ArticlePDF Available

DETECTION OF PATHOGENIC PRION PROTEIN

Authors:

Abstract

This article gives information about the current methods used in diagnosis of prion diseases. Prion diseases are neurodegenerative disorders caused by pathogenic prions. Pathogenic prions are abnormal isoform of prion protein (PrPC), is a host-encoded molecule. PrPC to PrPSc spontaneous conversion leads to PrPSc accumulation in neurons and different tissues (such as brain tissue, lymph nodes and tonsils). Most of the diagnostic methods for prion diseases are dependent on PrPSc detection in neurons and tissues. High rate PrPSc detection in many different samples is a prerequisite for a reliable diagnostic method. For this purpose, several methods and cell lines that are susceptible to prion infection have been developed for detection of PrPSc
Derleme
© 2012 DEÜ TIP FAKÜLTESİ DERGİSİ CİLT 26, SAYI 2, (AĞUSTOS) 2012, 141 - 149
Patolojik Prion Proteininin Tespiti
DETECTION OF PATHOGENIC PRION PROTEIN
Murat ŞEVİK
Veteriner Kontrol Enstitüsü Müdürlüğü, Moleküler Mikrobiyoloji Laboratuvarı
Murat ŞEVİK
Veteriner Kontrol Enstitüsü
Müdürlüğü
Moleküler Mikrobiyoloji
Laboratuvarı
Tel: (332) 322 47 41
Faks: (332) 320 3798
Gsm: (542) 486 22 35
e-posta: dr_muratank@hotmail.com
ÖZET
Bu makalede, prion hastalıklarının tanısında kullanılan güncel yöntemler hakkında
bilgiler verilmektedir. Prion hastalıkları, patolojik prionların neden olduğu
nörodejeneratif hastalıklardır. Patolojik prionlar (PrPSc), konak tarafından kodlanan
prion proteininin (PrPC), anormal izoformlarıdır. PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü,
nöronlarda ve farklı dokularda (beyin dokusu, lenf bezleri ve tonsiller gibi) PrPSc
birikimine yol açmaktadır. Prion hastalıklarının tanı yöntemlerinin birçoğu, nöronlarda
ve dokulardaki PrPSc’nin tespitine dayanmaktadır. Güvenilir bir tanı metodunun ön
koşulu, birçok örnekte PrPSc’i yüksek oranda tespit etmesidir. Bu amaç doğrultu-
sunda, PrPSc’i tespit etmek için çeşitli yöntemler ve prion enfeksiyonuna duyarlı hücre
hatları geliştirilmiştir.
Anahtar sözcükler: Prion, insan, hayvan, nöron, tanı yöntemleri
SUMMARY
This article gives information about the current methods used in diagnosis of prion
diseases. Prion diseases are neurodegenerative disorders caused by pathogenic prions.
Pathogenic prions are abnormal isoform of prion protein (PrPC), is a host-encoded
molecule. PrPC to PrPSc spontaneous conversion leads to PrPSc accumulation in neurons
and different tissues (such as brain tissue, lymph nodes and tonsils). Most of the
diagnostic methods for prion diseases are dependent on PrPSc detection in neurons and
tissues. High rate PrPSc detection in many different samples is a prerequisite for a
reliable diagnostic method. For this purpose, several methods and cell lines that are
susceptible to prion infection have been developed for detection of PrPSc.
Key words: Prion, humans, animals, neuron, diagnostic methods
BulaşıcıSpongiformEnsefalopatiler(TSE)olarakda
bilinenprionhastalıkları,heminsanlarıhemdehayvan
larıetkileyenölümcülnörodejeneratifhastalıklardır.
Patojenikmekanizmalarıfarklılıkgöstermeklebirlikte,
HücreselPrionProteininin(PrPC),Scrapieİzoformuolan
PrionProteinine(PrPSc)konformasyoneldönüşümübütün
prionhastalıklarındaortaketiyolojiközelliktir(1).
PrPC,immunsistemhücrelerindevemerkezisinirsis
teminde,yüksekkonsantrasyonlardaekspreseedilen,bir
membranglikoproteindir(2,3).İnsanprionproteini,253
aminoasidesahipbirproteinolarak,kromozom20’inkısa
kolundayeralanPRNPgenindeüretilir(4).PrPC’ninmo
Patolojik prion proteininin tespiti
142
leküleryapısı,NveCterminalbölgelerindenoluşmakta
dır.Nterminalucu,sondereceesnektirvegenellikleçö
zünürproteininin,yapısalolmayanformuolarakşekille
nir.Nterminalucunun,PrPSc’ninβtabakasınınyapılan
dırmasındagörevaldığışünülmektedir.Cterminalucu
ise,3adetαheliksve2adetkısaantiparalelβipliğinden
oluşanglobülerbiralandır(1).PrPC’ninfonksiyonutam
olarakbilinmemeklebirlikte,nöronalsinyaltrans
düksiyonsüreçlerindevemetalmetabolizmadafonk
siyonlarınınolduğuilerisürülmektedir(5).PrPCvePrPSc
izoformlarınınbirbirindenayırtedilmesindesahipol
duklarımoleküleryapılardikkatealınmaktadır.PrPC’nin
%42’siαheliks,%3’üβtabakaiken,PrPSc’nin%30’uα
heliks,%43’üβtabakasıdır(1).AyrıcaPrPC,proteinazK’a
duyarlıiken,PrPScproteinazK’akarşıdirençlidir(3).
PrPC’nin,PrPSc’espontanolarakdönüşğüveyaPrPC’i
kodlayangende(insanlardaPRNPgeni)meydanagelen
mutasyonlarsonucu,PrPScşekillendiğivarsayılmaktadır.
Fakatmutasyonlarolmadankonformasyoneldeğişiklikle
rinnasılgerçekleştiğihenüzbilinmemektedir(4).
PRİONHASTALIKLARI
TSEetiyolojisindehorizantal,vertikalbulaşmavege
netikpredispozisyonsözkonusudur.Klinikolarakhasta
lığınmeydanagelmesindenönceaylarcaveyayıllarca
sürenbirinkübasyonsüresigözlenmektedir(6).Hastalık,
nöronalkayıpvebeyininspongiformdejenerasyonuile
birlikteaktiveolmuşastrositlervemikrogliailekarakteri
zedir(7).İnsanvehayvanlardabelirlenenprionhastalık
ları,Tablo’dagösterilmektedir(8).
İnsanlardaprionhastalıklarınınensıkgörülenformu,
heryaştakiveetnikgruptaki,kadınveerkeklerietkileyen,
sCJD’dir.PRNPgeninin,metioninvevalinpolimorfik
bölümlerinin,sporadik,iatrojenikvevariantCJDduyarlı
lığınıetkilediğitespitedilmiştir.Kafkasnüfusunun%40
ileyapılanbiraraştırmada,sCJDhastalarınyaklaşık
%60’ının,vCJDhastalarının%100’ününmetioninhomo
zigotolduğutespitedilmiştir.Budurum,prionhastalık
larınınkalıtsalolmayanformlarıarasındagenetikyatkın
lıkolabileceğinigöstermektedir.sCJD’nin,genelölüm
oranıheryılyaklaşık1milyoninsanda12vakadır(9).
Tablo. Prion hastalıkları
Hastalık adı Konak Patogenez Mekanizması
Kuru İnsan Törensel yamyamlık ile enfeksiyon
iCJD İnsan Prion ile kontamine HGH, dura mater grefti ile enfeksiyon
vCJD İnsan Sığır prionları ile enfeksiyon
fCJD İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
sCJD İnsan Somatik mutasyon veya PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü
GSS İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
FFI İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
FSI İnsan Somatik mutasyon veya PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü
Scrapie Koyun, Keçi Genetiksel olarak duyarlı hayvanlarda enfeksiyon
BSE Sığır Prion ile kontamine et ve kemik unu ile enfeksiyon
TME Vizon Koyun veya sığır prionları ile enfeksiyon
CWD Katır geyiği, elk Bilinmiyor
FSE Kedi Prion ile kontamine sığır dokuları, et ve kemik unu ile enfeksiyon
EUE İri ceylan, Nyala
Afrika antilobu
Prion ile kontamine et ve kemik unu ile enfeksiyon
iCJD, iatrojenik Creutzfeldt- Jakob hastalığı (CJD); vCJD, varyant CJD; fCJD, familial (ailesel) CJD; sCJD, sporadik CJD; GSS, Gerstmann-
Sträussler-Scheinker hastalığı; FFI, fatal familial insomnia; FSI, fatal sporadik insomnia; BSE, bovine spongiform ensefalopati; TME, transmissible
mink ensefalopati; CWD, chronic wasting disease; FSE, feline spongiform ensefalopati; HGH, human growth hormone (insan büyüme hormonu);
EUE, egzotik toynaklı ensefalopatisi

Patolojik prion proteininin tespiti
143
AileiçindegenetikolarakortayaçıkanfCJDoranının
yaklaşık%10ile%20arasındaolduğuvefCJDvakalarının
PRNPgeninin,kodon200mutasyonlarıileilişkiliolduğu
bildirilmiştir(9,10).AyrıcaBrezilya’dabirailede,PRNP
genininkodon183mutasyonununda,fCJD’enedenol
duğutespitedilmiştir.Yapılanaraştırmada,ailede3kuşak
boyunca17kişininhastalıktanetkilenmiş olabileceğibe
lirlenmiştir(11).
Britanya’da,1995yılındaBSEilekontaminegıdaların,
insanlartarafındantüketilmesiilevCJDvakalarınınortaya
çıktığıbildirilmiştir.Deneyselçalışmalarsonucueldeedi
lenpatolojikvebiyokimyasalkanıtlarilevCJDveBSE’e
aynıprionajanınınnedenolduğudoğrulanmıştır(12).
Özelliklegençinsanlardagörülenhastalığınbuformu,
20’liyaşlarında,200insanınölümünenedenolmuştur(9).
Nadirendeolsa,insandaninsanaprionhastalıklarının
nakli,cerrahialetlerinyanlış dekontaminasyonu,insan
kadavradokularındanalınanbiyolojikürünlerinkulla
nımıyadakantransfüzyonuilegerçekleşmektedir(9).Bu
şekildenakledileniCJD,ilkkezDuffyveark.tarafından,
kornealgreftuygulamasından18aysonra,otopsibulgu
larıileCJDolduğutespitedilen55yaşındakibirhastada
bildirilmiştir(35).Kornealgreftdonörününde,CJDso
nucuöldüğü,otopsisonucuiledoğrulanmıştır.Otarihten
itibaren,korneagreftiileolasıCJDnakliriskibulunan2
vakasırasıyla,AlmanyaveJaponya’dabildirilmiştir.Al
manhasta,kornealgreftuygulamasından30yılsonra46
yaşındaölmüştür.JaponhastadadaCJDvarlığı,otopsi
sonucuiledoğrulanmıştır(13).
EpidemikbulaşıcıbirhastalıkolanKuru,1950’lerde
PapuaYeniGine’deki,Forekabilesindetespitedilmiştir.
Hastalığın,ritüelbirceneazetörenisırasındaöleninsanın
beynininkafatasındançıkarılıp,pişirilipyenmesiilein
sanlarabulaştığıbelirlenmiştir(14).Kuru,onlarcayıl
ren(50yılakadar)inkübasyonsüresinesahiptir(15).
EnyaygınaileselTSE,GSS’dir.Genelliklehayatın
üçüncüveyadördüncüonyılındameydanagelir.GSS’e
nedenolanmutasyon(P102L)ilkkez1989yılındaHsiao
tarafındanbelirlenmiştir.Dahasonraprionproteingeni
ninfarklıkodonlarında(kodon102,105,117,145,198)
meydanagelenbirçokmutasyonunda,GSS’enedenol
duğutespitedilmiştir(11,15).
FFIismiilkkez,1986yılındaLugaresiveark.tarafın
dan,progresifinsomni,otonomikdisfonksiyon,dizartri,
tremorvemiyoklonusuolan52yaşındakibirhastada
kullanılmıştır.Hastanınbeş kuşakboyuncakiakrabaları
arasındayapılanaraştırmada,7kişininnöropatolojikin
celemesonucuFFIolduğu,22kişininisemuhtemelen
FFI’danöldüğütespitedilmiştir(11).Kalıtsalbirprion
hastalığıolanFFI,PRNPgenininkodon178’indeki
missensemutasyonlarileilişkilendirilmektedir.Bununla
birlikte,PRNPgenindemutasyonşekillenmedendegeli
şen,sporadikFFIvakalarıbildirilmiştir(16).
HASTALIĞINTANISI
Virüsvebakterilertarafındanmeydanagetirilenhas
talıklardanfarklıolarakprionhastalıklarının,serolojik
veyahücrekültüranalizlerivePCRgibiyöntemlerile
tanımlanmasıgüçtür.Çünküenfeksiyözajanolan
prionun,nükleikasitbileşeniyokturvenormalkonak
prionproteinininanormalbiçimiolarakmeydanagel
mektedir.Enfekteorganizmatarafındanyabancıbirorga
nizmaolaraktanımlanmadığıiçin,immünolojikyanıt
gözlenmemektedir.Prionhastalıkları,genelliklekliniksel
olaraktanımlanmaktavebeyindokusununpostmortem
histopatolojikanaliziiledoğrulanmaktadır.Prionhasta
lıklarınıntespitindeşuantekgüvenilirmolekülerbelirle
yici,PrPSc’dir.Hastalığıntanısında,PrPSc’ninmerkezisinir
sistemindevelenforetikülerdokulardavarlığıaraştırıl
maktadır(6).
TanıiçinKullanılanMetotlar
1.”WesternBlot”:İmmünolojikbiryöntemolan“wes
ternblot”tekniği,beyinvediğerdokulardakiproteinazK
dirençli,PrPfragmentlerinintespitinedayanmaktadır.
Testinprensibi,monoklonalantikorlarınpatolojikprion
laraselektifolarakbağlanmasıvetakibenrenkreaksiyonu
vermesidir.Testprosedürünegörebeyinyadaomurilik
parçalarıhomojenizeedilerek,proteinazKileparça
lanmaktavepoliakrilamidjeleaktarılmaktadır.Örnek
elektroforetifolarakayrımındansonrabirmembrana
transferedilmektevemonoklonalantikorlarkullanılarak
kemilüminesansyardımıylapatojenprionproteinleri
saptanmaktadır.Patolojikprionproteinleri,proteinazK
ileparçalanmadıklarından,proteinbantlarıimmünolojik
olarakişaretlenmekteveboyanmaktadır(6,17).
Patolojik prion proteininin tespiti
144
“Westernblot”testindeoluşanbantlarınyoğunluğu,
proteinglikolizasyonununmiktarınıgösterenbirdeğerdir
(6,18).Collingevemeslektaşları,bantyoğunluğunun
sporadik,iatrojenikveyenivariantCJD(nvCJD)’inayrı
mındakullanılabileceğinibildirmiştirler(36).Yaptıkları
analizlerde,4tipbantoluşumunutespitetmişlerdir.
Bovinespongiformensefalopati(BSE)ilenvCJD’ninaynı
bantörneğini(tip–4),sCJD’nintip1vetip2,iCJD’ninise
tip3bandınıgösterdiklerinibildirmişlerdir(11).“Western
blot”tekniği,sodyumfosfotungstikasitilePrPSc’nin
presipitasyonugibiekstraksiyonmetotlarıilegenişletile
bilmektedir.Hamsterbeyinhomojenatında,insansereb
rospinalsıvısında,beyindokusundaveidrarındamevcut
olanşükveyayüksekkonsantrasyonlardaki,PrPSc’lerin
sensitivitesinin,streptomisinpresipitasyonuiledikkat
çekicişekildearttığıtespitedilmiştir(19).
2.ELISA:Buyöntemde,monoklonalantikorlakaplı
pleytleredilüeedilmiş örnekuygulanmaktaveantikora
bağlıbirdeteksiyonsistemiilePrPScmiktarıbelirlenmek
tedir(18).Proteinazilemuameleişleminiiçerenörnek
hazırlamaaşamasını,presipitasyonveanalitizenginleş‐
tirmekiçingerçekleştirilensantrifüjadımlarıtakipeder.
Renkdönüştürücüenzimilebirleşmişantikorunkullanıl
dığısandviçELISAiletanımlamayapılır.Tanımlama
kemilüminesansilegerçekleşir.Kemilüminesansileta
nımlamada,“cutoff”değerlerikullanılır(6).
SandviçELISAyöntemiile1LD50(öldürücüetkilidoz)
BSEenfektivitesindendahaazorandaPrPSciçerenörnek
lerdekivekliniksemptombaşlangıcındanönce,BSE’li
sığırbeyinlerindekiPrPScvarlığıtespitedilebilmektedir
(18).ELISAtestleri,yükseksensivitevespesifitiyesahip
olupscrapie,BSEveCWD’insürveyansprogramlarındaki
çoksayıdakinumunenintaranmasıiçinkullanılmaktadır
(12).
3.İmmunhistokimya(IHC):Amiloidplakbirikimi,
astrogliosisvenöralhücrelerinkaybolmasıgibiprion
hastalıklarıiçintipikolanözellikler,beyinkesitlerinin,
IHCanaliziiletespitedilebilmektedir(17).IHC,formalin
ilefiskeedilmiş,dondurulmuş veparafinegömülüdoku
örneklerindeki,PrPSc’nininsitubelirlenmesineveprion
hastalıklarındaoluşanamiloidplakların,Alzheimergibi
nörodejeneratifhastalıklardaoluşannöritikplaklardan
ayrımına,imkânsağlamaktadır(6,20).Beyindeki,PrP
immunpozitifamiloidplaklar,bazıprionhastalıklarıiçin
sonderecespesifikbirtanıözelliğidir.BütünGerstmann
SträusslerScheinkerhastalarındavebazıCJDhastala
rında,PrPimmunpozitifamiloidplaklarbulunmaktadır.
vCJD’despongiformvakuollerileçevrelenmiş florid
plaklar,diğerinsanprionhastalıklarındabulunmamakta
dır.Buplaklar,vCJD’idiğerprionhastalıklarındanayıran
birpatogenezdir.Benzerfloridplakların,BSEileenfekte
maymunlardabulunması,vCJDveBSE’eaynıpriontürü
nünnedenolduğuhipotezininortayaçıkmasınaneden
olmuştur(6).
IHC,sadecePrPSc’ninvarlığınıtespitetmez.Aynıza
mandaPrPSc’ninbeyinvelenfoiddokulardakidağılımını
daortayaçıkarır.AstrositikmarkerproteinolanGlial
FibrillerAsidikProteine(GFAP),karşıantikorlarkullana
rakyapılanimmunhistokimyasalboyamaileastrositik
glikozun,beyindokusundakiderecesibelirlenebilmekte
dir.Bazıpriontürlerinin(vCJD,scrapieveCWD),yoğun
lenfotropizmesahipolmasınedeniyle,immunhistokim
yanınTSE’lerinprekliniktanısındakullanılmasıöneril
mektedir.Yakıngeçmişteyapılanbirçalışmada,IHCile
oralolarakCWDprionlarınamaruzkalanbirgeyiğin,
lenfoiddokularında,42günsonrapatolojikPrPproteini
saptanmıştır.Yapılandiğerbirçalışmadabirsığır,100gr
BSE’libeyinileoralolarakenfekteedilmiş vefarklıza
manlardaanalizleryapılmıştır.Klinikolarakbelirtilerin
görülmesindençokkısabirsüreöncehistolojikolarakpo
zitifsonuçeldeedilmiş iken,immunhistokimyasaltek
niklerile6ayönceden,PrPScbirikimitespitedilmiştir(6).
4.“Bioassay”:Deneyselolarakhayvanlarınenfekte
edilerek,diagnostikvearaştırmauygulamalarıileprion
türününtanımlanmasınıamaçlayanbirmetottur.Bume
totiledokulardakiPrPScenfektivitesihakkındaönemli
bilgilereldeedilmiştir.“Biyoassay”analizleriuzunsür
mekte(BSE’nin,RIIIfaresindekiinkübasyonu408gündür)
veyoğunişgücügerektirmektedir.Sonuçlarıyorumlamak
herzamankolaydeğildir.Homologtürlerarasındayapı
lan,“bioassay”çalışmalarıenduyarlıyöntemdir.Örneğin,
BSEiçindana“bioassay”leri,fare“bioassay”lerindendaha
duyarlıdır.Deneyselolarakenfekteedilebilecektürçeşi
dininsınırlıolmasıinsan,koyun,geyik,elkvebüyükbaş
PrPgenlerinitaşıyan,transgenikfarelerinüretilmesini
Patolojik prion proteininin tespiti
145
sağlamıştır(7).Transgenikfareler,BSEprionlarıile
enfekteolmayakarşı,sığırlardan10kat,RIIIfarelerden
1000katdahaduyarlısığırPrP’leriekspreseederler(6).
Ayrıca,doğalkonağagenetikyakınlıklarındandolayı
inkübasyonsürelerikısalmıştır(7).Buözellikleritrans
genikfareleri,insanvesığırprionlarıntanımlanmasında
önemlikılmaktadır(6).
5.HücreKültürTeknikleri:Hücrekültürmodelleri,
prionenfeksiyonçalışmalarındaPrPScoluşumununmole
külermekanizmasınınvehücreotonommodelinde
PrPC’nin,PrPSc’edönüşümünde,PrP’ninaminoasitdizile
rininveyapısalkısımlarınındahaiyianlaşılmasınısağla
makiçintasarlanmaktadır.Prionenfeksiyonmekanizması
çalışmalarında,farklıduyarlıhücreler(N2a;farenöro
blastoma,PC12;ratfeokromositomagibi)kullanılmak
tadır.NörohipotalmikhücreolanGT1,yüksekseviye
lerdekiPrPCekspresyonlarıgösterirveprionhastalıkla
rına,diğerhücrelerdendahaduyarlıdır.Prionahassas
farklıhücrelerinbulunması,prionenfeksiyonlarınınaraş‐
tırılabileceğiyenihücrekültürmodelleriningeliştirilme
sinikolaylaştırmaktadır.Prionenfektebeyinlerdenelde
edilenprimerkültürler,devamlıpasajlananhücreleriko
laylıklasağlamaktadır.Örneğin,ScHB(scrapieileenfekte
hamsterbeyinhücresi)veSMB(scrapieileenfektefare
beyinhücresi)prionileenfektehayvanlardanüretilmiştir.
Günümüzdeinsanembriyonikkökhücreleri,prionhasta
lıklarınınenfeksiyonmekanizmalarınınaydınlatılmasında
kullanılmayabaşlamıştır(17).
Enfektiviteveöldürücüetkilidozuntespitçalışmala
rında,hücrekültürleridekullanılmaktadır.Prionile
enfektehayvanlarınbeyinhomojenatları,pasajlanmadan
12günöncekültürortamınaeklenir.Herhücrenin
enfektivitesiveyaPrPScüretimi,prionileenfeksiyonora
nınagörebelirlenir.Enfektivite,hücrelerintraserebral
inokülasyoniledeneyhayvanlarınınbeyinlerineenjekte
edildiktensonraölçülür.Deneyhayvanlarıbeynineen
jekteedilmedenöncehücreler,tekraredendonmaerime
çevrimiilelizeedilir.1yılboyuncaPrPSctespitedilenhüc
relervehayvanlar“westernblot”ilekontroledilir.Yapı
langözlemlerdensonraLD50dozu,lizatenjekteedilen
hayvanlarınhayattakalmaeğrisindeneldeedilir(17).
6.HistoBlot:Buyöntemileanatomikdokukorunarak,
dokulardakiduyarlıproteinlerbelirlenir.Buyönteminbir
dezavantajı,fikseedilmemiş materyaleihtiyaçduyulma
sıdır.Beyindekiküçükmiktarlardaki,PrPSc’nintanımlan
masıiçinkullanışlıbirmetottur.Taze,fikseedilmemiş
beyindokuları,nitroselülozmembranüzerindekurutulur
vePrPCielimineetmekiçinproteinazKilemuameleedi
lir.GuanidinhidrokloridileproteinazdirençliPrPSc
denatüreedilirveimmunhistokimyasalyöntemle,PrPSc
belirlenir(21,22).
7.CellBlot:Lamelüzerindegelişenhücrelerin,nitro
selülozmembranatransferedilerek,proteinazKdirençli
PrP’lerin,“westernblot”ilebelirlenmesinikapsayanbir
yöntemdir(17).Çoklubağımsızhücrekültürlerindekipri
onenfeksiyonlarınınbelirlenmesindevePrPScseviyeleri
ninkarşılaştırılmasındaduyarlıvehızlıbiryöntemdir(23).
8.SlotBlot:Buyöntemde,nitroselülozmembrandan
hücrelizatıfiltreedilir,antiPrPantikorlarkullanarak,
proteinazKdirençliPrPbelirlenir(17).Slotblotanali
zinde,amiloidreaksiyonusırasındabölünenoligomerler
ileortamdaartanoluşumlarınbelirlenmesiiçinspesifik
prionaptameriolanSAF–93kullanılır(24).
9.PetBlot:İnkübasyonsüresininerkenevrelerinde,
PrPScvarlığınınbelirlenebildiğioldukçaduyarlıvespesi
fikbiryöntemdir.Deneyselolarakenfekteedilenfarede,
intraserebralinokülasyondan30günsonra,klinikbelirti
lerortayaçıkmadan145günöncebeyindekiPrPScvarlığı,
PETblotyöntemiiletespitedilmiştir.Buyöntemde
formalinlefikseedilmiş,parafinbloklardasaklanandoku,
yoğunbiçimdeproteinazKilemuameleedilirvedaha
sonradirektolaraknitroselülozmembranataşınır.
MembrandakiPrPSc,yüksekderecededuyarlıkgösteren,
spesifikantikorlarkullanılarakbelirlenir(21).
10.ProteinMisfoldingSiklikAmplifikasyon(PMCA):
KonseptolarakDNA’nınpolimerzincirreaksiyonuile
amplifikasyonunabenzemektedir(17).PMCAteknolojisi,
invivoPrPScreplikasyonununhızlandırılmış sikluslarını
içerenbirmetotdur.Hersiklus,2aşamadan(inkübasyon
vesonikasyon)oluşmaktadır.İlkaşamadaşükoranda
PrPScveyüksekorandaPrPCiçerenörnek,PrPScpolimer
leriningelişmesiniteşviketmesiiçininkübeedilir.İkinci
aşamadaisepolimerleriyıkmakiçinörneğeultrasonuy
gulanarak,konvertörünitelerinsayısıartırılır.Bu2aşama,
Patolojik prion proteininin tespiti
146
hersiklustauygulanarak,eldeedilenPrPScmiktarıartırılır
(25).Siklikamplifikasyondansonraörnekteyenişekillen
dirilenproteinlerin,%97’sindenfazlasıPrPScolduğutespit
edilmiştir(26).
Dokulardakivebiyolojiksıvılardakibelirlenemeyen,
prionproteinleriileenfektepresemptomatikhamsterların
kanındakiprionbuyöntemiletespitedilmiştir(17).Ay
rıcasütveidrargibiçeşitlisekresyonlardakivehayvanlar
tarafındankontamineedildiğivarsayılantoprakvesudaki
PrPSc,PMCAyöntemiilebelirlenebilmektedir(12).
11.KonformasyonBağlıİmmunassay(CDI):Buyön
teminde,PrPSc‘iselektifolarakçökeltmekiçin,doku
homojenatlarısodyumfosfotungstikasitileinkübeedilir.
PrPCvePrPSc’ibirbirindenayırmakiçindenatürasyon,
proteinazKyerineguanidinhidrokloridileyapılmaktadır
(27).Tespitediciantikor,enfekteolmamışformda(PrPC)
herzamangörülenamaenfeksiyozformun(PrPSc)sadece
denatürasyonsırasındagörülen,konformasyonbağımlı
epitopu(antijenmolekülündekikimyasalyapılar)be
lirlemekiçinkullanılır.Antikorbağlanmamiktarı,
denatürePrPScvedoğalPrPScarasındakisinyalfarklılıkla
rınabağlıolarakdeğişir.Sinyalfarklılıkları,dokuhomo
jenatlarındakiPrPSc’nintanımlayıcıbirkriteriolarakkul
lanılır(6).
12.Genişletilmiş DisosiyasyonLanthanideFloresan
İmmunassay(DELFIA):Buyöntemde,guanidinhidro
klorürilePrPScekstraksiyonugerçekleştirilir(17).PrP’i
çözündürmekiçinguanidinhidroklorür,ikifarklı
konsantrasyondauygulanır.SerbestPrP,monoklonalan
tikorileyakalanır.MonoklonalantikorvePrPkompleksi,
europiumileişaretlenmiş olanantikorlarilebelirlenir.
Zamanayrımlıfloresanskullanarak,ikifarklıkonsantras
yonda(çözünenveçözünmeyen)hazırlananörneğin
kantitasyonuyapılır(28).ÇözünmeyenPrP’nin,totalPrP
konsantrasyonunaoranıbuyöntemiçinbelirleyicibir
kriterdir(17).Buyöntemile10pikogramakadarPrPbe
lirlenebilmektedir(28).
13.KapillerJelElektroforez:Floresanişaretlisentetik
PrPpeptidiledokuörneklerindemevcutolanPrP’nin,
antikorabağlanmakiçinyaptıklarımücadeleyibelirle
meyedayananbiryaklaşımdır.Serbestpeptidveantikor
peptidpikleri,kapillerelektroforezilebirbirlerindenayırt
edilmektedir(17).Ultrasantrifügasyonyöntemleriilebe
yindenekstrakteedilenprionproteini,sodyumlauroyl
sarkozinveproteinazKilemuameleedilir.Sonsantrifüj
densonraeldeedilenpelet,süspanseedilerek,sodyum
dodesilsülfatve2merkaptoetanolilemuameleedilirve
kaynatılırarak,elektroforezişleminetabitutulur.Schmerr
veark.yaptıklarıçalışmadabuyöntemin,scrapieteşhisi
için“westernblot”yönteminegöreyaklaşık100katdaha
azörnekmiktarınaihtiyaçduyduğunubildirmişlerdir(29).
14.FloresanKorelasyonSpektroskopi(FCS):Solüsyon
içindelazerışınlarıarasındangeçen,floresanişaretlimo
lekülleribelirlemeyedayananbirmetottur.Analizsolüs
yonu,PrPScagregatlarınakuvvetlibirşekildebağlanan,
flüoroforileişaretliantiPrPantikorlarınıiçermektedir.
AntiPrPantikoruveyarekombinantPrPileişaretlenmiş
PrPSc,rölatiffloresanyoğunluğunagöretespitedilir(17,
18).AntiPrPantikorlarıbağlananPrPSc,monomerik
PrPC’ninarkaplanındakolaycagörülebilmektedir.Bu
metodun,“westernblot”metodundanyaklaşık20kat
dahaduyarlıolduğubildirilmiştir.CJDhastalarının
%20’sininserebrospinalsıvısındailkkezbuyöntemile
PrPSctespitedilmiştir(18).
15.MultispektralUltraviyoleFloresanSpektroskopi
(MUFS):Buyöntemdeproteinler,ultraviyoleradyasyon
ileuyarılarak,spesifikfloresanemisyontarzlarınagöre
belirlenirler.Buşekildehücreselprionproteinini,patolojik
prionproteinindenvefarklıPrPScformlarındanayırmak
mümkünolmaktadır(18).
16.Aptamer:Aptamer,spesifikbiçimdehedefproteine
bağlananDNAveyaRNAmolekülleridir(17).PrPC
ve/veyaPrPSc’ninde,kimyasalolaraksentezlenen,stabi
lizevemobilizeedilenspesifiknükleikasitaptamerlerinin
olduğubildirilmiştir(30).Weissveark.(1997)yaptıkları
çalışmada,GkuartetmotiflerinesahipRNAaptamer
lerinin,PrP’ninaminoucunabağlandığınıtespitetmiş‐
lerdir(31).İnvitroprionanalizlerinde,PrPSc’ninspesifik
bağlanmaaptamerinin,PrP’ninproteinazdirençliform
larınınbirarayagelmesiniengellediğibelirlenmiştir(17).
Butespitedayanarak,RNA,DNAvepeptidaptamerle
rinin,prionhastalıklarınıntanısındavetedavisindeyararlı
olabileceğişünülmektedir(30).
17.FourierTransformİnfrared(FTIR)Spektroskopi:
Patolojik prion proteininin tespiti
147
Kanvenöronoldokudakipatolojikprionproteinin,belir
lenmesiiçinumutverenbirbiyofizikselyöntemdir(32).
Buyöntem,infraredspektrumundakiçokdeğişkenliana
lizlerinbirleşmişolduğutanımlayıcıbirmetottur(17).FT
IRileprionproteinlerininüçboyutluyapısıbelirlenmek
tedir.Panveark.buyöntemleyaptıklarıçalışmada,
PrPC’nin,%42’sininαheliks,%3’ününβsheetformunda
ikenPrPSc’nin%30’ununαheliks,%43’ününβsheetfor
mundaolduğunutespitetmişlerdir(37).Gassetveark.
PrPSc’nin,proteinazdirençliçekirdeğiolanPrP2730’un,
%54’ününβsheet,%25’ininαheliksyapısındaolduğunu
bildirmişlerdir(38).FTIRilePrPScvePrP2730karak
terizasyonununyapılabilmesi,antikorlardanbağımsız
olarak,memelitürüvespesifikTSEkısıtlamalarıolmadan,
molekülersuş tiplemesininbuyönteminleyapılmasına
imkanvermektedir(32).
18.“FlowMicrobeadImmunoassay”(FMI):Mikro
boncuklarakovalentolarakbağlanmışantiPrPantikorla
rınınkullanıldığıbirmetottur(17).Mikroboncuklarile
bloklananörneklerin,floresanyoğunluğu,“flow
cytometer”ilebelirlenir.Floresanyoğunluğu,PrPSckon
santrasyonuiledoğruorantılıolarakartışgösterir(33).Bu
metotilesığıretindeki7pmol/7nmolvekemikunun
daki%0,3’dendahayüksekkonsantrasyondakirekombi
nantPrP/PrPScbelirlenebilmektedir(17).
19.Biomarkerlar:PrPSc,TSE’ninpostmortemtanısı
içinuygunbirişarettir.Çünküenfekteinsanlarınvehay
vanlarınSantralSinirSistemlerinde(SSS)yüksekkonsant
rasyonda,PrPScbulunmaktadır.Bununlabirlikte,PrPSc
prekliniktanıdasınırlıolarakkullanılabilmektedir.Çünkü
PrPSc,SSSdışında,özelliklevücutsıvılarında(kan,idrar
gibi),oldukçaşükkonsantrasyondabulunmaktadır.
Prionileenfekteinsanlarınvehayvanlarınidrarlarında,
proteinazdirençliPrPkökenlimoleküllerbelirlenmiştir.
Fakatgüvenilirrutinbirtesthenüzgeliştirilememiştir(6).
FarklıRNAgörüntülemeteknolojilerikullanılarak,
yenibirtranskriptineritroidfarklılaşmafaktörünükodla
dığı(EDRF)vebufaktörekspresyonununscrapieile
enfektefarede,hastalığıngelişimisırasındaaşamalıolarak
azaldığıbelirlenmiştir.BSEileenfektebüyükbaşserumla
rındabelirlenennükleikasitlerin,hastalığıngelişimiile
beraberortayaçıktığıileilgilibenzeryaklaşımlarbulun
maktadır(6).
20.Elektrokardiyografi(EKG):TSE’lerintanısındaki
diğerbirinvazifolmayantest,yüksekçözünürlükteki
elektrokardiyografidir.EKGileenfeksiyonunerkensaf
halarındakalphızındabelirgindeğişimlerinolupolma
dığıaraştırılmıştır.EKG,deneyselolarakBSEajanıile
enfekteedilen150sığırdadenenmişve8aysonraölen2
hayvandaSolunumSinüsAritmi(SSA)seviyelerininart
masınabağlıolarak,hastalıktespitedilmiştir(6).
21.Elektroensefalogram(EEG):EEGuygulamasıya
pılanCJDhastalarının%7585’inde,hastalığınileriaşa
malarındatipiktanısalbulgulareldeedilmiştir.Tipik
EEGbulgusuperiyodik,bifazikveyatrifazik,senkronize
keskindalgakompleksleridir(11).Hastalığınerkenevre
sinde,EEGileyaygındüzensiztetavedeltadalgalarıile
birliktebilateralalfavearalıklıyüksekamplitüdlüritmik
deltaaktivitesinintespitedilebileceğibildirilmiştir(10).
22.ManyetikRezonansGörüntüleme(MRI):CJDtanı
sında,difüzyonağırlıklıMRIgörüntülemeninenduyarlı
teknikolduğuşünülmektedir.T2ağırlıklıMRIilebazal
ganglionanormallikleribelirlenebilmektedir.vCJD’li
hastalarda,MRIiletalamusunpulvinarçekirdeğinde,
bilateralsinyalartışıtesptitedilmiştir.Bubulgu,vCJDiçin
%78oranındaduyarlıve%100oranındaözgülbirbulgu
olarakdeğerlendirilmektedir(34).
SONUÇ
Mevcuttanıyöntemleri,PrPCvePrPScproteinleriara
sındakifizikokimyasalfarklılıklaradayanmaktadır.Tanı
yöntemleriarasındakitemelfaklılık,saptamaseviyelerin
denkaynaklanmaktadır.,Hastalığınprekliniksafhasında
PrPScbirikimininşükbirkinetiğesahipolması,tanı
yöntemlerinininkübasyonperiyodununerkensafhala
rındakullanılmasınısınırlandırmaktadır.Bukısıltlamalar
dikkatealınarak,yenidiagnostiktekniklerde,PrPSc’nin
tanımlanmasıiçinvücutsıvılarındakiduyarlılığınve
spesifiteninartırılmasıvePrPScvarlığınıtemsiledenyeni
göstergelerinbelirlenmesihedeflenmektedir(6).
KAYNAKLAR
1. Ji HF, Zhang HY. Beta-sheet constitution of prion pro-
teins. Trends Biochem Sci 2010; 35: 129-134.
2. Edgeworth JA, Farmer M, Sicilia A, et al. Detection of
prion infection in variant Creutzfeldt-Jakob disease: a
Patolojik prion proteininin tespiti
148
blood-based assay. Lancet 2011; 377: 487-493.
3. Velayos JL, Irujo A, Cuadrado-Tejedor M, Paternain
B, Moleres FJ, Ferrer V. Cellular prion protein in the
central nervous system of mammals. Anatomoclinical as-
sociations. Neurologia 2010; 25: 228-233.
4. Mastrianni JA. Prion diseases. Clin Neurosci Res 2004; 3:
469-480.
5. Van der Kamp MW, Daggett V. Pathogenic mutations in
the hydrophobic core of the human prion protein can
promote structural instability and misfolding. J Mol Biol
2010; 404: 732-748.
6. Kübler E, Oesch B, Raeber AJ. Diagnosis of prion dise-
ases. Br Med Bull 2003; 66: 267-279.
7. Gavier-Widén D, Stack MJ, Baron T, Balachandran A,
Simmons M. Diagnosis of transmissible spongiform en-
cephalopathies in animals: a review. J Vet Diagn Invest
2005; 17: 509-527.
8. Prusiner SB. Prions. Proc Natl Acad Sci 1998; 95: 13363-
13383.
9. Pocchiari M, Poleggi A, Principe S, Graziano S, Cardone
F. Genomic and post-genomic analyses of human prion
diseases. Genome Med 2009; 1: 63.
10. Zerr I. Clinical and therapeutic aspects of prion disease.
Handb Clin Neurol 2008; 89: 737-764.
11. Belay ED. Transmissible Spongiform Encephalopathies
In Humans. Annu Rev Microbiol. 1999; 53: 283-314.
12. Cook RW, Richards RB, Middleton DJ. Transmissible
Spongiform Encephalopathies. Australian and New
Zealand Standard Diagnostic Procedure 2010; 16.
13. Belay ED, Schonberger LB. The Public Health Impact
of Prion Diseases. Annu Rev Public Health 2005; 26:
191–212.
14. Kalikiri PC, Sachan RG. Prions- Proteinaceous Infec-
tious Particles, JIACM 2003; 4: 334-336.
15. McKintosh E, Tabrizi SJ, Collinge J. Prion diseases. J.
Neurovirol 2003; 9: 183–193.
16. Wadsworth JDF, Collinge J. Update on human prion
disease. Biochimica et Biophysica Acta 2007; 1772: 598–
609.
17. Sakudo A, Nakamura I, Ikuta K, Onodera T. Recent
developments in prion disease research: diagnostic tools
and in vitro cell culture models. J Vet Med Sci 2007; 69:
329-337.
18. Ingrosso L, Vetrugno V, Cardone F, Pocchiari M.
Molecular diagnostics of transmissible spongiform en-
cephalopathies. Trends Mol Med 2002; 8: 273-280.
19. Dong CF, Huang YX, An R, et al. Sensitive Detection of
PrP (Sc) by Western Blot Assay Based on Streptomycin
Sulphate Precipitation. Zoonoses Public Health, 2007;
54: 328-336.
20. Kretzschmar HA, Ironside JW, DeArmond SJ, Tateishi
J. Diagnostic criteria for sporadic Creutzfeldt-Jakob dise-
ase. Arch Neurol 1996; 53: 913-920.
21. Schulz-Schaeffer WJ, Tschöke S, Kranefuss N, et al. The
paraffin-embedded tissue blot detects PrPSc early in the
incubation time in prion diseases. Am J Pathol 2000;
156: 51-56.
22. Taraboulos A, Jendroska K, Serban D, Yang S-L, DeAr-
mond SJ, Prusiner SB. Regional mapping of prion pro-
teins in brain. Proc Natl Acad Sci 1992; 89: 7620-7624.
23. Bosque PJ, Prusiner SB. Cultured cell sublines highly
susceptible to prion infection. J Virol 2000; 74: 4377-
4386.
24. Tahiri-Alaoui A, Sim VL, Caughey B, James W. Molecu-
lar heterosis of prion protein beta-oligomers. A potential
mechanism of human resistance to disease. J Biol Chem
2006; 281: 34171–34178.
25. Soto C, Saborio GP, Anderes L. Cyclic amplification of
protein misfolding: application to prion-related disorders
and beyond. Trends Neurosci 2002; 25: 390-394.
26. Saborio GP, Permanne B, Soto C. Sensitive detection of
pathological prion protein by cyclic amplification of pro-
teinmisfolding. Nature 2001; 411: 810-813.
27. McCutcheon S, Hunter N, Houston F. Use of a new
immunoassay to measure PrP Sc levels in scrapie-in-
fected sheep brains reveals PrP genotype-specific differ-
ences. J Immunol Methods 2005; 298: 119-128.
28. Dabaghian RH, Barnard G, McConnell I, Clewley JP. An
immunoassay for the pathological form of the prion pro-
tein based on denaturation and time resolved fluorome-
try. J Virol Methods 2006; 132: 85-91.
29. Schmerr MJ, Jenny A, Cutlip RC. Use of capillary so-
dium dodecyl sulfate gel electrophoresis to detect the
prion protein extracted from scrapie-infected sheep. J
Chrom B Biomed Sci Appl 1997; 697: 223-229.
30. Gilch S, Schätzl HM. Aptamers against prion proteins
Patolojik prion proteininin tespiti
149
and prions. Cell Mol Life Sci 2009; 66: 2445-2455.
31. Weiss S, Proske D, Neumann M, et al. RNA Aptamers
Specifically Interact with the Prion Protein PrP. J Virol
1997; 71: 8790–8797.
32. Beekes M, Lasch P, Naumann D. Analyti-
cal applications of Fourier transform-infrared (FT IR)
spectroscopy in microbiology and prion research. Vet
Microbiol 2007; 123: 305-319.
33. Murayama Y, Yoshioka M, Horii H, Takata M, Miura
K, Shinagawa M. Specific detection of prion antigenic
determinants retained in bovine meat and bone meal by
flow microbead immunoassay. J Appl Microbiol
2006; 101: 369-376.
34. Kallenberg K, Schulz-Schaeffer WJ, Jastrow U, et al.
Creutzfeldt-Jakob disease: Comparative Analysis of MR
Imaging Sequences. ANJR Am J Neuroradiol 2006; 27:
1459-1462.
35. Duffy P, Wolf J, Collins G, DeVoe AG, Streeten B,
Cowen D. Possible person-to-person transmission of
Creutzfeldt-Jakob disease. N Engl J Med 1974; 290: 692-
693.
36. Collinge J, Sidle KC, Meads J, Ironside J, Hill AF.
Molecular analysis of prion strain variation and the
aetiology of ‘new variant’ CJD. Nature 1996; 383: 685-
690.
37. Pan KM, Baldwin M, Nguyen J, Gasset M, Serban A,
Groth D, Mehlhorn I, Huang Z, Fletterick RJ, Cohen
FE, Prusiner SB. Conversion of -helices into ß-sheets
features in the formation of the scrapie prion proteins.
Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 10962-10966.
38. Gasset M, Baldwin MA, Fletterick RJ, Prusiner SB.
Perturbation of the secondary structure of the scrapie
prion protein under conditions that alter infectivity.
Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 1-5.
ResearchGate has not been able to resolve any citations for this publication.
Article
Full-text available
The scrapie prion protein (PrPsc) requires the cellular prion protein (PrPc) for its propagation and replication. In this work we studied the expression and localization of the PrPc in the central nervous system (SNC) of the rat, mouse, cat, cow and human, using immunohistochemistry and Western blot techniques to understand more about prionopathies and Alzheimer's disease (EA). For the immunohistochemistry study we used human, cat, rat and cow samples to analyse frontal, temporal and occipital cortex, as well as the hippocampus and the thalamus. For the Western blot analysis we used mouse, cat, cow and human brain samples. We observed a decrease in the amount of PrPc in the SNC in a rostrocaudal shift in the species mentioned above. We observed inhibitory cells in the cat cortex. The Western blot analysis showed a similar pattern of expression in the different species studied with a preponderance of the diglycosylated band, in relation to the other bands observed in the analysis. These data suggest that in prionopathies PrPsc could be transmitted and could be replicated in and from the areas with most expression of PrPc. Similarly, a higher amount of this protein (PrPc) in some brain areas could explain some histopathological aspects of EA. Our findings support the hypothesis of a retrograde transport of PrPsc in the SNC. PrPc could be related to the pathophysiology of EA.
Article
Full-text available
Prion diseases share common features of neurodegenerative disorders, infectious diseases and pathologies linked to misfolded proteins. Whether these aspects are independently and fortuitously present in prion diseases or are somewhat linked together remains unsettled, but the contribution of genomic, proteomic, metabolomic and spectroscopic techniques might give insights into this puzzle, and likely give hope for therapy to patients. Although the prion protein gene (PRNP) governs most of the clinical and pathological features of prion diseases and plays a pivotal role in determining host susceptibility, there are still many uncertainties and unknown risk factors that need to be clarified and identified. Several genes, other than PRNP, have recently been found to be associated with a risk of developing sporadic or variant Creutzfeldt-Jakob disease, but these novel data have been produced in a relatively small number of patients and controls and, therefore, need further confirmation. The same criticism applies to the identification of the over 20 new cerebrospinal fluid or plasma markers of disease. Some of these markers seem related to the massive brain damage that occurs, rather than being specific to prion infection. Nevertheless, genomic and post-genomic approaches have shown that these techniques are very powerful, and the best way to overcome the scantiness of samples would be to encourage strong collaboration between different centers of excellence in prion diseases. In this review, we describe the most recent and outstanding advances offered by genomics and post-genomics analyses in the field of human prion diseases.
Article
Full-text available
Prions are composed largely, if not entirely, of prion protein (PrPSc in the case of scrapie). Although the formation of PrPSc from the cellular prion protein (PrPC) is a post-translational process, no candidate chemical modification was identified, suggesting that a conformational change features in PrPSc synthesis. To assess this possibility, we purified both PrPC and PrPSc by using nondenaturing procedures and determined the secondary structure of each. Fourier-transform infrared (FTIR) spectroscopy demonstrated that PrPC has a high alpha-helix content (42%) and no beta-sheet (3%), findings that were confirmed by circular dichroism measurements. In contrast, the beta-sheet content of PrPSc was 43% and the alpha-helix 30% as measured by FTIR. As determined in earlier studies, N-terminally truncated PrPSc derived by limited proteolysis, designated PrP 27-30, has an even higher beta-sheet content (54%) and a lower alpha-helix content (21%). Neither PrPC nor PrPSc formed aggregates detectable by electron microscopy, while PrP 27-30 polymerized into rod-shaped amyloids. While the foregoing findings argue that the conversion of alpha-helices into beta-sheets underlies the formation of PrPSc, we cannot eliminate the possibility that an undetected chemical modification of a small fraction of PrPSc initiates this process. Since PrPSc seems to be the only component of the "infectious" prion particle, it is likely that this conformational transition is a fundamental event in the propagation of prions.
Article
Full-text available
Limited proteolysis of the scrapie prion protein (PrPSc) generates PrP 27-30, which polymerizes into amyloid. By attenuated total reflection-Fourier transform infrared spectroscopy, PrP 27-30 polymers contained 54% beta-sheet, 25% alpha-helix, 10% turns, and 11% random coil; dispersion into detergent-lipid-protein-complexes preserved infectivity and secondary structure. Almost 60% of the beta-sheet was low-frequency infrared-absorbing, reflecting intermolecular aggregation. Decreased low-frequency beta-sheet and increased turn content were found after SDS/PAGE, which disassembled the amyloid polymers, denatured PrP 27-30, and diminished scrapie infectivity. Acid-induced transitions were reversible, whereas alkali produced an irreversible transition centered at pH 10 under conditions that diminished infectivity. Whether PrPSc synthesis involves a transition in the secondary structure of one or more domains of the cellular prion protein from alpha-helical, random coil, or turn into beta-sheet remains to be established.
Article
This chapter describes that prion diseases or transmissible spongiform encephalopathies are characterized by the deposition of PrPSc, an abnormal form of the normal cellular protein, PrPc. The unique nature of human prion diseases includes their pathogenesis, mode of transmission, and neuropathology. In humans, the disease is characterized by a long incubation time, rapid and dramatic evolution of the clinical disease course and an always lethal outcome. The chapter reviews the most common form of the human prion diseases, which is sporadic Creutzfeldt-Jakob disease (sCJD). It is generally regarded as a spontaneous neurodegenerative illness, arising either from a spontaneous PRNP somatic mutation or a stochastic PrP protein structural change. This disease form occurs worldwide and in each country with an epidemiological program. Increased numbers of cases of sCJD were reported after the implementation of active surveillance. The chapter explores the acquired forms of prion diseases that comprise kuru, iatrogenic CJD, and variant CJD. Modes of transmission are contact with human brain tissue and bovine spongiform encephalopathy in vCJD.
Article
Transmissible spongiform encephalopathies, or prion diseases, are caused by misfolding and aggregation of the prion protein PrP. These diseases can be hereditary in humans and four of the many disease-associated missense mutants of PrP are in the hydrophobic core: V180I, F198S, V203I and V210I. The T183A mutation is related to the hydrophobic core mutants as it is close to the hydrophobic core and known to cause instability. We used extensive molecular dynamics simulations of these five PrP mutants to compare their dynamics and conformations to those of the wild type PrP. The simulations highlight the changes that occur upon introduction of mutations and help to rationalize experimental findings. Changes can occur around the mutation site, but they can also be propagated over long distances. In particular, the F198S and T183A mutations lead to increased flexibility in parts of the structure that are normally stable, and the short β-sheet moves away from the rest of the protein. Mutations V180I, V210I and, to a lesser extent, V203I cause changes similar to those observed upon lowering the pH, which has been linked to misfolding. Early misfolding is observed in one V180I simulation. Overall, mutations in the hydrophobic core have a significant effect on the dynamics and stability of PrP, including the propensity to misfold, which helps to explain their role in the development of familial prion diseases.
Article
Scrapie is characterized by the accumulation of a protease-resistant isoform of the prion protein PrPSc. Limited proteolysis and chaotropes were used to map the distribution of PrPSc in cryostat sections of scrapie-infected brain blotted onto nitrocellulose membranes, designated histoblots. Proteolysis was omitted in order to map the cellular isoform of the prion protein (PrPC) in uninfected brains. Compared with immunohistochemistry, histoblots increased the sensitivity for PrPSc detection and showed different patterns of PrPSc accumulation. In Syrian hamsters with Sc237 scrapie, the most intense PrPSc signals occurred in sites with relatively little PrPC, suggesting that aberrant localization of prion protein may be an important feature in the pathogenesis of prion diseases. Immunostaining of PrPSc in white-matter tracts suggested that prions spread along neuroanatomical pathways. PrPSc immunostaining in histoblots was quantitated by densitometry, permitting assessment of the extent of PrPSc accumulation within specific structures. Histoblots were also useful in localizing PrPCJD and beta/A4-amyloid peptide in the brains of patients with Creutzfeldt-Jakob disease and Alzheimer disease, respectively.
Article
Making a clinical diagnosis of sporadic Creutzfeldt-Jakob disease relies on the evaluation of rapidly progressive dementia, ataxia, myoclonus, changes on the electroencephalogram, and other neurological signs. A definite diagnosis, however, is confined to cases that have been evaluated neuropathologically or by equivalent diagnostic techniques. This places a high priority on the establishment of reliable neuropathologic methods for the investigation and diagnosis of Creutzfeldt-Jakob disease. To evaluate existing morphological and laboratory diagnostic techniques to reach a consensus on the definition of "definite Creutzfeldt-Jakob disease." The existing morphological techniques, particularly immunohistochemistry, used in 4 laboratories--Germany, Great Britain, Japan, and the United States--are evaluated, and various laboratory diagnostic techniques are discussed. Immunohistochemistry with antibodies against the prion protein combined with special tissue pretreatment regimens gives reliable diagnostic results and, for its applicability to formalin-fixed and paraffin-embedded tissue, is superior to other techniques that may be more sensitive but require fresh, unfixed brain tissue. Our experience suggests the following regimen for the diagnosis of suspected Creutzfeldt-Jakob disease: light microscopy of various brain regions, which in typical cases may lead to definite diagnosis. Immunohistochemistry with antibodies against the prion protein is preferable in all suspected cases of Creutzfeldt-Jakob disease and is mandatory whenever a routine histological workup does not yield definite results. Additional special techniques can be applied if required.