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MÉTODO PARA CUANTIFICAR SUSPENSIONES DE ESPORAS DE HONGOS Y OTROS ORGANISMOS

Authors:
  • Oil palm research Center of Colombia , Cenipalma

Abstract

El hemocitómetro (cámara de Neubauer) es un instrumento ideado para contar células sanguíneas y se puede usar también para estimar la concentración de conidias en una suspensión acuosa de esporas (Figura 1). El reglaje del hemocitómetro en su base consiste de 9 mm 2. Las líneas limítrofes son las líneas centrales en grupos de a tres. El milímetro cuadrado localizado en el centro, está formado por 25 grupos cada uno de 16 pequeños cuadrados, cada grupo separado por una triple línea, siendo la del medio el limite. Los cuatro milímetros cuadrados de las esquinas están divididos en 16 pequeños cuadros (Figura 2). Estas diferencias en las divisiones se hacen para ayudar en la orientación cuando se esté contando. La altura del área del contaje cuando se coloca el cubreobjetos es de 0,100 mm, de tal manera que el volumen de la suspensión sobre un milímetro cuadrado es de 0,1 rnm". Los hemocitómetros son dobles o sea que tienen dos áreas sobre las cuales se puede efectuar el conteo están localizadas una a cada lado de las áreas planas levantadas en la sección central del hemocitómetro.
UNIVERSIDAD NACIONAL - PALMIRA
CURSO PATOLOGIA DE INSECTOS
Alex Enrique Bustillo Pardey
MÉTODO PARA CUANTIFICAR SUSPENSIONES DE ESPORAS DE
HONGOS Y OTROS ORGANISMOS
El hemocitómetro (cámara de Neubauer) es un instrumento ideado para contar células
sanguíneas y se puede usar también para estimar la concentración de conidias en una
suspensión acuosa de esporas (Figura 1).
El reglaje del hemocitómetro en su base consiste de 9 mm2.Las líneas limítrofes son
las líneas centrales en grupos de a tres. El milímetro cuadrado localizado en el centro,
está formado por 25 grupos cada uno de 16 pequeños cuadrados, cada grupo
separado por una triple línea, siendo la del medio el limite. Los cuatro milímetros
cuadrados de las esquinas están divididos en 16 pequeños cuadros (Figura 2). Estas
diferencias en las divisiones se hacen para ayudar en la orientación cuando se esté
contando. La altura del área del contaje cuando se coloca el cubreobjetos es de 0,100
mm, de tal manera que el volumen de la suspensión sobre un milímetro cuadrado es de
0,1 rnm". Los hemocitómetros son dobles o sea que tienen dos áreas sobre las cuales
se puede efectuar el conteo están localizadas una a cada lado de las áreas planas
levantadas en la sección central del hemocitómetro.
I
7~
CUBRE OBJETO GRU:so
I
'-----,
Figura 1. El hemocitómetro, compuesto de dos áreas de conteo en la sección central y
una laminilla gruesa.
t
3
3
3
3
:1
:1
t-
1mm
Figura 2. Reglaje del hemocitómetro en cada una de las áreas de conteo.
-t-
Imm
-t--
Imm
--t
La pipeta de dilución está arbitrariamente calibrada en 0,1 unidades desde la punta.
Para usarla en suspensiones de esporas, la pipeta se llena hasta la marca 1,O Y luego
se diluye hasta la marca 11. Debido a que virtualmente toda la muestra se vierte en el
bulbo por el fluido de dilución, dejando la sección de la punta que contiene 1,0 del fluido
de dilución, la dilución de la suspensión se calcula en base a la dilución de 1,0 a 10,0, o
sea que el factor de dilución es 10. Para números extremadamente grandes de esporas
se toma una muestra de 0,5 unidades, siendo así el factor de dilucido 20.
PROCEDIMIENTO
1. Para preparar la muestra a contar se toma el tubo que contiene el hongo al cual
se le adiciona 10 mi de agua destilada esterilizada y se agita durante dos
minutos mediante movimientos circulares.
2. Luego se decanta la suspensión en un tubo de vidrio estéril. Adicione cuatro
gotas de lactofenol, Agite el tubo de nuevo y déjelo quieto durante 5 mino Agite
de nuevo el tubo durante 2 mino Luego colecte 2 mi de la suspensión en una
pipeta y transfiéralo a un vial.
3. Tome la pipeta de dilución, sosténgala en una posición horizontal y coloque su
punta en la suspensión. Mueva la pipeta hacia una posición vertical a medida
que el fluido alcanza el nivel deseado.
4. No intente aspirar la muestra en la pipeta, deje obrar la capilaridad de la pipeta.
Mucho cuidado se debe ejercer en obtener una medida exacta de la muestra, ya
que cualquier error aquí introduce un error muy grande en el valor final contado.
5. Después de colectar la muestra, limpie la punta de la pipeta con el fluido de
dilucido hasta la marca encima del bulbo. Sostenga la pipeta a lo largo entre los
dedos indice y pulgar y agítela durante dos minutos para obtener una mejor
dispersión de las conidias.
6. Luego descarte tres gotas y coloque la cuarta en el borde del cubreobjetos del
hemocitómetro en tal posición que sea succionado hacia la cámara de conteo.
7. Evite que la cámara se inunde ya que introduce error en la cuenta. Después de
llenar satisfactoriamente el área de contaje, (ambos lados), se debe limpiar
inmediatamente la pipeta descartando el resto del fluido y lavarla con clorox
agua destilada, alcohol y éter y luego secarla con papel de lentes.
8. Después de llenar el área de contaje, se deja quieta durante 1 a 2 min, con el fin
de que las conidias se sedimenten en la base del hemocitómetro.
9. Luego se observa al microscopio usando el objetivo 10X. Se ajusta la luz con el
fin de que las líneas sean completamente visibles.
10.Se cuentan todas las conidias en todas las áreas de los custro milímetros
cuadrados de las esquinas y del centro.
11.En el caso de que resulten conidias sobre las líneas límites, se cuentan aquellas
que están depositadas sobre los límites de abajo y los de la derecha, pero no en
los de arriba y de la izquierda. Registre el número de células en cada milímetro
cuadrado.
12.Haga un conteo en cada uno de los dos lugares de conteo del hemocitómetro.
13.Cuando termine la cuenta, limpie el cubreobjetos y el hemocitómetro con clorox
agua destilada, alcohol y éter y con papel de lentes seque todas las áreas.
Para el cálculo de las cuentas se usa la siguiente fórmula:
Número total de células =(No. de células x dilución x 104)
I
No. áreas mm2contadas
Este cálculo estima el número
I
mi de suspensión. Luego, multiplique éste resultado por
el número de mililitros usados en cualquier prueba para su cuantificación.
... Spore counting was performed with a Neubauer chamber for adequate concentration required. (Bustillo, 2010). Microculture: It was carried out at CENSALUD and consisted of preparing a sterile wet chamber: a petri dish, at the bottom of which sterile water is placed and a V-shaped glass rod, on which the slide is placed, and on top of it the block of the Saboraud culture medium. ...
Article
Abstract: Morphological characterization and molecular DNA techniques allowed the identification of the Aspergillus sample sent to MACROGEN SOUTH KOREA. Objective: To perform phenotypic and genotypic characterization of the genus Aspergillus by the Next-Generation Sequencing method. Methodology: The type of study is exploratory and experimental. It was carried out in two phases: first in the collection of seeds of Caesalpinia coriaria and second an initial macroscopic and microscopic characterization of the Aspergillus isolate was carried out in 2006, a notarial act was carried out 2007, studies of simple microscopy and scanning electron microscopy and PCR of the fungus found in México 2008 and published in the journal La Universidad in 2008, then the extraction of gDNA, qPCR, cDNA was performed in 2024 at MACROGEN INC. by Metagenome Shotgun Sequencing Reports. Results: The gDNA genome was extracted obtaining a maximum concentration of 12.297 ng/ul, volume 30 ul, total amount 0.369 and DIN 6.4 maximum level 8732 sample intensity for 15000 bp, the quantum qDNA was obtained at 624 bp at a concentration of 103.24 nM and 41.87 ng/ul and cDNA. From the gDNA extraction of the TapeStation gDNA Screen, a maximum concentration of 12.297 ng/ul, volume 30 ul, total quantity 0.369 and DIN 6.4 maximum level 8732 sample intensity for 15000 bp in quality control was obtained. qPCR 624 bp were obtained at a concentration of 103.24 nM and 41.87 ng/ul with the TruSeq Nano DNA library (350_META).cDNA library 33 library kits were used. Total, of bases obtained were 11,705,895,990 bp, total, of readings were 77,522,490. GC nucleotide content % 49.7 and AT % 50.30, GC base content was 49.7% and AT was 50.3, Metric base content Q 20 :95.1 and Q 30: 88.3, Q30 cycle data quality high value. FASTQ and FASTA formats were used for encoding and full base-pair sequencing. Raw data Value. 38,761.245 N, adapter quality and trimming. (Quality and adapter trim.) was 32,535,420, Removal of contaminants was 30,961,740, Quality Control or qcPassed of 79.88 indicates that it was accepted as good performance of the process. Aspergillus neoniger was reported from the Krona taxonomy, Heatmaps specie report neoniger. Conclusions: Aspergillus neoniger was found by the NGS sequencing method, but in previous studies in 2006 it was named uessalvadoriensis. Palabras clave. Aspergillus sp, Nacascol, uessalvadoriensis,neoniger
... El porcentaje de inhibición de crecimiento micelial se obtuvo con la fórmula propuesta por Ezziyyani et al. (2004) (% inhibición = crecimiento micelial del testigo -crecimiento micelial del tratamiento / crecimiento micelial del testigo x 100). Mientras que, para el conteo de esporas, se utilizó una cámara de Neubauer, siguiendo el método para cuantificación de suspensión de esporas de hongos, descrito por Bustillo (2010). Donde se evaluaron, las dosis de 1 000, 3 000 y 5 000 ppm para gobernadora, sola y con nanopartículas; mientras que para mostaza fueron las dosis de 1 500, 2 500 y 3 000 ppm. ...
Article
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Fusarium oxysporum, causing wilting and root rot. The objective of the work was to evaluate in vitro extracts of Larrea tridentata L. to dose (10, 100, 500, 1 000, 3 000 y 5 000 ppm) and mustard Sinapis alba L. with two aditional concentration of 1 500 y 2 000 ppm with silicon oxide and zinc oxide at doses of: 1, 3 y 5% nanoparticles on mycelial growth and sporulation of F. oxysporum of garlic. Inhibitory concentrations and the number of conidia were determined. Data were analyzed by Probit analysis, ANOVA and Tukey’s test. The results indicated that governor and mustard extracts with SiO2, presented better inhibitory effect on mycelial growth, and significant reduction in sporulation was observed, unlike the extracts added with ZnO. SiO2 nanoparticles with governor and mustard extracts are effective for in vitro management of F. oxysporum.
Article
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El objetivo de la investigación fue evaluar la actividad antifúngica in vitro de dos extractos, gobernadora (Larrea tridentata L.) y mostaza (Sinapis alba L.) nanoformulados con nanopartículas de óxido de silicio y óxido de zinc (200 a 400 μ globulares), sobre el crecimiento micelial y la esporulación de Fusarium solani, uno de los fitopatógenos causante de la marchitez vascular y pudrición de raíces en al menos 100 cultivos de importancia económica. Utilizando el método medios envenenados se determinaron las concentraciones inhibitorias y el número de conidios. Los datos fueron analizados mediante un análisis probit, Anova y prueba de Tukey (p≤ 0.05). Los resultados demostraron que los tratamientos de mostaza sola presentan las DI50 más efectiva con 920.57 ppm; sin embargo, la mezcla de mostaza y gobernadora con SO2 presentó resultados significativos sobre la esporulación, con una formación de 0.35 y 0.48 millones de conidios ml-1 para gobernadora SO2 3% y mostaza SO2 5% en comparación con el testigo (7.78).
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