an artificial papilla had to be placed according to the will of
the patient, the final aesthetic result can be regarded as satisfactory.
Fig. 8. (3,5 x;): Hematoxylin-eosin staining of the whole sample. A large amount of of
newly-formed bone and only small graft residuals can be observed.
Fig 9. Four-year follow up, intra-oral X- ray, showing the preservation of peri-implant bone
levels.

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Pubblicato su: Stomatolog, 2013, 19 (1): pg.32-37
Trattamento di un caso di atrofia crestale e due difetti peri-implantari mediante l’utilizzo di
sostituti ossei e di una membrana in pericardio di origine equina: risultato clinico ed
istologico.
Danilo Alessio Di Stefano*
*Libero professionista, Milano, Italia - Dipartimento di Odontoiatria, Università Vita e Salute San
Raffaele, Milano, Italia.
Contatti autore:
Danilo Alessio Di Stefano, via Civitali 40, 20148 Milano, Italia
Fax: +39 02 48705638
e-mail: distefano@centrocivitali.it
Parole: 1789
Numero di figure: 9 (19)
Numero di tabelle: 0
Titolo breve: Risultati clinici ed istologici nell’utilizzo di sostituti ossei e membrane di origine
equina.
Sommario: Trattamento di un caso di atrofia crestale e di due deiscenze peri-implantari nel
mascellare superiore mediante l’utilizzo di un sostituto osseo e una membrana di pericardio
entrambi di origine equina. Analisi istologica di una biopsia ossea prelevata dal sito aumentato dopo
quattro mesi dall’innesto.

2
Riassunto
Obiettivo: L’osso deproteinizzato e le membrane di origine bovina sono entrambi ampiamente
studiati e possono portare a buoni risultati nel trattamento di difetti ossei e di deiscenze peri-
implantari. Recentemente l’osso deantigenato per via enzimatica e le membrane di origine equina
sono emersi come possibili biomateriali alternativi. Obiettivo di questo studio è la valutazione
clinica ed istologica di tali materiali. Metodi: Osso equino deantigenato per via enzimatica e una
membrana in pericardio equino sono stati utilizzati per il trattamento di un’atrofia crestale e di
alcuni difetti peri-implantari a seguito del posizionamento di due impianti osteointegrati nel
mascellare superiore. Tutti i difetti sono stati innestati con una miscela di osso autologo ed
eterologo e protetti con una membrana in pericardio equino. Dopo quattro mesi è stato prelevato un
campione osseo dal sito di innesto. Risultati: Quattro mesi dopo il posizionamento implantare si è
osservata una buona rigenerazione ossea. La protesi definitiva è stata consegnata tre mesi dopo al
fine di ottenere la riabilitazione estetica e funzionale. Il livello osseo peri-implantare è rimasto
costante nel corso dei quattro anni di follow-up. Le analisi istologiche dei campioni ossei prelevati
hanno evidenziato come il materiale innestato sia stato soggetto ad un rimodellamento pressoché
totale, e come al tempo del prelievo fosse presente una buona quantità di osso vitale neoformato.
Conclusioni: L’osso equino deantigenato e le membrane in pericardio equino sono risultati essere,
rispettivamente, innesti e barriere efficienti nella rigenerazione ossea guidata nell’ambito
dell’incremento osseo orizzontale e verticale di una cresta atrofica e di due difetti peri-implantari,
portando ad un risultato estetico più che soddisfacente.
Parole chiave: innesti ossei, difetti peri-implantari, rigenerazione ossea, biomateriali biocompatibili

3
Introduzione
Negli anni la riabilitazione implantare è divenuta l’approccio standard nei pazienti con edentulie
parziali o totali. Parallelamente al diffondersi del posizionamento implantare, si è osservato un
aumento nelle richieste di risultati estetici a lungo termine. Conseguentemente a ciò si è diffusa una
maggiore conoscenza ed attenzione nei confronti di tutti i fattori1 che contribuiscono al successo a
lungo termine dell’estetica dei tessuti molli (gengiva e papille), evidenziando l’importanza di una
corretta gestione dei livelli ossei sottostanti2. Questa consapevolezza ha portato ad una richiesta di
innesti ossei anche per difetti apparentemente di piccole dimensioni come diminuzioni contenute di
livelli ossei e deiscenze implantari3 nelle chirurgie di posizionamento implantare one-step.
Per quanto concerne il materiale da innesto, le proprietà dell’osso autologo l’hanno portato ad
essere a lungo considerato il “golden standard” della rigenerazione ossea. Il suo impiego richiede
sempre un’ulteriore chirurgia, con conseguente aumento di morbilità 4, e vi è sempre la possibilità
di non riuscire ad ottenere una quantità di osso autologo sufficiente per il suo impiego in difetti
ampi o multipli. Come alternativa sono stati utilizzati, da soli o in combinazione, osso omologo,
osso eterologo e materiali alloplastici6-15.
I granuli di osso bovino inorganico possiedono buone capacità osteoconduttive ma possono
presentare una bassa capacità di riassorbimento16. Recentemente l’osso equino deantigenato per via
enzimatica è stato introdotto come supporto (scaffold) per la rigenerazione ossea di diverse
tipologie di difetti ossei17-20. Il processo enzimatico utilizzato per eliminare le componenti
antigeniche da questo materiale lascia inalterato il collagene di tipo I nella sua forma nativa, non
denaturata. Questa molecola, viste le sue ben note proprietà biologiche 21-28, dovrebbe stimolare il
processo di rigenerazione ossea.
Di fatto, l’adesione e l’attività cellulare di osteoclasti coltivati su sostituti ossei equini deantigenati
enzimaticamente e a collagene preservato29 sono risultate significativamente più elevate rispetto a
quelle di osteoclasti cresciuti su osso bovino deproteinizzato30.

4
Inoltre, paragonando siti aumentati mediante l’utilizzo di solo osso equino con siti aumentati con lo
stesso materiale miscelato ad osso autologo, analisi immunoistochimiche non hanno evidenziato
differenze nell’espressione di alcuni marker per la rigenerazione ossea (NOS1, NOS2, e VEGF)31.
Ad oggi non sono noti dati pubblicati sull’utilizzo di osso equino deantigenato enzimaticamente nel
trattamento di difetti peri-implantari. Abbiamo quindi deciso di presentare il caso di una paziente
che presentava una deiscenza implantare e una significativa atrofia crestale. Entrambi i difetti sono
stati innestati con osso equino deantigenato per via enzimatica e a collagene I preservato, in
combinazione con una membrana in pericardio equino. Sono state inoltre effettuate analisi
istologiche ed istomorfometriche su una biopsia ossea al fine di valutare la qualità e l’entità del
rimodellamento del sostituto osseo utilizzato. Sono stati eseguiti controlli di follow-up fino ai
quattro anni successivi all’intervento.
Materiali e metodi
Chirurgia implantare
La paziente, una donna sana di 37 anni, fumatrice, presentava edentulia e atrofia crestale, verticale
ed orizzontale, nelle posizioni 12-14. L’atrofia verticale era particolarmente pronunciata in
posizione 12 (Figura 1 e 2). Si sarebbe dovuto estrarre il dente in posizione 11 per ottenere un
livello adeguato di picco osseo crestale, ma la paziente ha rifiutato questa opzione.
È stato quindi sviluppato un piano one-step per il posizionamento di due impianti osteointegrati ed
il trattamento dei deficit ossei mediante l’innesto di sostituti ossei e una membrana per
rigenerazione ossea guidata. Il piano prevedeva inoltre il posizionamento di una papilla artificiale in
posizione 11, in accordo col volere della paziente, la quale ha fornito il consenso informato.
La profilassi antibiotica con Amoxicillina/Acido Clavulanico (Augmentin, Glaxo-SmithKline,
Verona, Italia), 2 g è iniziata 1 ora prima dell’intervento ed è successivamente proseguita ogni 12
ore per 7-9 giorni. Prima dell’inizio dell’intervento, la paziente ha eseguito uno sciacquo orale con
Clorexidina 0,2% (Corsodyl, Glaxo-SmithKline, Verona, Italia). Sono stati somministrati 100 mg di

5
Nimesulide (Aulin, Roche, Milano, Italia) 1 ora prima dell’intervento e poi due volte al giorno per 5
giorni. L’anestesia locale è stata effettuata mediante infiltrazione di Articaina 1% con Adrenalina
1:100000.
È stato eseguito un lembo trapezoidale a pieno spessore per esporre la cresta ossea. Dopo la
preparazione di una apposita mascherina sono stati posizionati due impianti (Prime®, Prodent,
Milano, Italia). Tramite raschietto osseo (Safescraper® Twist, Meta, Reggio Emila, Italia) è stato
raccolto dell’osso autologo dalla cresta esposta, poi miscelato in rapporto 30:70
(autologo:eterologo) con granuli di osso equino deantigenati per via enzimatica (Osteoxenon® Mix,
Bioteck, Arcugnano, Italia). I difetti sono quindi stati innestati con la miscela. A copertura del sito
innestato è stata posizionata una membrana riassorbibile in pericardio (Heart®, Bioteck, Arcugnano,
Italia) dopo averla preventivamente sagomata. Infine si è proceduto alla chiusura dei lembi (Figura
3 a-e).
I tessuti molli sono guariti senza complicazioni (Figura 4) e le suture sono state rimosse dopo 10
giorni dall’intervento. Non si sono osservate complicanze durante il periodo di guarigione (Figura
5a). Quattro mesi dopo, seguendo una profilassi antibiotica come quella sopra descritta, è stato
eseguito un nuovo lembo a pieno spessore per permettere un’attenta ispezione clinica della cresta
alveolare. Tramite una fresa carotatrice con diametro esterno di 3 mm (Figura 5b) è stato prelevato
un campione osseo dal sito rigenerato. Sono state quindi posizionate le viti di guarigione (Figura
5c). Dopo il condizionamento dei tessuti molli (Figura 6 a-b) è stata posizionata una protesi
temporanea, e tre mesi dopo è stata consegnata la definitiva, comprensiva della papilla artificiale in
posizione 11 (Figura 7 a-b), ottenendo dunque la riabilitazione finale della paziente. Per i seguenti
quattro anni la paziente è stata richiamata una volta all’anno per i controlli di follow-up.
Analisi istologica
Il campione è stato fissato in Formalina al 4% e decalcificato per 21 giorni in una soluzione
contenente Formiato di Sodio 0,76 M e Acido Formico 1,6 M (Panreac Quimica, Barcellona,
Spagna). Successivamente il campione è stato disidratato in Etanolo a concentrazioni crescenti ed

6
incluso in Paraffina. Questa procedura ha permesso una rapida infiltrazione dei tessuti e
l’ottenimento della consistenza ottimale per il taglio, minimizzando gli artefatti e fornendo una
morfologia rappresentativa delle caratteristiche dell’osso in vivo. Sono state ottenute sezioni dello
spessore di 5 μm che, dopo essere state montate su vetrino, sono state colorate con Ematossina-
Eosina e osservate ad un ingrandimento di 3,5x.
Risultati
Esito clinico
Durante il follow up post-operatorio immediato la paziente non ha presentato alcuna sintomatologia
rilevante. Al momento del prelievo osseo la cresta ossea appariva completamente rigenerata, e non
si è osservata alcuna perdita volumetrica rispetto a quanto innestato quattro mesi prima (Figura 5b).
Tutte le radiografie di follow-up effettuate durante i quattro anni successivi all’inserimento
implantare hanno confermato il mantenimento del livello osseo peri-implantare (Figura 9).
Risultati istologici
È stata osservata una struttura ossea piuttosto estesa. Le particelle residue del sostituto osseo,
sebbene non spiccatamente basofile, sono state individuate come aree caratterizzate da lacune ossee
prive di osteociti, a stretto contatto col tessuto osseo vitale (marcato dall’Eosina e ricco in
osteociti). È stata individuata una piccola quantità di tessuto connettivo. Non sono stati osservati né
tessuti simil-cartilaginei né infiltrati infiammatori (Figura 8).
Discussione
Sia l’atrofia ossea che i difetti peri-implantari sono stati rigenerati efficacemente innestando
sostituti ossei e una membrana in pericardio di origine equina. Le analisi istologiche hanno
evidenziato l’assenza di cellule infiammatorie e lo stretto contatto tra le particelle di sostituto osseo
ed il tessuto osseo neoformato, indicando come questi materiali siano perfettamente biocompatibili.

7
Si evidenzia inoltre buona osteointegrazione tra le particelle di sostituto osseo e l’osso neoformato.
L’assenza di tessuti cartilaginei è coerente con un meccanismo di ossificazione diretta.
Questi risultati sono in accordo con quanto precedentemente pubblicato ed evidenziano come il
rimodellamento di questi sostituti ossei avvenga in tempi fisiologici, permettendo così l’inserimento
implantare nel solo osso neoformato o al limite caratterizzato da una piccola quantità di particelle
residue17, 20, 31. Questo comportamento conferma quanto già osservato in studi preliminari e si
differenzia notevolmente da quanto evidenziato nel caso dell’utilizzo di osso bovino
deproteinizzato, dove il rimodellamento è risultato lento o quasi assente32-34. Questo fenomeno
potrebbe spiegarsi col diverso metodo di deantigenazione utilizzato per l’osso bovino inorganico e
l’osso equino deantigenato enzimaticamente. L’osso bovino inorganico, essendo trattato per via
termica a temperature superiori ai 600°C, è infatti interamente privo di collagene di tipo I. Il
trattamento di deantigenazione enzimatica avviene invece in condizioni fisiologiche (37°C),
permettendo di preservare inalterata questa molecola. Tutto ciò potrebbe spiegare perché l’adesione
osteoclastica sull’osso bovino trattato termicamente sia in qualche modo compromessa, mentre non
lo sia sul tessuto osseo trattato enzimaticamente29-30.
I nostri dati mostrano come, a quattro mesi dalla chirurgia, un’elevata quantità di innesto osseo sia
stata sostituita da osso autologo neoformato. Questa condizione, a differenza della rigenerazione
ossea che si ottiene con osso bovino inorganico dove particelle di biomateriale sono ancora presenti
dopo anni, mima da vicino lo stato dell’osso nativo e potrebbe rappresentare un reale beneficio
clinico permettendo, in linea teorica, di procedere ad inserimenti e carichi implantari anticipati.
Conclusioni
I sostituti ossei di origine equina deantigenati enzimaticamente e le membrane in pericardio equino
si sono dimostrati biocompatibili e hanno permesso la gestione efficace di un’atrofia ossea
mascellare e di due deiscenze peri-implantari, portando ad un risultato estetico più che
soddisfacente.

8
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10
Figure
Fig. 1a-b: Radiografia panoramica e TC pre-intervento. I denti in posizione da 12 a 14 sono
mancanti ed è presente una perdita ossea sia orizzontale che verticale.
Fig. 2: Situazione pre-intervento.
Fig. 3: Posizionamento implantare ed esecuzione dell’innesto. Una miscela di osso autologo e di
osso equino (Osteoxenon Mix Granuli, Bioteck, Italy) è stata innestata e quindi protetta con una
membrana in pericardio (Heart, Bioteck, Italy).

11
Fig. 4: Guarigione delle suture.
Fig. 5: Guarigione dei tessuti molli; l’ispezione del sito permette di osservare il punto in cui è stato
prelevato il campione osseo e le viti tappo in posizione.
Fig. 6: Condizionamento dei tessuti molli e delle papille.

12
Fig. 7: Riabilitazione definitiva. Sebbene sia stato necessario posizionare una papilla artificiale, in
accordo col volere della paziente, il risultato estetico finale può considerarsi soddisfacente.
Fig. 8. (3,5 x;): Colorazione con Ematossina-Eosina dell’intero campione. Si può osservare una
grande quantità di osso neoformato e solo piccoli residui del materiale innestato.
Fig 9. Il follow-up a 4 anni, effettuato mediante radiografia endo-orale, mostra il mantenimento dei
livelli ossei peri-implantari.