Content uploaded by Murat Şevik
Author content
All content in this area was uploaded by Murat Şevik on May 22, 2015
Content may be subject to copyright.
Derleme
© 2012 DEÜ TIP FAKÜLTESİ DERGİSİ CİLT 26, SAYI 2, (AĞUSTOS) 2012, 141 - 149
Patolojik Prion Proteininin Tespiti
DETECTION OF PATHOGENIC PRION PROTEIN
Murat ŞEVİK
Veteriner Kontrol Enstitüsü Müdürlüğü, Moleküler Mikrobiyoloji Laboratuvarı
Murat ŞEVİK
Veteriner Kontrol Enstitüsü
Müdürlüğü
Moleküler Mikrobiyoloji
Laboratuvarı
Tel: (332) 322 47 41
Faks: (332) 320 3798
Gsm: (542) 486 22 35
e-posta: dr_muratank@hotmail.com
ÖZET
Bu makalede, prion hastalıklarının tanısında kullanılan güncel yöntemler hakkında
bilgiler verilmektedir. Prion hastalıkları, patolojik prionların neden olduğu
nörodejeneratif hastalıklardır. Patolojik prionlar (PrPSc), konak tarafından kodlanan
prion proteininin (PrPC), anormal izoformlarıdır. PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü,
nöronlarda ve farklı dokularda (beyin dokusu, lenf bezleri ve tonsiller gibi) PrPSc
birikimine yol açmaktadır. Prion hastalıklarının tanı yöntemlerinin birçoğu, nöronlarda
ve dokulardaki PrPSc’nin tespitine dayanmaktadır. Güvenilir bir tanı metodunun ön
koşulu, birçok örnekte PrPSc’i yüksek oranda tespit etmesidir. Bu amaç doğrultu-
sunda, PrPSc’i tespit etmek için çeşitli yöntemler ve prion enfeksiyonuna duyarlı hücre
hatları geliştirilmiştir.
Anahtar sözcükler: Prion, insan, hayvan, nöron, tanı yöntemleri
SUMMARY
This article gives information about the current methods used in diagnosis of prion
diseases. Prion diseases are neurodegenerative disorders caused by pathogenic prions.
Pathogenic prions are abnormal isoform of prion protein (PrPC), is a host-encoded
molecule. PrPC to PrPSc spontaneous conversion leads to PrPSc accumulation in neurons
and different tissues (such as brain tissue, lymph nodes and tonsils). Most of the
diagnostic methods for prion diseases are dependent on PrPSc detection in neurons and
tissues. High rate PrPSc detection in many different samples is a prerequisite for a
reliable diagnostic method. For this purpose, several methods and cell lines that are
susceptible to prion infection have been developed for detection of PrPSc.
Key words: Prion, humans, animals, neuron, diagnostic methods
BulaşıcıSpongiformEnsefalopatiler(TSE)olarakda
bilinenprionhastalıkları,heminsanlarıhemdehayvan‐
larıetkileyenölümcülnörodejeneratifhastalıklardır.
Patojenikmekanizmalarıfarklılıkgöstermeklebirlikte,
HücreselPrionProteininin(PrPC),Scrapieİzoformuolan
PrionProteinine(PrPSc)konformasyoneldönüşümübütün
prionhastalıklarındaortaketiyolojiközelliktir(1).
PrPC,immunsistemhücrelerindevemerkezisinirsis‐
teminde,yüksekkonsantrasyonlardaekspreseedilen,bir
membranglikoproteindir(2,3).İnsanprionproteini,253
aminoasidesahipbirproteinolarak,kromozom20’inkısa
kolundayeralanPRNPgenindeüretilir(4).PrPC’ninmo‐
Patolojik prion proteininin tespiti
142
leküleryapısı,NveCterminalbölgelerindenoluşmakta‐
dır.Nterminalucu,sondereceesnektirvegenellikleçö‐
zünürproteininin,yapısalolmayanformuolarakşekille‐
nir.Nterminalucunun,PrPSc’ninβtabakasınınyapılan‐
dırmasındagörevaldığıdüşünülmektedir.Cterminalucu
ise,3adetαheliksve2adetkısaanti‐paralelβipliğinden
oluşanglobülerbiralandır(1).PrPC’ninfonksiyonutam
olarakbilinmemeklebirlikte,nöronalsinyaltrans‐
düksiyonsüreçlerindevemetalmetabolizmadafonk‐
siyonlarınınolduğuilerisürülmektedir(5).PrPCvePrPSc
izoformlarınınbirbirindenayırtedilmesindesahipol‐
duklarımoleküleryapılardikkatealınmaktadır.PrPC’nin
%42’siαheliks,%3’üβtabakaiken,PrPSc’nin%30’uα
heliks,%43’üβtabakasıdır(1).AyrıcaPrPC,proteinazK’a
duyarlıiken,PrPScproteinazK’akarşıdirençlidir(3).
PrPC’nin,PrPSc’espontanolarakdönüştüğüveyaPrPC’i
kodlayangende(insanlardaPRNPgeni)meydanagelen
mutasyonlarsonucu,PrPScşekillendiğivarsayılmaktadır.
Fakatmutasyonlarolmadankonformasyoneldeğişiklikle‐
rinnasılgerçekleştiğihenüzbilinmemektedir(4).
PRİONHASTALIKLARI
TSEetiyolojisindehorizantal,vertikalbulaşmavege‐
netikpredispozisyonsözkonusudur.Klinikolarakhasta‐
lığınmeydanagelmesindenönceaylarcaveyayıllarca
sürenbirinkübasyonsüresigözlenmektedir(6).Hastalık,
nöronalkayıpvebeyininspongiformdejenerasyonuile
birlikteaktiveolmuşastrositlervemikrogliailekarakteri‐
zedir(7).İnsanvehayvanlardabelirlenenprionhastalık‐
ları,Tablo’dagösterilmektedir(8).
İnsanlardaprionhastalıklarınınensıkgörülenformu,
heryaştakiveetnikgruptaki,kadınveerkeklerietkileyen,
sCJD’dir.PRNPgeninin,metioninvevalinpolimorfik
bölümlerinin,sporadik,iatrojenikvevariantCJDduyarlı‐
lığınıetkilediğitespitedilmiştir.Kafkasnüfusunun%40
ileyapılanbiraraştırmada,sCJDhastalarınyaklaşık
%60’ının,vCJDhastalarının%100’ününmetioninhomo‐
zigotolduğutespitedilmiştir.Budurum,prionhastalık‐
larınınkalıtsalolmayanformlarıarasındagenetikyatkın‐
lıkolabileceğinigöstermektedir.sCJD’nin,genelölüm
oranıheryılyaklaşık1milyoninsanda1‐2vakadır(9).
Tablo. Prion hastalıkları
Hastalık adı Konak Patogenez Mekanizması
Kuru İnsan Törensel yamyamlık ile enfeksiyon
iCJD İnsan Prion ile kontamine HGH, dura mater grefti ile enfeksiyon
vCJD İnsan Sığır prionları ile enfeksiyon
fCJD İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
sCJD İnsan Somatik mutasyon veya PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü
GSS İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
FFI İnsan PrP geninde germline mutasyonlar
FSI İnsan Somatik mutasyon veya PrPC’nin, PrPSc’e spontan dönüşümü
Scrapie Koyun, Keçi Genetiksel olarak duyarlı hayvanlarda enfeksiyon
BSE Sığır Prion ile kontamine et ve kemik unu ile enfeksiyon
TME Vizon Koyun veya sığır prionları ile enfeksiyon
CWD Katır geyiği, elk Bilinmiyor
FSE Kedi Prion ile kontamine sığır dokuları, et ve kemik unu ile enfeksiyon
EUE İri ceylan, Nyala
Afrika antilobu
Prion ile kontamine et ve kemik unu ile enfeksiyon
iCJD, iatrojenik Creutzfeldt- Jakob hastalığı (CJD); vCJD, varyant CJD; fCJD, familial (ailesel) CJD; sCJD, sporadik CJD; GSS, Gerstmann-
Sträussler-Scheinker hastalığı; FFI, fatal familial insomnia; FSI, fatal sporadik insomnia; BSE, bovine spongiform ensefalopati; TME, transmissible
mink ensefalopati; CWD, chronic wasting disease; FSE, feline spongiform ensefalopati; HGH, human growth hormone (insan büyüme hormonu);
EUE, egzotik toynaklı ensefalopatisi
Patolojik prion proteininin tespiti
143
AileiçindegenetikolarakortayaçıkanfCJDoranının
yaklaşık%10ile%20arasındaolduğuvefCJDvakalarının
PRNPgeninin,kodon200mutasyonlarıileilişkiliolduğu
bildirilmiştir(9,10).AyrıcaBrezilya’dabirailede,PRNP
genininkodon183mutasyonununda,fCJD’enedenol‐
duğutespitedilmiştir.Yapılanaraştırmada,ailede3kuşak
boyunca17kişininhastalıktanetkilenmiş olabileceğibe‐
lirlenmiştir(11).
Britanya’da,1995yılındaBSEilekontaminegıdaların,
insanlartarafındantüketilmesiilevCJDvakalarınınortaya
çıktığıbildirilmiştir.Deneyselçalışmalarsonucueldeedi‐
lenpatolojikvebiyokimyasalkanıtlarilevCJDveBSE’e
aynıprionajanınınnedenolduğudoğrulanmıştır(12).
Özelliklegençinsanlardagörülenhastalığınbuformu,
20’liyaşlarında,200insanınölümünenedenolmuştur(9).
Nadirendeolsa,insandaninsanaprionhastalıklarının
nakli,cerrahialetlerinyanlış dekontaminasyonu,insan
kadavradokularındanalınanbiyolojikürünlerinkulla‐
nımıyadakantransfüzyonuilegerçekleşmektedir(9).Bu
şekildenakledileniCJD,ilkkezDuffyveark.tarafından,
kornealgreftuygulamasından18aysonra,otopsibulgu‐
larıileCJDolduğutespitedilen55yaşındakibirhastada
bildirilmiştir(35).Kornealgreftdonörününde,CJDso‐
nucuöldüğü,otopsisonucuiledoğrulanmıştır.Otarihten
itibaren,korneagreftiileolasıCJDnakliriskibulunan2
vakasırasıyla,AlmanyaveJaponya’dabildirilmiştir.Al‐
manhasta,kornealgreftuygulamasından30yılsonra46
yaşındaölmüştür.JaponhastadadaCJDvarlığı,otopsi
sonucuiledoğrulanmıştır(13).
EpidemikbulaşıcıbirhastalıkolanKuru,1950’lerde
PapuaYeniGine’deki,Forekabilesindetespitedilmiştir.
Hastalığın,ritüelbirceneazetörenisırasındaöleninsanın
beynininkafatasındançıkarılıp,pişirilipyenmesiilein‐
sanlarabulaştığıbelirlenmiştir(14).Kuru,onlarcayılsü‐
ren(50yılakadar)inkübasyonsüresinesahiptir(15).
EnyaygınaileselTSE,GSS’dir.Genelliklehayatın
üçüncüveyadördüncüonyılındameydanagelir.GSS’e
nedenolanmutasyon(P102L)ilkkez1989yılındaHsiao
tarafındanbelirlenmiştir.Dahasonraprionproteingeni‐
ninfarklıkodonlarında(kodon102,105,117,145,198)
meydanagelenbirçokmutasyonunda,GSS’enedenol‐
duğutespitedilmiştir(11,15).
FFIismiilkkez,1986yılındaLugaresiveark.tarafın‐
dan,progresifinsomni,otonomikdisfonksiyon,dizartri,
tremorvemiyoklonusuolan52yaşındakibirhastada
kullanılmıştır.Hastanınbeş kuşakboyuncakiakrabaları
arasındayapılanaraştırmada,7kişininnöropatolojikin‐
celemesonucuFFIolduğu,22kişininisemuhtemelen
FFI’danöldüğütespitedilmiştir(11).Kalıtsalbirprion
hastalığıolanFFI,PRNPgenininkodon178’indeki
missensemutasyonlarileilişkilendirilmektedir.Bununla
birlikte,PRNPgenindemutasyonşekillenmedendegeli‐
şen,sporadikFFIvakalarıbildirilmiştir(16).
HASTALIĞINTANISI
Virüsvebakterilertarafındanmeydanagetirilenhas‐
talıklardanfarklıolarakprionhastalıklarının,serolojik
veyahücrekültüranalizlerivePCRgibiyöntemlerile
tanımlanmasıgüçtür.Çünküenfeksiyözajanolan
prionun,nükleikasitbileşeniyokturvenormalkonak
prionproteinininanormalbiçimiolarakmeydanagel‐
mektedir.Enfekteorganizmatarafındanyabancıbirorga‐
nizmaolaraktanımlanmadığıiçin,immünolojikyanıt
gözlenmemektedir.Prionhastalıkları,genelliklekliniksel
olaraktanımlanmaktavebeyindokusununpost‐mortem
histopatolojikanaliziiledoğrulanmaktadır.Prionhasta‐
lıklarınıntespitindeşuantekgüvenilirmolekülerbelirle‐
yici,PrPSc’dir.Hastalığıntanısında,PrPSc’ninmerkezisinir
sistemindevelenforetikülerdokulardavarlığıaraştırıl‐
maktadır(6).
TanıiçinKullanılanMetotlar
1.”WesternBlot”:İmmünolojikbiryöntemolan“wes‐
ternblot”tekniği,beyinvediğerdokulardakiproteinazK
dirençli,PrPfragmentlerinintespitinedayanmaktadır.
Testinprensibi,monoklonalantikorlarınpatolojikprion‐
laraselektifolarakbağlanmasıvetakibenrenkreaksiyonu
vermesidir.Testprosedürünegörebeyinyadaomurilik
parçalarıhomojenizeedilerek,proteinazKileparça‐
lanmaktavepoliakrilamidjeleaktarılmaktadır.Örnek
elektroforetifolarakayrımındansonrabirmembrana
transferedilmektevemonoklonalantikorlarkullanılarak
kemilüminesansyardımıylapatojenprionproteinleri
saptanmaktadır.Patolojikprionproteinleri,proteinazK
ileparçalanmadıklarından,proteinbantlarıimmünolojik
olarakişaretlenmekteveboyanmaktadır(6,17).
Patolojik prion proteininin tespiti
144
“Westernblot”testindeoluşanbantlarınyoğunluğu,
proteinglikolizasyonununmiktarınıgösterenbirdeğerdir
(6,18).Collingevemeslektaşları,bantyoğunluğunun
sporadik,iatrojenikveyenivariantCJD(nvCJD)’inayrı‐
mındakullanılabileceğinibildirmiştirler(36).Yaptıkları
analizlerde,4tipbantoluşumunutespitetmişlerdir.
Bovinespongiformensefalopati(BSE)ilenvCJD’ninaynı
bantörneğini(tip–4),sCJD’nintip‐1vetip‐2,iCJD’ninise
tip‐3bandınıgösterdiklerinibildirmişlerdir(11).“Western
blot”tekniği,sodyumfosfotungstikasitilePrPSc’nin
presipitasyonugibiekstraksiyonmetotlarıilegenişletile‐
bilmektedir.Hamsterbeyinhomojenatında,insansereb‐
rospinalsıvısında,beyindokusundaveidrarındamevcut
olandüşükveyayüksekkonsantrasyonlardaki,PrPSc’lerin
sensitivitesinin,streptomisinpresipitasyonuiledikkat
çekicişekildearttığıtespitedilmiştir(19).
2.ELISA:Buyöntemde,monoklonalantikorlakaplı
pleytleredilüeedilmiş örnekuygulanmaktaveantikora
bağlıbirdeteksiyonsistemiilePrPScmiktarıbelirlenmek‐
tedir(18).Proteinazilemuameleişleminiiçerenörnek
hazırlamaaşamasını,presipitasyonveanalitizenginleş‐
tirmekiçingerçekleştirilensantrifüjadımlarıtakipeder.
Renkdönüştürücüenzimilebirleşmişantikorunkullanıl‐
dığısandviçELISAiletanımlamayapılır.Tanımlama
kemilüminesansilegerçekleşir.Kemilüminesansileta‐
nımlamada,“cut‐off”değerlerikullanılır(6).
SandviçELISAyöntemiile1LD50(öldürücüetkilidoz)
BSEenfektivitesindendahaazorandaPrPSciçerenörnek‐
lerdekivekliniksemptombaşlangıcındanönce,BSE’li
sığırbeyinlerindekiPrPScvarlığıtespitedilebilmektedir
(18).ELISAtestleri,yükseksensivitevespesifitiyesahip
olupscrapie,BSEveCWD’insürveyansprogramlarındaki
çoksayıdakinumunenintaranmasıiçinkullanılmaktadır
(12).
3.İmmunhistokimya(IHC):Amiloidplakbirikimi,
astrogliosisvenöralhücrelerinkaybolmasıgibiprion
hastalıklarıiçintipikolanözellikler,beyinkesitlerinin,
IHCanaliziiletespitedilebilmektedir(17).IHC,formalin
ilefiskeedilmiş,dondurulmuş veparafinegömülüdoku
örneklerindeki,PrPSc’nininsitubelirlenmesineveprion
hastalıklarındaoluşanamiloidplakların,Alzheimergibi
nörodejeneratifhastalıklardaoluşannöritikplaklardan
ayrımına,imkânsağlamaktadır(6,20).Beyindeki,PrP
immunpozitifamiloidplaklar,bazıprionhastalıklarıiçin
sonderecespesifikbirtanıözelliğidir.BütünGerstmann‐
Sträussler‐ScheinkerhastalarındavebazıCJDhastala‐
rında,PrPimmunpozitifamiloidplaklarbulunmaktadır.
vCJD’despongiformvakuollerileçevrelenmiş florid
plaklar,diğerinsanprionhastalıklarındabulunmamakta‐
dır.Buplaklar,vCJD’idiğerprionhastalıklarındanayıran
birpatogenezdir.Benzerfloridplakların,BSEileenfekte
maymunlardabulunması,vCJDveBSE’eaynıpriontürü‐
nünnedenolduğuhipotezininortayaçıkmasınaneden
olmuştur(6).
IHC,sadecePrPSc’ninvarlığınıtespitetmez.Aynıza‐
mandaPrPSc’ninbeyinvelenfoiddokulardakidağılımını
daortayaçıkarır.AstrositikmarkerproteinolanGlial
FibrillerAsidikProteine(GFAP),karşıantikorlarkullana‐
rakyapılanimmunhistokimyasalboyamaileastrositik
glikozun,beyindokusundakiderecesibelirlenebilmekte‐
dir.Bazıpriontürlerinin(vCJD,scrapieveCWD),yoğun
lenfotropizmesahipolmasınedeniyle,immunhistokim‐
yanınTSE’lerinprekliniktanısındakullanılmasıöneril‐
mektedir.Yakıngeçmişteyapılanbirçalışmada,IHCile
oralolarakCWDprionlarınamaruzkalanbirgeyiğin,
lenfoiddokularında,42günsonrapatolojikPrPproteini
saptanmıştır.Yapılandiğerbirçalışmadabirsığır,100gr
BSE’libeyinileoralolarakenfekteedilmiş vefarklıza‐
manlardaanalizleryapılmıştır.Klinikolarakbelirtilerin
görülmesindençokkısabirsüreöncehistolojikolarakpo‐
zitifsonuçeldeedilmiş iken,immunhistokimyasaltek‐
niklerile6ayönceden,PrPScbirikimitespitedilmiştir(6).
4.“Bioassay”:Deneyselolarakhayvanlarınenfekte
edilerek,diagnostikvearaştırmauygulamalarıileprion
türününtanımlanmasınıamaçlayanbirmetottur.Bume‐
totiledokulardakiPrPScenfektivitesihakkındaönemli
bilgilereldeedilmiştir.“Biyoassay”analizleriuzunsür‐
mekte(BSE’nin,RIIIfaresindekiinkübasyonu408gündür)
veyoğunişgücügerektirmektedir.Sonuçlarıyorumlamak
herzamankolaydeğildir.Homologtürlerarasındayapı‐
lan,“bioassay”çalışmalarıenduyarlıyöntemdir.Örneğin,
BSEiçindana“bioassay”leri,fare“bioassay”lerindendaha
duyarlıdır.Deneyselolarakenfekteedilebilecektürçeşi‐
dininsınırlıolmasıinsan,koyun,geyik,elkvebüyükbaş
PrPgenlerinitaşıyan,transgenikfarelerinüretilmesini
Patolojik prion proteininin tespiti
145
sağlamıştır(7).Transgenikfareler,BSEprionlarıile
enfekteolmayakarşı,sığırlardan10kat,RIIIfarelerden
1000katdahaduyarlısığırPrP’leriekspreseederler(6).
Ayrıca,doğalkonağagenetikyakınlıklarındandolayı
inkübasyonsürelerikısalmıştır(7).Buözellikleritrans‐
genikfareleri,insanvesığırprionlarıntanımlanmasında
önemlikılmaktadır(6).
5.HücreKültürTeknikleri:Hücrekültürmodelleri,
prionenfeksiyonçalışmalarındaPrPScoluşumununmole‐
külermekanizmasınınvehücreotonommodelinde
PrPC’nin,PrPSc’edönüşümünde,PrP’ninaminoasitdizile‐
rininveyapısalkısımlarınındahaiyianlaşılmasınısağla‐
makiçintasarlanmaktadır.Prionenfeksiyonmekanizması
çalışmalarında,farklıduyarlıhücreler(N2a;farenöro‐
blastoma,PC12;ratfeokromositomagibi)kullanılmak‐
tadır.NörohipotalmikhücreolanGT1,yüksekseviye‐
lerdekiPrPCekspresyonlarıgösterirveprionhastalıkla‐
rına,diğerhücrelerdendahaduyarlıdır.Prionahassas
farklıhücrelerinbulunması,prionenfeksiyonlarınınaraş‐
tırılabileceğiyenihücrekültürmodelleriningeliştirilme‐
sinikolaylaştırmaktadır.Prionenfektebeyinlerdenelde
edilenprimerkültürler,devamlıpasajlananhücreleriko‐
laylıklasağlamaktadır.Örneğin,ScHB(scrapieileenfekte
hamsterbeyinhücresi)veSMB(scrapieileenfektefare
beyinhücresi)prionileenfektehayvanlardanüretilmiştir.
Günümüzdeinsanembriyonikkökhücreleri,prionhasta‐
lıklarınınenfeksiyonmekanizmalarınınaydınlatılmasında
kullanılmayabaşlamıştır(17).
Enfektiviteveöldürücüetkilidozuntespitçalışmala‐
rında,hücrekültürleridekullanılmaktadır.Prionile
enfektehayvanlarınbeyinhomojenatları,pasajlanmadan
1‐2günöncekültürortamınaeklenir.Herhücrenin
enfektivitesiveyaPrPScüretimi,prionileenfeksiyonora‐
nınagörebelirlenir.Enfektivite,hücrelerintraserebral
inokülasyoniledeneyhayvanlarınınbeyinlerineenjekte
edildiktensonraölçülür.Deneyhayvanlarıbeynineen‐
jekteedilmedenöncehücreler,tekraredendonma‐erime
çevrimiilelizeedilir.1yılboyuncaPrPSctespitedilenhüc‐
relervehayvanlar“westernblot”ilekontroledilir.Yapı‐
langözlemlerdensonraLD50dozu,lizatenjekteedilen
hayvanlarınhayattakalmaeğrisindeneldeedilir(17).
6.HistoBlot:Buyöntemileanatomikdokukorunarak,
dokulardakiduyarlıproteinlerbelirlenir.Buyönteminbir
dezavantajı,fikseedilmemiş materyaleihtiyaçduyulma‐
sıdır.Beyindekiküçükmiktarlardaki,PrPSc’nintanımlan‐
masıiçinkullanışlıbirmetottur.Taze,fikseedilmemiş
beyindokuları,nitroselülozmembranüzerindekurutulur
vePrPC‘ielimineetmekiçinproteinazKilemuameleedi‐
lir.GuanidinhidrokloridileproteinazdirençliPrPSc
denatüreedilirveimmunhistokimyasalyöntemle,PrPSc
belirlenir(21,22).
7.CellBlot:Lamelüzerindegelişenhücrelerin,nitro‐
selülozmembranatransferedilerek,proteinazKdirençli
PrP’lerin,“westernblot”ilebelirlenmesinikapsayanbir
yöntemdir(17).Çoklubağımsızhücrekültürlerindekipri‐
onenfeksiyonlarınınbelirlenmesindevePrPScseviyeleri‐
ninkarşılaştırılmasındaduyarlıvehızlıbiryöntemdir(23).
8.SlotBlot:Buyöntemde,nitroselülozmembrandan
hücrelizatıfiltreedilir,anti‐PrPantikorlarkullanarak,
proteinazKdirençliPrPbelirlenir(17).Slotblotanali‐
zinde,amiloidreaksiyonusırasındabölünenoligomerler
ileortamdaartanoluşumlarınbelirlenmesiiçinspesifik
prionaptameriolanSAF–93kullanılır(24).
9.PetBlot:İnkübasyonsüresininerkenevrelerinde,
PrPScvarlığınınbelirlenebildiğioldukçaduyarlıvespesi‐
fikbiryöntemdir.Deneyselolarakenfekteedilenfarede,
intraserebralinokülasyondan30günsonra,klinikbelirti‐
lerortayaçıkmadan145günöncebeyindekiPrPScvarlığı,
PETblotyöntemiiletespitedilmiştir.Buyöntemde
formalinlefikseedilmiş,parafinbloklardasaklanandoku,
yoğunbiçimdeproteinazKilemuameleedilirvedaha
sonradirektolaraknitroselülozmembranataşınır.
MembrandakiPrPSc,yüksekderecededuyarlıkgösteren,
spesifikantikorlarkullanılarakbelirlenir(21).
10.ProteinMisfoldingSiklikAmplifikasyon(PMCA):
KonseptolarakDNA’nınpolimerzincirreaksiyonuile
amplifikasyonunabenzemektedir(17).PMCAteknolojisi,
invivoPrPScreplikasyonununhızlandırılmış sikluslarını
içerenbirmetotdur.Hersiklus,2aşamadan(inkübasyon
vesonikasyon)oluşmaktadır.İlkaşamadadüşükoranda
PrPScveyüksekorandaPrPCiçerenörnek,PrPScpolimer‐
leriningelişmesiniteşviketmesiiçininkübeedilir.İkinci
aşamadaisepolimerleriyıkmakiçinörneğeultrasonuy‐
gulanarak,konvertörünitelerinsayısıartırılır.Bu2aşama,
Patolojik prion proteininin tespiti
146
hersiklustauygulanarak,eldeedilenPrPScmiktarıartırılır
(25).Siklikamplifikasyondansonraörnekteyenişekillen‐
dirilenproteinlerin,%97’sindenfazlasıPrPScolduğutespit
edilmiştir(26).
Dokulardakivebiyolojiksıvılardakibelirlenemeyen,
prionproteinleriileenfektepresemptomatikhamsterların
kanındakiprionbuyöntemiletespitedilmiştir(17).Ay‐
rıcasütveidrargibiçeşitlisekresyonlardakivehayvanlar
tarafındankontamineedildiğivarsayılantoprakvesudaki
PrPSc,PMCAyöntemiilebelirlenebilmektedir(12).
11.KonformasyonBağlıİmmunassay(CDI):Buyön‐
teminde,PrPSc‘iselektifolarakçökeltmekiçin,doku
homojenatlarısodyumfosfotungstikasitileinkübeedilir.
PrPCvePrPSc’ibirbirindenayırmakiçindenatürasyon,
proteinazKyerineguanidinhidrokloridileyapılmaktadır
(27).Tespitediciantikor,enfekteolmamışformda(PrPC)
herzamangörülenamaenfeksiyozformun(PrPSc)sadece
denatürasyonsırasındagörülen,konformasyonbağımlı
epitopu(antijenmolekülündekikimyasaluçyapılar)be‐
lirlemekiçinkullanılır.Antikorbağlanmamiktarı,
denatürePrPScvedoğalPrPScarasındakisinyalfarklılıkla‐
rınabağlıolarakdeğişir.Sinyalfarklılıkları,dokuhomo‐
jenatlarındakiPrPSc’nintanımlayıcıbirkriteriolarakkul‐
lanılır(6).
12.Genişletilmiş DisosiyasyonLanthanideFloresan
İmmunassay(DELFIA):Buyöntemde,guanidinhidro‐
klorürilePrPScekstraksiyonugerçekleştirilir(17).PrP’i
çözündürmekiçinguanidinhidroklorür,ikifarklı
konsantrasyondauygulanır.SerbestPrP,monoklonalan‐
tikorileyakalanır.MonoklonalantikorvePrPkompleksi,
europiumileişaretlenmiş olanantikorlarilebelirlenir.
Zamanayrımlıfloresanskullanarak,ikifarklıkonsantras‐
yonda(çözünenveçözünmeyen)hazırlananörneğin
kantitasyonuyapılır(28).ÇözünmeyenPrP’nin,totalPrP
konsantrasyonunaoranıbuyöntemiçinbelirleyicibir
kriterdir(17).Buyöntemile10pikogramakadarPrPbe‐
lirlenebilmektedir(28).
13.KapillerJelElektroforez:Floresanişaretlisentetik
PrPpeptidiledokuörneklerindemevcutolanPrP’nin,
antikorabağlanmakiçinyaptıklarımücadeleyibelirle‐
meyedayananbiryaklaşımdır.Serbestpeptidveantikor
peptidpikleri,kapillerelektroforezilebirbirlerindenayırt
edilmektedir(17).Ultrasantrifügasyonyöntemleriilebe‐
yindenekstrakteedilenprionproteini,sodyumlauroyl
sarkozinveproteinazKilemuameleedilir.Sonsantrifüj‐
densonraeldeedilenpelet,süspanseedilerek,sodyum
dodesilsülfatve2‐merkaptoetanolilemuameleedilirve
kaynatılırarak,elektroforezişleminetabitutulur.Schmerr
veark.yaptıklarıçalışmadabuyöntemin,scrapieteşhisi
için“westernblot”yönteminegöreyaklaşık100katdaha
azörnekmiktarınaihtiyaçduyduğunubildirmişlerdir(29).
14.FloresanKorelasyonSpektroskopi(FCS):Solüsyon
içindelazerışınlarıarasındangeçen,floresanişaretlimo‐
lekülleribelirlemeyedayananbirmetottur.Analizsolüs‐
yonu,PrPScagregatlarınakuvvetlibirşekildebağlanan,
flüoroforileişaretlianti‐PrPantikorlarınıiçermektedir.
Anti‐PrPantikoruveyarekombinantPrPileişaretlenmiş
PrPSc,rölatiffloresanyoğunluğunagöretespitedilir(17,
18).Anti‐PrPantikorlarıbağlananPrPSc,monomerik
PrPC’ninarkaplanındakolaycagörülebilmektedir.Bu
metodun,“westernblot”metodundanyaklaşık20kat
dahaduyarlıolduğubildirilmiştir.CJDhastalarının
%20’sininserebrospinalsıvısındailkkezbuyöntemile
PrPSctespitedilmiştir(18).
15.MultispektralUltraviyoleFloresanSpektroskopi
(MUFS):Buyöntemdeproteinler,ultraviyoleradyasyon
ileuyarılarak,spesifikfloresanemisyontarzlarınagöre
belirlenirler.Buşekildehücreselprionproteinini,patolojik
prionproteinindenvefarklıPrPScformlarındanayırmak
mümkünolmaktadır(18).
16.Aptamer:Aptamer,spesifikbiçimdehedefproteine
bağlananDNAveyaRNAmolekülleridir(17).PrPC
ve/veyaPrPSc’ninde,kimyasalolaraksentezlenen,stabi‐
lizevemobilizeedilenspesifiknükleikasitaptamerlerinin
olduğubildirilmiştir(30).Weissveark.(1997)yaptıkları
çalışmada,GkuartetmotiflerinesahipRNAaptamer‐
lerinin,PrP’ninaminoucunabağlandığınıtespitetmiş‐
lerdir(31).İnvitroprionanalizlerinde,PrPSc’ninspesifik
bağlanmaaptamerinin,PrP’ninproteinazdirençliform‐
larınınbirarayagelmesiniengellediğibelirlenmiştir(17).
Butespitedayanarak,RNA,DNAvepeptidaptamerle‐
rinin,prionhastalıklarınıntanısındavetedavisindeyararlı
olabileceğidüşünülmektedir(30).
17.FourierTransformİnfrared(FT‐IR)Spektroskopi:
Patolojik prion proteininin tespiti
147
Kanvenöronoldokudakipatolojikprionproteinin,belir‐
lenmesiiçinumutverenbirbiyofizikselyöntemdir(32).
Buyöntem,infraredspektrumundakiçokdeğişkenliana‐
lizlerinbirleşmişolduğutanımlayıcıbirmetottur(17).FT‐
IRileprionproteinlerininüçboyutluyapısıbelirlenmek‐
tedir.Panveark.buyöntemleyaptıklarıçalışmada,
PrPC’nin,%42’sininαheliks,%3’ününβ‐sheetformunda
ikenPrPSc’nin%30’ununαheliks,%43’ününβ‐sheetfor‐
mundaolduğunutespitetmişlerdir(37).Gassetveark.
PrPSc’nin,proteinazdirençliçekirdeğiolanPrP27‐30’un,
%54’ününβ‐sheet,%25’ininαheliksyapısındaolduğunu
bildirmişlerdir(38).FT‐IRilePrPScvePrP27‐30karak‐
terizasyonununyapılabilmesi,antikorlardanbağımsız
olarak,memelitürüvespesifikTSEkısıtlamalarıolmadan,
molekülersuş tiplemesininbuyönteminleyapılmasına
imkanvermektedir(32).
18.“FlowMicrobeadImmunoassay”(FMI):Mikro‐
boncuklarakovalentolarakbağlanmışanti‐PrPantikorla‐
rınınkullanıldığıbirmetottur(17).Mikro‐boncuklarile
bloklananörneklerin,floresanyoğunluğu,“flow
cytometer”ilebelirlenir.Floresanyoğunluğu,PrPSckon‐
santrasyonuiledoğruorantılıolarakartışgösterir(33).Bu
metotilesığıretindeki7pmol/7nmolvekemikunun‐
daki%0,3’dendahayüksekkonsantrasyondakirekombi‐
nantPrP/PrPScbelirlenebilmektedir(17).
19.Biomarkerlar:PrPSc,TSE’ninpost‐mortemtanısı
içinuygunbirişarettir.Çünküenfekteinsanlarınvehay‐
vanlarınSantralSinirSistemlerinde(SSS)yüksekkonsant‐
rasyonda,PrPScbulunmaktadır.Bununlabirlikte,PrPSc
prekliniktanıdasınırlıolarakkullanılabilmektedir.Çünkü
PrPSc,SSSdışında,özelliklevücutsıvılarında(kan,idrar
gibi),oldukçadüşükkonsantrasyondabulunmaktadır.
Prionileenfekteinsanlarınvehayvanlarınidrarlarında,
proteinazdirençliPrPkökenlimoleküllerbelirlenmiştir.
Fakatgüvenilirrutinbirtesthenüzgeliştirilememiştir(6).
FarklıRNAgörüntülemeteknolojilerikullanılarak,
yenibirtranskriptineritroidfarklılaşmafaktörünükodla‐
dığı(EDRF)vebufaktörekspresyonununscrapieile
enfektefarede,hastalığıngelişimisırasındaaşamalıolarak
azaldığıbelirlenmiştir.BSEileenfektebüyükbaşserumla‐
rındabelirlenennükleikasitlerin,hastalığıngelişimiile
beraberortayaçıktığıileilgilibenzeryaklaşımlarbulun‐
maktadır(6).
20.Elektrokardiyografi(EKG):TSE’lerintanısındaki
diğerbirinvazifolmayantest,yüksekçözünürlükteki
elektrokardiyografidir.EKGileenfeksiyonunerkensaf‐
halarındakalphızındabelirgindeğişimlerinolupolma‐
dığıaraştırılmıştır.EKG,deneyselolarakBSEajanıile
enfekteedilen150sığırdadenenmişve8aysonraölen2
hayvandaSolunumSinüsAritmi(SSA)seviyelerininart‐
masınabağlıolarak,hastalıktespitedilmiştir(6).
21.Elektroensefalogram(EEG):EEGuygulamasıya‐
pılanCJDhastalarının%75‐85’inde,hastalığınileriaşa‐
malarındatipiktanısalbulgulareldeedilmiştir.Tipik
EEGbulgusuperiyodik,bifazikveyatrifazik,senkronize
keskindalgakompleksleridir(11).Hastalığınerkenevre‐
sinde,EEGileyaygındüzensiztetavedeltadalgalarıile
birliktebilateralalfavearalıklıyüksekamplitüdlüritmik
deltaaktivitesinintespitedilebileceğibildirilmiştir(10).
22.ManyetikRezonansGörüntüleme(MRI):CJDtanı‐
sında,difüzyonağırlıklıMRIgörüntülemeninenduyarlı
teknikolduğudüşünülmektedir.T2ağırlıklıMRIilebazal
ganglionanormallikleribelirlenebilmektedir.vCJD’li
hastalarda,MRIiletalamusunpulvinarçekirdeğinde,
bilateralsinyalartışıtesptitedilmiştir.Bubulgu,vCJDiçin
%78oranındaduyarlıve%100oranındaözgülbirbulgu
olarakdeğerlendirilmektedir(34).
SONUÇ
Mevcuttanıyöntemleri,PrPCvePrPScproteinleriara‐
sındakifizikokimyasalfarklılıklaradayanmaktadır.Tanı
yöntemleriarasındakitemelfaklılık,saptamaseviyelerin‐
denkaynaklanmaktadır.,Hastalığınprekliniksafhasında
PrPScbirikiminindüşükbirkinetiğesahipolması,tanı
yöntemlerinininkübasyonperiyodununerkensafhala‐
rındakullanılmasınısınırlandırmaktadır.Bukısıltlamalar
dikkatealınarak,yenidiagnostiktekniklerde,PrPSc’nin
tanımlanmasıiçinvücutsıvılarındakiduyarlılığınve
spesifiteninartırılmasıvePrPScvarlığınıtemsiledenyeni
göstergelerinbelirlenmesihedeflenmektedir(6).
KAYNAKLAR
1. Ji HF, Zhang HY. Beta-sheet constitution of prion pro-
teins. Trends Biochem Sci 2010; 35: 129-134.
2. Edgeworth JA, Farmer M, Sicilia A, et al. Detection of
prion infection in variant Creutzfeldt-Jakob disease: a
Patolojik prion proteininin tespiti
148
blood-based assay. Lancet 2011; 377: 487-493.
3. Velayos JL, Irujo A, Cuadrado-Tejedor M, Paternain
B, Moleres FJ, Ferrer V. Cellular prion protein in the
central nervous system of mammals. Anatomoclinical as-
sociations. Neurologia 2010; 25: 228-233.
4. Mastrianni JA. Prion diseases. Clin Neurosci Res 2004; 3:
469-480.
5. Van der Kamp MW, Daggett V. Pathogenic mutations in
the hydrophobic core of the human prion protein can
promote structural instability and misfolding. J Mol Biol
2010; 404: 732-748.
6. Kübler E, Oesch B, Raeber AJ. Diagnosis of prion dise-
ases. Br Med Bull 2003; 66: 267-279.
7. Gavier-Widén D, Stack MJ, Baron T, Balachandran A,
Simmons M. Diagnosis of transmissible spongiform en-
cephalopathies in animals: a review. J Vet Diagn Invest
2005; 17: 509-527.
8. Prusiner SB. Prions. Proc Natl Acad Sci 1998; 95: 13363-
13383.
9. Pocchiari M, Poleggi A, Principe S, Graziano S, Cardone
F. Genomic and post-genomic analyses of human prion
diseases. Genome Med 2009; 1: 63.
10. Zerr I. Clinical and therapeutic aspects of prion disease.
Handb Clin Neurol 2008; 89: 737-764.
11. Belay ED. Transmissible Spongiform Encephalopathies
In Humans. Annu Rev Microbiol. 1999; 53: 283-314.
12. Cook RW, Richards RB, Middleton DJ. Transmissible
Spongiform Encephalopathies. Australian and New
Zealand Standard Diagnostic Procedure 2010; 16.
13. Belay ED, Schonberger LB. The Public Health Impact
of Prion Diseases. Annu Rev Public Health 2005; 26:
191–212.
14. Kalikiri PC, Sachan RG. Prions- Proteinaceous Infec-
tious Particles, JIACM 2003; 4: 334-336.
15. McKintosh E, Tabrizi SJ, Collinge J. Prion diseases. J.
Neurovirol 2003; 9: 183–193.
16. Wadsworth JDF, Collinge J. Update on human prion
disease. Biochimica et Biophysica Acta 2007; 1772: 598–
609.
17. Sakudo A, Nakamura I, Ikuta K, Onodera T. Recent
developments in prion disease research: diagnostic tools
and in vitro cell culture models. J Vet Med Sci 2007; 69:
329-337.
18. Ingrosso L, Vetrugno V, Cardone F, Pocchiari M.
Molecular diagnostics of transmissible spongiform en-
cephalopathies. Trends Mol Med 2002; 8: 273-280.
19. Dong CF, Huang YX, An R, et al. Sensitive Detection of
PrP (Sc) by Western Blot Assay Based on Streptomycin
Sulphate Precipitation. Zoonoses Public Health, 2007;
54: 328-336.
20. Kretzschmar HA, Ironside JW, DeArmond SJ, Tateishi
J. Diagnostic criteria for sporadic Creutzfeldt-Jakob dise-
ase. Arch Neurol 1996; 53: 913-920.
21. Schulz-Schaeffer WJ, Tschöke S, Kranefuss N, et al. The
paraffin-embedded tissue blot detects PrPSc early in the
incubation time in prion diseases. Am J Pathol 2000;
156: 51-56.
22. Taraboulos A, Jendroska K, Serban D, Yang S-L, DeAr-
mond SJ, Prusiner SB. Regional mapping of prion pro-
teins in brain. Proc Natl Acad Sci 1992; 89: 7620-7624.
23. Bosque PJ, Prusiner SB. Cultured cell sublines highly
susceptible to prion infection. J Virol 2000; 74: 4377-
4386.
24. Tahiri-Alaoui A, Sim VL, Caughey B, James W. Molecu-
lar heterosis of prion protein beta-oligomers. A potential
mechanism of human resistance to disease. J Biol Chem
2006; 281: 34171–34178.
25. Soto C, Saborio GP, Anderes L. Cyclic amplification of
protein misfolding: application to prion-related disorders
and beyond. Trends Neurosci 2002; 25: 390-394.
26. Saborio GP, Permanne B, Soto C. Sensitive detection of
pathological prion protein by cyclic amplification of pro-
teinmisfolding. Nature 2001; 411: 810-813.
27. McCutcheon S, Hunter N, Houston F. Use of a new
immunoassay to measure PrP Sc levels in scrapie-in-
fected sheep brains reveals PrP genotype-specific differ-
ences. J Immunol Methods 2005; 298: 119-128.
28. Dabaghian RH, Barnard G, McConnell I, Clewley JP. An
immunoassay for the pathological form of the prion pro-
tein based on denaturation and time resolved fluorome-
try. J Virol Methods 2006; 132: 85-91.
29. Schmerr MJ, Jenny A, Cutlip RC. Use of capillary so-
dium dodecyl sulfate gel electrophoresis to detect the
prion protein extracted from scrapie-infected sheep. J
Chrom B Biomed Sci Appl 1997; 697: 223-229.
30. Gilch S, Schätzl HM. Aptamers against prion proteins
Patolojik prion proteininin tespiti
149
and prions. Cell Mol Life Sci 2009; 66: 2445-2455.
31. Weiss S, Proske D, Neumann M, et al. RNA Aptamers
Specifically Interact with the Prion Protein PrP. J Virol
1997; 71: 8790–8797.
32. Beekes M, Lasch P, Naumann D. Analyti-
cal applications of Fourier transform-infrared (FT IR)
spectroscopy in microbiology and prion research. Vet
Microbiol 2007; 123: 305-319.
33. Murayama Y, Yoshioka M, Horii H, Takata M, Miura
K, Shinagawa M. Specific detection of prion antigenic
determinants retained in bovine meat and bone meal by
flow microbead immunoassay. J Appl Microbiol
2006; 101: 369-376.
34. Kallenberg K, Schulz-Schaeffer WJ, Jastrow U, et al.
Creutzfeldt-Jakob disease: Comparative Analysis of MR
Imaging Sequences. ANJR Am J Neuroradiol 2006; 27:
1459-1462.
35. Duffy P, Wolf J, Collins G, DeVoe AG, Streeten B,
Cowen D. Possible person-to-person transmission of
Creutzfeldt-Jakob disease. N Engl J Med 1974; 290: 692-
693.
36. Collinge J, Sidle KC, Meads J, Ironside J, Hill AF.
Molecular analysis of prion strain variation and the
aetiology of ‘new variant’ CJD. Nature 1996; 383: 685-
690.
37. Pan KM, Baldwin M, Nguyen J, Gasset M, Serban A,
Groth D, Mehlhorn I, Huang Z, Fletterick RJ, Cohen
FE, Prusiner SB. Conversion of -helices into ß-sheets
features in the formation of the scrapie prion proteins.
Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 10962-10966.
38. Gasset M, Baldwin MA, Fletterick RJ, Prusiner SB.
Perturbation of the secondary structure of the scrapie
prion protein under conditions that alter infectivity.
Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 1-5.